Detaljerade mikrokirurgiska tekniker demonstreras för att etablera en långsiktig jugular venkanyleringsråttmodell för sekventiell bloduppsamling i samma djur. Fysiologiska och hematologiska parametrar har övervakats under råttans återhämtningsfas. Denna modell har tillämpats för att studera farmakokinetiken för oralt administrerad polyfenol utan att inducera djurstress.
Blodprovtagning hos små försöksdjur är nödvändig för farmaceutisk blyoptimering men kan orsaka stor skada och stress för försöksdjur, vilket potentiellt kan påverka resultaten. Halsvenkanyreringen (JVC) hos råttor är en allmänt använd modell för upprepad blodinsamling men kräver adekvat utbildning av kirurgiska färdigheter och djurvård. Denna artikel beskriver de mikrokirurgiska förfarandena för att upprätta och upprätthålla en permanent JVC-råttmodell med särskilt fokus på placering och tätning av halskanylen. Vikten av att övervaka fysiologiska (t.ex. kroppsvikt, mat och vattenintag) och hematologiska parametrar, belystes med resultat som presenterades i 6 dagar efter operationen under råttans återhämtning. Läkemedels-plasmakoncentration-tidsprofilen för oralt administrerad naturlig fenolelaginsyra bestämdes i JVC-råttmodellen.
Upprepad insamling av blodprover från små försöksdjur, såsom gnagare, marsvin och kaniner, är en viktig aspekt för farmaceutisk blyoptimering och även för att minska antalet djur som används i forskning 1,2. Pipelinen för att utveckla nya diagnostiska verktyg och läkemedelsformulering (t.ex. vaccin) kräver tillgång till olika volymer blod för att utvärdera deras robusthet och prestanda in vivo, såsom farmakokinetik (PK), toxicitet och känslighet 3,4,5.
Laboratoriemetoden för blodprovsinsamling klassificeras i stort sett i två typer, kirurgisk och icke-kirurgisk6. Det icke-kirurgiska tillvägagångssättet är relativt lätt att förstå för forskaren, vilket inkluderar vanliga tekniker, såsom hjärtpunktering, orbital sinuspunktur och blödning av saphenös och svansven. Flera blodprovtagningar är möjliga med vissa icke-kirurgiska metoder, men provvolymen är liten och kan orsaka fysisk sår och psykisk stress hos djuren1. Å andra sidan är det kirurgiska tillvägagångssättet ett favoritalternativ till upprepad venipunktur, och det innebär placering av en tillfällig eller permanent kanyl i blodkärlen hos djur 7,8,9. Den stora blodvolymen kan upprepade gånger dras tillbaka genom kanylen hos medvetna råttor samtidigt som man undviker stress och smärta på grund av hanteringstekniken, återhållsamhet och anestesi 7,8,10,11. Kanylimplantationen kräver emellertid en erfaren forskare med adekvat utbildning för att framgångsrikt samla blodet.
Bloduppsamling genom halsvenkanylering (JVC) hos råttor är den mest använda metoden för att studera läkemedlet PK 6,10,12,13. Ändå kräver etablering av JVC-råttmodellen noggrann övning av mikrokirurgiska färdigheter och kunskap om postkirurgisk vård och underhåll. Speciellt efter operationen kräver råttan administrering av smärtstillande medel och tillräcklig återhämtningstid för att nå stabilt fysiologiskt tillstånd för ytterligare experiment 13,14,15. Även om kroppsviktökningen (dvs. >10 g) är en giltig och vanligt tillämpad indikator för råttans återhämtning, är det inte ovanligt att råttorna har oväntad död postoperativt på grund av uttorkning, infektion och inflammation, vilket kan vara subtilt att märka vid tidig debut14,15. Dessutom är kateterobstruktion i JVC-modellen fortfarande ett problem under blodinsamlingen.
Det nuvarande protokollet har i detalj visat de mikrokirurgiska förfarandena för JVC hos en sövd råtta med specifikt fokus på identifiering, isolering och kanylering av halsvenen. Vikten av fysiologisk och hematologisk övervakning av råttorna under återhämtningsfasen betonas. Slutligen samlades seriella blodprover in genom venkatetern för att studera PK för den oralt administrerade naturliga fenolelsyran med dålig biotillgänglighet (dvs. låg systemisk koncentration) för att verifiera JVC-råttmodellen.
Mastering av tekniken för fartygsburkulering kräver betydande övning och lärdom av varje operation. Christakis et al. med hjälp av kumulativ summa (CUSUM) analys, fann att en forskare behöver öva 200 råttor under en period av ett år innan han är redo för PK-utvärdering av läkemedelskandidater20. Ändå kan den driftstid som krävs för venens kanylering minskas avsevärt med antalet råttor som utförs 13,20. Med hjälp av vå…
The authors have nothing to disclose.
Detta arbete stöds av National Natural Science Foundation of China (nr 82003692) till R.X. Zhang; Topp akademiskt stipendium vid Northwestern Polytechnical University till R. Miao.
0.5 mL test tube containing EDTA anticoagulant | Xinkang | N/A | collecting blood samples for hematology test |
0.5*20 mm 1.0-mL syringe | KLMEDICAL | N/A | washing or replacing the fluid with saline |
0.6*28.5 mm 5.0-mL syringe | HD | N/A | Subcutaneous injection |
1.0-mL Blunt tipped syringe (22G) | skillsmodel | S4-PKT22G | Inject the saline and collect blood samples through catheter |
1.5 mL sterile microcentrifuge tube | Axygen | MCT-150-C-S | Store sterile catheter lock solution heparinized saline and meloxicam solution |
1.5 mL microcentrifuge tubes | Biosharp | BS-15-M | blood collection |
1/2 circle cutting 5*12 mm suture needle | skillsmodel | S4-FHZ | Thread the muscle layer to fix the catheter |
3/8 circle cutting 7*17 mm suture needle | skillsmodel | S5-FHZ | Suture the incision of rat cortex |
6-0 sterile non-absorbable silk suture thread | JUNSHENG | N/A | ligature |
75% medical alcohol | HONGSONG | N/A | Disinfection |
Adhensive tape | LIUTAI | N/A | positioning the rat |
Autoclave sterilization tape | Biosharp | BS-QT-028 | Mark sterilized items |
Automated blood cell counter | Sysmex | XN-550 | Hematology test |
Castroviejo micro scissors | skillsmodel | WA1010 | Cut the opening in the blood vessel |
Centrifuge | Thermo Fisher Scientific | 75002402 | Plasma preparation |
Clean cushion | Qingjie | N/A | Prepare the operation area |
Cotton balls | HC | N/A | Wound disinfection and sterilization |
Cotton swabs | BEITAGOGO | N/A | Disinfection |
Curved hemostat | skillsmodel | N/A | ligature |
DN50 Stainless-steel rat restrainer | skillsmodel | S4-RGDQ1 | Restrict the movement of rats for easy operation |
Ellagic acid | Aladdin | E102710-25g | natural phenol for oral administration |
Half-curved forceps | skillsmodel | 53072 | Lift the muscle layer and tissue, isolate the jugular vein and tie the suture |
Heating pad | Warm mate | N/A | preventing heat loss of animal |
Heparin sodium | Solarbio | H8060 | anticoagulant |
Iodophor | Xidebao | N/A | Clean the wound |
Iris scissors | skillsmodel | 54002 | Bluent separation the muscle layer |
Isoflurane | RWD | R510-22-16 | anaesthesia |
LED lamp | EMPERORFEEL | N/A | sugery |
Liquid chromatography-mass spectroscopy | Thermo Fisher Scientific | VQF01-20001/ TSQ02-10002 | detection of drug concentration in plasma |
Meloxicam | Hongqiang | N/A | Analgesic |
Normal saline | KL | N/A | Prepara the solution and protect blood vessels from drying out |
Pet razor | Codos | 3180 | Shaving the fur |
Phosphate-buffered saline | ZHHC | PW012 | Preparation of Ellagic acid solution |
PU catheter | skillsmodel | RJVC-PU | Jugular vein cannulation |
Small animal operation anesthesia console | RWD | 68620 | Operation workstation |
Spray bottle | Altro | N/A | aseptic workstation |
Stainless steel plug (22G) | skillsmodel | S4-PKD22G | Plug the catheter to ensure its sealing |
Stainless steel trochar | skillsmodel | S$-PKDGZ | Guide the catheter exteriorization |
Sterile lock solution | skillsmodel | SK-FB | lock the catheter to ensure its sterility |
Straight feeding needle | skillsmodel | N/A | Oral gavage |
Surgical pouch | BKMAM | N/A | container for sterilization of surgical instruments |
Surgical scissors | skillsmodel | J21070 | Cut incision on rat skin |
Vessel dilator balanced forceps | skillsmodel | WA3020 | Expand the blood vessel and guide the cannula to slide in |
ZS-MV Small animal anesthesia machine | ZSLab | 1057003 | inducing and maintaining anaesthesia |