Summary

Mikrodisseksjon og dissosiasjon av Murine Oviduct: Individuell segmentidentifikasjon og enkeltcelleisolasjon

Published: November 04, 2021
doi:

Summary

En metode for mikrodisseksjon av musens ovidukt som tillater innsamling av de enkelte segmentene samtidig som RNA-integriteten opprettholdes. I tillegg er ikke-enzymatisk oviductal celle dissosiasjonsprosedyre beskrevet. Metodene er egnet for påfølgende gen- og proteinanalyse av de funksjonelt forskjellige oviduktsegmentene og dissosierte oviduktceller.

Abstract

Musemodellsystemer er uovertruffen for analyse av sykdomsprosesser på grunn av deres genetiske manipulabilitet og lave kostnader for eksperimentelle behandlinger. Men på grunn av deres lille kroppsstørrelse har noen strukturer, som ovidukten med en diameter på 200-400 μm, vist seg å være relativt vanskelig å studere bortsett fra ved immunhiistokjemi. Nylig har immunhiistokjemiske studier avdekket mer komplekse forskjeller i oviduktsegmenter enn tidligere anerkjent; Dermed er ovidukten delt inn i fire funksjonelle segmenter med forskjellige forhold mellom syv forskjellige epitelcelletyper. De forskjellige embryologiske opprinnelsene og forholdene til epitelcelletypene gjør sannsynligvis de fire funksjonelle regionene differensialt utsatt for sykdom. For eksempel oppstår forløperlesjoner til serøse intraepitheliale karsinomer fra infundibulum i musemodeller og fra den tilsvarende fimbrial-regionen i det menneskelige egglederne. Protokollen som er beskrevet her beskriver en metode for mikrodisseksjon for å dele opp ovidukten på en slik måte at den gir tilstrekkelig mengde og renhet av RNA som er nødvendig for nedstrømsanalyser som omvendt transkripsjon-kvantitativ PCR (RT-qPCR) og RNA-sekvensering (RNAseq). Også beskrevet er en for det meste ikke-enzymatisk vev dissosiasjonsmetode egnet for strømning cytometri eller enkeltcellet RNAseq analyse av fullt differensierte oviduktceller. Metodene som beskrives vil lette videre forskning ved hjelp av murin ovidukten innen reproduksjon, fruktbarhet, kreft og immunologi.

Introduction

Murin ovidukten er lik i funksjon og morfologi til det menneskelige fallopianrøret1. Begge består av et pseudostratifisert ciliated epitel, bestående av to historisk beskrevne epitelceller: ciliated celler og sekretoriske celler1,2. Ovidukten har tre klassisk anerkjente segmenter: infundibulum, ampulla og isthmus. I en nylig studie, Harwalkar et al. 3 undersøkte oviduktmorfologi og genuttrykk som førte til utvidelse av kategorisering av bosatte epitelceller til syv forskjellige populasjoner. I tillegg etablerte de ampullary-isthmus-krysset som et tydelig segment av ovidukten3. Metoden som er beskrevet her, som fokuserer på infundibulum, ampulla og isthmus, kan lett utvides til å omfatte det ampullære-iskemiske krysset også2,3. Den infundibulære regionen inneholder ostium, eller åpning av ovidukten, og inkluderer fimbrialområdet så vel som den proksimale stengelen. Beveger seg mot livmoren, neste er ampulla, og deretter isthmus. Ciliated celler er mest fremtredende i den distale enden av regionen, proksimal til eggstokken, eller infundibulum, mens sekretoriske celler er mest fremtredende i den proksimale enden eller isthmus segment1. I motsetning til det menneskelige egglederen er murin ovidukten en spolet struktur støttet av mesosalpinxen, en forlengelse av det brede ligamentperitoneum1,4. I tillegg er mus ovidukten innkapslet i en bursalsekk som øker sannsynligheten for oocyttoverføring til ovidukten4. Ampulla er identifisert som plasseringen av befruktning, hvorfra utviklende embryoer passerer inn i isthmus før de går inn i livmoren5. Tubal segmenter er 200-400 μm i diameter og lengre ampullære og isthmus regioner er ca 0,5-1,0 cm i lengde4. Ovidukten distendene under østrogensyklusen og ampulla og infundibulum er mer distensible enn isthmus1.

Over spredning av celler, spesielt sekretoriske celler, karakteriserer forløperlesjoner til serøse svulster som finnes i bekkenhulen6. Disse forløper serøse intraepitheliale lesjonene oppstår i oviduktepitelet utelukkende i fimbrialområdet; Det er ukjent hvorfor lesjonsdannelse er begrenset til denne regionen der normalt den dominerende celletypen er ciliated, ikke sekretorisk2,7,8. Regionaliteten når det gjelder normal fysiologisk funksjon, samt økt interesse for oviduktal opprinnelse av eggstokkkreft9,10,11,12,13, understreker viktigheten av separat evaluering av oviduktsegmentene.

Metoden som er beskrevet her beskriver innsamlingen av separate oviduktsegmenter for påfølgende nedstrømsanalyser av segmentspesifikke genuttrykk og funksjon av dissosierte celler. Tradisjonelt behandles mange vev for hele RNA-ekstraksjon etter enten fenol: kloroformmetode eller en komplett ekstraksjonsmetode på kolonnen; Vi fant imidlertid at RNA-kvaliteten ble opprettholdt samtidig som den produserte tilstrekkelig avkastning med den beskrevne kombinasjonsmetoden. Ved hjelp av denne metoden kan svært små funksjonelle segmenter av ovidukten behandles for nedstrømsanalyser i stedet for å undersøke ovidukten som helhet, noe som kan maskere resultater som er representative for de forskjellige segmentene14.

Dissosierte murinlegende celler har sjelden blitt undersøkt av strømningscytometri, mest sannsynlig på grunn av det begrensende celleutbyttet fra dette vevet. En tilnærming for å overvinne dette problemet har vært å dissosiere celler, vokse dem i kultur, og deretter stimulere re-differensiering in vitro for å oppnå passende celletall for nedstrøms celleanalyse15,16,17,18. En begrensning i denne tilnærmingen er tiden ex vivo og endret mikromiljø i kulturen, som begge sannsynligvis endrer genuttrykk. Det er også en antagelse at morfologisk re-differensiering har samme transkripsjonelle og proteomiske signatur som var tilstede i det intakte dyret. Den nåværende dissosiasjonsmetoden ble designet for å oppnå det høyeste antallet epitelceller i en heterogen oviduktcellepopulasjon samtidig som man opprettholder encellet differensiering. Videre begrenser den for det meste ikke-enzymatiske tilnærmingen sannsynligvis tapet av celleoverflateproteiner.

Protocol

All dyrehåndtering og prosedyrer ble godkjent av University of California, Riverside institusjonelle dyrepleie- og brukskomité og var i samsvar med retningslinjer fra American Association for Laboratory Animal Care, United States Department of Agriculture og National Institutes of Health. Den beskrevne metoden benyttet C57BL/6 voksne, kvinnelige mus. Alle dyr ble avlivet ved halshugging før vevshøsting. MERK: En oversikt over protokollen, som bruker et blått fargestoff for å hjelpe til m…

Representative Results

Den beskrevne dissosiasjonsprotokollen gir 100 000-120 000 celler per mus ved sammenslåing av begge oviduktene. Metoden er mild nok til å la multi-ciliated cellekantlinjer være intakte, noe som gir et skille mellom multi-ciliated celler og sekretoriske celler, og verifisere at fordøyelsesmetoden er mild nok til å forhindre avdifferensiering. Representative immunfluorescensbilder i figur 5 viser små celleklumper etter trinn 4.2.1, festet i 3 min i 4% paraformaldehyd (PFA)/ DPBS, vasket …

Discussion

De tre segmentene av ovidukten er histologisk, morfologisk og funksjonelt distinkte1,2,3. Epitelet varierer sterkt fra den ene enden av ovidukten til den andre. Ciliated celler dominerer i den fimbrial / infundibulære enden, mens sekretoriske celler dominerer i den istemiske regionen1. Selv om denne samlede gradienten har blitt anerkjent i noen tid, har nyere arbeid avdekket flere forskjeller blant ovidu…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble delvis støttet av en DoD Breakthrough Award til AMW (BCRP W81XWH-14-1-0425). KCR ble delvis støttet av intramurale stipender: Pease Cancer Pre-Doctoral Fellowship og Mary Galvin Burden Pre-Doctoral Fellowship in Biomedical Sciences and University of California, Riverside, intramural awards: Graduate Council Fellowship Committee Dissertation Research Grant og Graduate Division Dissertation Year Program Award. Forfatterne takker Gillian M. Wright og Alyssa M. Kumari for hjelp i tidlig feilsøking av denne metoden.

Materials

0.5 mm Stainless steel bead mix Next Advance SSB05 Mix 1:1 with 1.4 mm SSB14B, sterilized
1.4 mm Stainless steel bead mix Next Advance SSB14B Mix 1:1 with 0.5 mm SSB05, sterilized
1X Dulbecco's Phosphate Buffered Saline A, pH 7.4 (DPBS) Gibco 21600-010 Cold, sterile
25G needle BD 305122
60 mm sterile petri dishes Corning 430166
70 μm cell meshes Fisherbrand 22-636-548
Agilent Eukaryote Total RNA 6000 Pico Chip kit Agilent 2100 Bioanalyzer 5067-1513
Bead Bullet Blender Tissue Homogenizer Next Advance BBY24M
Bioanlyzer Agilent 2100 Bioanalyzer
Bovine serum albumin Sigma Aldrich A7906
Cold plate/pack/surface of choice N/A N/A Kept at -20C for dissection
Dental wax Polysciences Inc. 403
Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium (DMEM)/ Ham’s F12 Corning 10-090-CV Prepare dissection medium: DMEM/ Ham’s F12, 10% FBS, 25 mM Hepes, 1% Pen-Strep
Fetal Bovine Serum Corning 35-015CV
Fine point forceps of choice N/A N/A
Glycine Sigma Aldrich G712b Immunocytochemical validation images
Goat anti-mouse IgG Alexa Fluor 555 Invitrogen A-21422 Immunocytochemical validation images
Goat anti-rabbit IgG Alexa Fluor 488 Invitrogen A-11001 Immunocytochemical validation images
Hepes Sigma Aldrich H-3784
Hoescht 33342 Cell Signaling Technologies 4082S Immunocytochemical validation images
Inverted compound microscope Keyence BZ-X700
Mouse anti-mouse Occludin Invitrogen 33-1500 Immunocytochemical validation images
Non-enzymatic dissociation buffer N/A 5 mM EDTA, 1 g/L glucose, 0.4% BSA, 1X DPBS
Nylon macro-mesh 1 mm x 1 mm Thomas Scientific 1210U04
Paraformaldehyde Sigma Aldrich P-6148 Immunocytochemical validation images
Pen-Strep MP Biomedicals 10220-718
Prolong Gold Antifade Reagent Cell Signaling Technologies 9071S Immunocytochemical validation images: antifade mounting medium
Pronase Sigma Aldrich 10165921001 Prepare pronase digestion medium: 0.15% Pronase in DMEM/Ham's F12, sterile
Propidium Iodide Roche 11 348 639 001 Viability validation images
Rabbit anti-mouse Acetylated-Tubulin Abcam ab179484 Immunocytochemical validation images
RBC lysis buffer BD Biosciences 555899
RNeasy Mini Kit Qiagen 74134 Utilized for on-column purification in text.
Spring form microdissection scissors Roboz Surgical RS-5610
Sterile 3 mL bulb pipettors Globe Scientific 137135
Toluidine blue Alfa Aesar J66015 Prepare toluidine blue solution: 1% in 1X DPBS, sterile
Tris-Buffered Saline-Tween (TBST) N/A N/A Immunocytochemical validation images; 0.1 N NaCl, 10 mM Tris-Cl pH 7.5, 1% Tween 20
Triton-X-100 Mallinckrodt Inc. 3555 Immunocytochemical validation images
Trizol RNA Extraction Reagent Invitrogen 15596026 Referred to as RNA extraction reagent. Nucelase-free water, chloroform and isoproponal are required in supplement of performing Trizol extraction per manufacturer's guidelines

Riferimenti

  1. Stewart, C. A., et al., Kubiak, J. Z., et al. . Mouse oviduct developmemt in Mouse Development: From Oocyte to Stem Cells. , 247-262 (2012).
  2. Ford, M. J., et al. Oviduct epithelial cells constitute two developmentally distinct lineages that are spatially separated along the distal-proximal axis. Cell Reports. 36 (10), 109677 (2021).
  3. Harwalkar, K., et al. Anatomical and cellular heterogeneity in the mouse oviduct-its potential roles in reproduction and preimplantation development. Biology of Reproduction. 104 (6), 1249-1261 (2021).
  4. Agduhr, E. Studies on the structure and development of the bursa ovarica and the tuba uterina in the mouse. Acta Zoologica. 8 (1), 1 (1927).
  5. Pulkkinen, M. O. Oviductal function is critical for very early human life. Annals of Medicine. 27 (3), 307-310 (1995).
  6. Kindelberger, D. W., et al. Intraepithelial carcinoma of the fimbria and pelvic serous carcinoma: Evidence for a causal relationship. American Journal of Surgical Pathology. 31 (2), 161-169 (2007).
  7. Ghosh, A., Syed, S. M., Tanwar, P. S. In vivo genetic cell lineage tracing reveals that oviductal secretory cells self-renew and give rise to ciliated cells. Development. 144 (17), 3031-3041 (2017).
  8. Lee, Y., et al. A candidate precursor to serous carcinoma that originates in the distal fallopian tube. Journal of Pathology. 211 (1), 26-35 (2007).
  9. Kim, J., et al. High-grade serous ovarian cancer arises from fallopian tube in a mouse model. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 109 (10), 3921-3926 (2012).
  10. Perets, R., et al. Transformation of the fallopian tube secretory epithelium leads to high-grade serous ovarian cancer in Brca;Tp53;Pten models. Cancer Cell. 24 (6), 751-765 (2013).
  11. Sherman-Baust, C. A., et al. A genetically engineered ovarian cancer mouse model based on fallopian tube transformation mimics human high-grade serous carcinoma development. Journal of Pathology. 233 (3), 228-237 (2014).
  12. Zhai, Y. L., et al. High-grade serous carcinomas arise in the mouse oviduct via defects linked to the human disease. Journal of Pathology. 243 (1), 16-25 (2017).
  13. Karthikeyan, S., et al. Prolactin signaling drives tumorigenesis in human high grade serous ovarian cancer cells and in a spontaneous fallopian tube derived model. Cancer Letters. 433, 221-231 (2018).
  14. Shao, R., et al. Differences in prolactin receptor (PRLR) in mouse and human fallopian tubes: Evidence for multiple regulatory mechanisms controlling PRLR isoform expression in mice. Biology of Reproduction. 79 (4), 748-757 (2008).
  15. Alwosaibai, K., et al. PAX2 maintains the differentiation of mouse oviductal epithelium and inhibits the transition to a stem cell-like state. Oncotarget. 8 (44), 76881-76897 (2017).
  16. Peri, L. E., et al. A novel class of interstitial cells in the mouse and monkey female reproductive tracts. Biology of Reproduction. 92 (4), 102 (2015).
  17. Lõhmussaar, K., et al. Assessing the origin of high-grade serous ovarian cancer using CRISPR-modification of mouse organoids. Nature Communications. 11 (1), 2660 (2020).
  18. Chen, S., et al. An air-liquid interphase approach for modeling the early embryo-maternal contact zone. Scientific Reports. 7, 42298 (2017).
  19. Desjardins, P., Conklin, D. NanoDrop microvolume quantitation of nucleic acids. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (45), e2565 (2010).
  20. Schroeder, A., et al. The RIN: an RNA integrity number for assigning integrity values to RNA measurements. BMC Molecular Biology. 7, 3 (2006).
  21. McGlade, E. A., et al. Cell-type specific analysis of physiological action of estrogen in mouse oviducts. The FASEB Journal. 35 (5), 21563 (2021).
check_url/it/63168?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Radecki, K. C., Lorenson, M. Y., Carter, D. G., Walker, A. M. Microdissection and Dissociation of the Murine Oviduct: Individual Segment Identification and Single Cell Isolation. J. Vis. Exp. (177), e63168, doi:10.3791/63168 (2021).

View Video