Summary

Etikettfri ikke-lineær optikk for studier av tubulinavhengige defekter i sentral myelin

Published: March 24, 2023
doi:

Summary

I denne artikkelen presenterer vi en protokoll for å oppdage mikrotubulibelastede oligodendrocytter i en modell av tubulinopati gjennom en enkel, innovativ andre harmonisk generasjons mikroskopi tilnærming.

Abstract

Tilfredsstillende visualisering av cytoskjelettkomponenter i hjernen er utfordrende. Den allestedsnærværende fordelingen av nettverkene av mikrotubuli, mikrofilamenter og mellomliggende filamenter i alle nevrale vev, sammen med variasjonen i resultatene av fluorescerende proteinfusjonsstrategier og deres begrensede anvendelighet til dynamiske studier av antistoffer og legemidler som kromoforbiler, gjør klassiske optiske tilnærminger ikke like effektive som for andre proteiner. Når tubulin må studeres, er den etikettfrie generasjonen av andre harmoniske en meget egnet alternativ på grunn av den ikke-sentrosymmetriske organisasjonen av molekylet. Denne teknikken, når den konjugeres til mikroskopi, kan kvalitativt beskrive den volumetriske fordelingen av parallelle bunter av mikrotubuli i biologiske prøver, med den ekstra fordelen av å arbeide med friske vev som er ufikserte og ugjennomtrengelige. Dette arbeidet beskriver hvordan man avbilder tubulin med et kommersielt andre harmonisk generasjonsmikroskopioppsett for å markere mikrotubuli i de tubulinberikede strukturer av oligodendrocytter, som i hypomyelinisering med atrofi av basalganglia og cerebellum (H-ABC) tubulinopati, en nylig beskrevet myelinforstyrrelse.

Introduction

Den optiske avbildningen av cytoskeletale strukturer i vev og organpreparater er ikke en lett oppgave. Cytoskeletale filamenter er allestedsnærværende, så hvis generisk farging utføres, for eksempel mot alfa-tubulin eller beta-aktin eller potensielt keratin i en epitelprøve, vil signalet sannsynligvis bli fordelt ganske homogent over hele prøven. For å begrense fargingen til en mer meningsfull delmengde av cellulære komponenter, kan man enten bruke transgene mus med målrettet uttrykk1 eller planlegge å bruke isoformspesifikke antistoffer. Mens svært få av de sistnevnte er på markedet (og svært få eksisterer i det hele tatt 2,3,4), kan en transgen dyremodell være tilgjengelig. Det må imidlertid anskaffes av laboratoriet og plasseres riktig, med alle utgifter involvert i prosessen. Visse antistoffer eller kjemikalier, for eksempel fluoroforkonjugerte legemidler som phalloidin eller paklitaksel, kan være delvis eller helt uforenlige med bruk i levende celler eller vev, og dermed begrense deres anvendelighet til bare studier av faste prøver.

Når det gjelder tubulin, må det tas hensyn til et ekstra aspekt, som er polymerens følsomhet for fiksering. Konvensjonell kjemisk fiksering med formaldehyd er kjent for ikke å være tilstrekkelig for optimal bevaring av integriteten til mikrotubuli5. I tillegg bekrefter en nylig rapport at formaldehyd tverrbinding induserer subtile endringer i mikrotubuliens ultrastruktur, som ligner på hva som skjer med bindingen av noen stoffer eller fysiologiske molekyler som GTP6.

Den direkte visualiseringen av mikrotubuli i ufargede, ufikserte prøver er derfor ofte ønskelig. For å oppnå dette er en teknisk løsning andre harmoniske generasjons (SHG) mikroskopi7, som er basert på evnen til bunter av parallelle mikrotubuli til å fungere som harmonoforer og å avgi frekvensdoblet lys når det er riktig opplyst med en intens, pulserende infrarød laser. Selv om et sterkere og mer stabilt andre harmonisk signal kan genereres fra kollagen og myosin, som er de eneste to andre biologiske materialene som er kjent for å være i stand til frekvensdobling, har signalet fra tubulin hittil blitt brukt mest til å studere mitotiske spindelomorganiseringer 8,9,10 og aksonal mikrotubulimorfologi11,12,13.

I dette arbeidet introduserer vi en ny bruk av SHG-mikroskopi som et diagnostisk verktøy for å skille sentralnervesystemet (CNS) vev påvirket av tubulin beta 4 A (TUBB4A) tubulinopati fra deres friske kolleger14. Noen av mutasjonene som forekommer i denne overveiende nevrale isoformen av tubulin, som de som forårsaker hypomyelinisering og atrofi av basalganglia og cerebellum (H-ABC), induserer overfylling av mikrotubuli i oligodendrocytter15,16; De cytoskeletale endringene er i sin tur forbundet med nedstrøms effekter som dysmyelinisering, med dyp svekkelse av motoriske og sensoriske veier16,17,18,19. Taiep-murinmodellen som brukes i dette arbeidet, viser unormalt mikrotubuliinnhold i oligodendrocytter og rekapitulerer de fleste sensorisk-motoriske symptomene hos H-ABC-pasienter17. Protokollen forklarer hvordan man avbilder strukturer som corpus callosum og cerebellum, som vanligvis er svært myeliniserte og som er sterkt påvirket hos menneskelige pasienter, så vel som i taiep-rotte 19, for å markere forskjellene i SH-signaler mellom sunt og mutant vev.

Protocol

Alle prosedyrer som er beskrevet ble gjort i samsvar med lovene og kodene som er godkjent i den syvende tittelen i forskriften om generell helselov om helseforskning av den meksikanske regjeringen (NOM-062-ZOO-1999) og i samsvar med anbefalingene fra National Institutes of Health Guide for omsorg og bruk av eksperimentelle dyr og ble godkjent av den institusjonelle komiteen for bioetikk i forskning fra Universidad de Guanajuato og Benemérita Universidad Autónoma de Puebla. 1. Innstill…

Representative Results

Bildene oppnådd med denne metoden har et iboende lavt bakgrunnsnivå på grunn av det svært begrensede antallet harmoniforer som er tilstede i biologiske vev, noe som er en av de betydelige fordelene ved metoden. Når fibrene i corpus callosum er avbildet, kan fiberlignende korte strukturer og avrundede elementer konsekvent finnes i taiep-hjernen (figur 3B), mens corpus callosum i kontrollhjernen viser et mye mer heterogent og isotropisk signal i hele hjerneområdet (<strong class="…

Discussion

SHG-mikroskopi er en del av en gruppe ikke-lineære optikkteknikker, som inkluderer to-foton eksitasjonsmikroskopi, tredje harmoniske generasjonsmikroskopi og sammenhengende anti-Stokes Raman spredningsmikroskopi, som har bidratt til å utvide anvendelsesområdet for konvensjonell optisk mikroskopi til biovitenskap20.

Spesielt er den største styrken og svakheten ved SHG-mikroskopi knyttet til samme tilstand: signalgeneratoren er ikke-sentrosymmetrisk2…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología (CONACYT) gjennom følgende tilskudd: infraestructura 226450 til VP-CIO, infraestructura 255277 til V.P., og FORDECYT-PRONACES/194171/2020 til V.H. Vi anerkjenner støtten fra Juvenal Hernández Guevara hos CIO i videoproduksjonen.

Materials

405/10 nm BrightLine(R) single-band bandpass filter  Semrock FF01-405/10-25 32 mm diameter, with housing ring
Black Nylon, Polyurethane-Coated Fabric Thorlabs BK5 5' x 9' (1.5 m x 2.7 m) x 0.005" (0.12 mm) Thick 
Blades for vibratome any commercial; e.g. Wilkinson Sword  Classic stainless steel double edge razor blades
Cell culture dishes, 35 mm any commercial; e.g. Falcon 351008
Confocal microscope Zeiss LSM710NLO AxioObserver Z1 Inverted microscope, objective used is LCI Plan-Neofluar 25x/0.8 NA 
Cooler any commercial Any insulated, polystyrene box could work, to mantain the sample at about 37 °C
Corn stach e.g. Maizena From the supermarket
Coverslips #1.5 any commercial Rectangular
Cyanoacrylate glue e.g. Loctite To glue the brain to the masking tape
Fine forceps fine science tools 11412-11 To manipulate tissue sections by handling from the meninges
Fine scissors fine science tools 14370-22 To cut the skin 
Fine scissors curved tip fine science tools 14061-09 To cut along the midline
Formaldehyde 37% Sigma-Aldrich 252549 To dilute 1:10 in PBS
Friedman Rongeur fine science tools 16000-14 To cut the bone
Gel packs any commercial Prewarmed to 37 °C, to help mantaining the temperature inside the cooler
Glass Pasteur pipette, modified any commercial To transfer the tissue section
Hanks′ Balanced Salt solution (HBSS) Gibco 14025-076 Could be prepared from powders
Kelly hemostats fine science tools 13018-14 To separate the bone 
Masking tape any commercial To protect th surface of the specimen plate
NDD module, type C Zeiss 000000-1410-101 To detect the signal, reducing light loss. Housing the 000000-1935-163 filter set with the SP485
Offset bone nippers fine science tools 16101-10 To cut the bone
Phosphate buffered saline (PBS) Gibco 10010-031 Could be prepared from powders or tabs
Pulsed laser Coherent Chameleon Vision II 680–1080 nm tunable laser
Scalpel any commercial Straight blade with sharp point
Standard pattern forceps fine science tools 11000-18
Vannas spring scissors fine science tools 15018-10 To cut meninges that remain joined to both the slice obtained from vibratome cutting and the section glued to the specimen plate.
Vibratome any commercial; e.g. Leica VT1200

Riferimenti

  1. Palmiter, R. D., et al. Cell lineage ablation in transgenic mice by cell-specific expression of a toxin gene. Cell. 50 (3), 435-443 (1987).
  2. Banerjee, A., et al. A monoclonal antibody against the type II isotype of beta-tubulin. Preparation of isotypically altered tubulin. The Journal of Biological Chemistry. 263 (6), 3029-3034 (1988).
  3. Banerjee, A., Roach, M. C., Trcka, P., Luduena, R. F. Preparation of a monoclonal antibody specific for the class IV isotype of beta-tubulin. Purification and assembly of alpha beta II, alpha beta III, and alpha beta IV tubulin dimers from bovine brain. The Journal of Biological Chemistry. 267 (8), 5625-5630 (1992).
  4. Banerjee, A., et al. Localization of βv tubulin in the cochlea and cultured cells with a novel monoclonal antibody. Cell Motility and the Cytoskeleton. 65 (6), 505-514 (2008).
  5. Cross, A. R., Williams, R. C. Kinky microtubules: Bending and breaking induced by fixation in vitro with glutaraldehyde and formaldehyde. Cell Motility and the Cytoskeleton. 20 (4), 272-278 (1991).
  6. Van Steenbergen, V., et al. Molecular understanding of label-free second harmonic imaging of microtubules. Nature Communications. 10 (1), 3530 (2019).
  7. Campagnola, P. J., Clark, H. A., Mohler, W. A., Lewis, A., Loew, L. M. Second-harmonic imaging microscopy of living cells. Journal of Biomedical Optics. 6 (3), 277 (2001).
  8. Campagnola, P. J., et al. Three-dimensional high-resolution second-harmonic generation imaging of endogenous structural proteins in biological tissues. Biophysical Journal. 82 (1), 493-508 (2002).
  9. Yu, C. -. H., et al. Measuring microtubule polarity in spindles with second-harmonic generation. Biophysical Journal. 106 (8), 1578-1587 (2014).
  10. Bancelin, S., et al. Probing microtubules polarity in mitotic spindles in situ using Interferometric Second Harmonic Generation Microscopy. Scientific Reports. 7, 6758 (2017).
  11. Dombeck, D. A., et al. Uniform polarity microtubule assemblies imaged in native brain tissue by second-harmonic generation microscopy. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 100 (12), 7081-7086 (2003).
  12. Psilodimitrakopoulos, S., et al. Estimation of the effective orientation of the SHG source in primary cortical neurons. Optics Express. 17 (16), 14418 (2009).
  13. Sharoukhov, D., Bucinca-Cupallari, F., Lim, H. Microtubule imaging reveals cytoskeletal deficit predisposing the retinal ganglion cell axons to atrophy in DBA/2J. Investigative Opthalmology & Visual Science. 59 (13), 5292 (2018).
  14. Alata, M., Piazza, V., Eguibar, J. R., Cortes, C., Hernandez, V. H. H-ABC tubulinopathy revealed by label-free second harmonic generation microscopy. Scientific Reports. 12, 14417 (2022).
  15. Duncan, I. D., Lunn, K. F., Holmgren, B., Urba-Holmgren, R., Brignolo-Holmes, L. The taiep rat: A myelin mutant with an associated oligodendrocyte microtubular defect. Journal of Neurocytology. 21 (12), 870-884 (1992).
  16. Duncan, I. D., et al. A mutation in the Tubb4a gene leads to microtubule accumulation with hypomyelination and demyelination: Tubb4a Mutation. Annals of Neurology. 81 (5), 690-702 (2017).
  17. Garduno-Robles, A., et al. MRI features in a rat model of H-ABC tubulinopathy. Frontiers in Neuroscience. 14, 555 (2020).
  18. Lopez-Juarez, A., et al. Auditory impairment in H-ABC tubulinopathy. Journal of Comparative Neurology. 529 (5), 957-968 (2021).
  19. Alata, M., et al. Longitudinal evaluation of cerebellar signs of H-ABC tubulinopathy in a patient and in the taiep model. Frontiers in Neurology. 12, 702039 (2021).
  20. Parodi, V., et al. Nonlinear optical microscopy: From fundamentals to applications in live bioimaging. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology. 8, 585363 (2020).
  21. Lefort, C. A review of biomedical multiphoton microscopy and its laser sources. Journal of Physics D: Applied Physics. 50 (42), 423001 (2017).
  22. Campagnola, P. J., Loew, L. M. Second-harmonic imaging microscopy for visualizing biomolecular arrays in cells, tissues and organisms. Nature Biotechnology. 21 (11), 1356-1360 (2003).
  23. vander Knaap, M. S., et al. New syndrome characterized by hypomyelination with atrophy of the basal ganglia and cerebellum. American Journal of Neuroradiology. 23 (9), 1466 (2002).
  24. Stoller, P., Kim, B. -. M., Rubenchik, A. M., Reiser, K. M., Da Silva, L. B. Polarization-dependent optical second-harmonic imaging of a rat-tail tendon. Journal of Biomedical Optics. 7 (2), 205 (2002).
  25. Brown, E. B., et al. In vivo measurement of gene expression, angiogenesis and physiological function in tumors using multiphoton laser scanning microscopy. Nature Medicine. 7 (7), 864-868 (2001).
  26. Chakraborti, S., Natarajan, K., Curiel, J., Janke, C., Liu, J. The emerging role of the tubulin code: From the tubulin molecule to neuronal function and disease. Cytoskeleton. 73 (10), 521-550 (2016).

Play Video

Citazione di questo articolo
Piazza, V., Alata, M., Hernandez, V. H., Eguibar, J. R., Cortes, C. Label-Free Non-Linear Optics for the Study of Tubulin-Dependent Defects in Central Myelin. J. Vis. Exp. (193), e63449, doi:10.3791/63449 (2023).

View Video