I denne artikkelen presenterer vi en protokoll for å oppdage mikrotubulibelastede oligodendrocytter i en modell av tubulinopati gjennom en enkel, innovativ andre harmonisk generasjons mikroskopi tilnærming.
Tilfredsstillende visualisering av cytoskjelettkomponenter i hjernen er utfordrende. Den allestedsnærværende fordelingen av nettverkene av mikrotubuli, mikrofilamenter og mellomliggende filamenter i alle nevrale vev, sammen med variasjonen i resultatene av fluorescerende proteinfusjonsstrategier og deres begrensede anvendelighet til dynamiske studier av antistoffer og legemidler som kromoforbiler, gjør klassiske optiske tilnærminger ikke like effektive som for andre proteiner. Når tubulin må studeres, er den etikettfrie generasjonen av andre harmoniske en meget egnet alternativ på grunn av den ikke-sentrosymmetriske organisasjonen av molekylet. Denne teknikken, når den konjugeres til mikroskopi, kan kvalitativt beskrive den volumetriske fordelingen av parallelle bunter av mikrotubuli i biologiske prøver, med den ekstra fordelen av å arbeide med friske vev som er ufikserte og ugjennomtrengelige. Dette arbeidet beskriver hvordan man avbilder tubulin med et kommersielt andre harmonisk generasjonsmikroskopioppsett for å markere mikrotubuli i de tubulinberikede strukturer av oligodendrocytter, som i hypomyelinisering med atrofi av basalganglia og cerebellum (H-ABC) tubulinopati, en nylig beskrevet myelinforstyrrelse.
Den optiske avbildningen av cytoskeletale strukturer i vev og organpreparater er ikke en lett oppgave. Cytoskeletale filamenter er allestedsnærværende, så hvis generisk farging utføres, for eksempel mot alfa-tubulin eller beta-aktin eller potensielt keratin i en epitelprøve, vil signalet sannsynligvis bli fordelt ganske homogent over hele prøven. For å begrense fargingen til en mer meningsfull delmengde av cellulære komponenter, kan man enten bruke transgene mus med målrettet uttrykk1 eller planlegge å bruke isoformspesifikke antistoffer. Mens svært få av de sistnevnte er på markedet (og svært få eksisterer i det hele tatt 2,3,4), kan en transgen dyremodell være tilgjengelig. Det må imidlertid anskaffes av laboratoriet og plasseres riktig, med alle utgifter involvert i prosessen. Visse antistoffer eller kjemikalier, for eksempel fluoroforkonjugerte legemidler som phalloidin eller paklitaksel, kan være delvis eller helt uforenlige med bruk i levende celler eller vev, og dermed begrense deres anvendelighet til bare studier av faste prøver.
Når det gjelder tubulin, må det tas hensyn til et ekstra aspekt, som er polymerens følsomhet for fiksering. Konvensjonell kjemisk fiksering med formaldehyd er kjent for ikke å være tilstrekkelig for optimal bevaring av integriteten til mikrotubuli5. I tillegg bekrefter en nylig rapport at formaldehyd tverrbinding induserer subtile endringer i mikrotubuliens ultrastruktur, som ligner på hva som skjer med bindingen av noen stoffer eller fysiologiske molekyler som GTP6.
Den direkte visualiseringen av mikrotubuli i ufargede, ufikserte prøver er derfor ofte ønskelig. For å oppnå dette er en teknisk løsning andre harmoniske generasjons (SHG) mikroskopi7, som er basert på evnen til bunter av parallelle mikrotubuli til å fungere som harmonoforer og å avgi frekvensdoblet lys når det er riktig opplyst med en intens, pulserende infrarød laser. Selv om et sterkere og mer stabilt andre harmonisk signal kan genereres fra kollagen og myosin, som er de eneste to andre biologiske materialene som er kjent for å være i stand til frekvensdobling, har signalet fra tubulin hittil blitt brukt mest til å studere mitotiske spindelomorganiseringer 8,9,10 og aksonal mikrotubulimorfologi11,12,13.
I dette arbeidet introduserer vi en ny bruk av SHG-mikroskopi som et diagnostisk verktøy for å skille sentralnervesystemet (CNS) vev påvirket av tubulin beta 4 A (TUBB4A) tubulinopati fra deres friske kolleger14. Noen av mutasjonene som forekommer i denne overveiende nevrale isoformen av tubulin, som de som forårsaker hypomyelinisering og atrofi av basalganglia og cerebellum (H-ABC), induserer overfylling av mikrotubuli i oligodendrocytter15,16; De cytoskeletale endringene er i sin tur forbundet med nedstrøms effekter som dysmyelinisering, med dyp svekkelse av motoriske og sensoriske veier16,17,18,19. Taiep-murinmodellen som brukes i dette arbeidet, viser unormalt mikrotubuliinnhold i oligodendrocytter og rekapitulerer de fleste sensorisk-motoriske symptomene hos H-ABC-pasienter17. Protokollen forklarer hvordan man avbilder strukturer som corpus callosum og cerebellum, som vanligvis er svært myeliniserte og som er sterkt påvirket hos menneskelige pasienter, så vel som i taiep-rotte 19, for å markere forskjellene i SH-signaler mellom sunt og mutant vev.
SHG-mikroskopi er en del av en gruppe ikke-lineære optikkteknikker, som inkluderer to-foton eksitasjonsmikroskopi, tredje harmoniske generasjonsmikroskopi og sammenhengende anti-Stokes Raman spredningsmikroskopi, som har bidratt til å utvide anvendelsesområdet for konvensjonell optisk mikroskopi til biovitenskap20.
Spesielt er den største styrken og svakheten ved SHG-mikroskopi knyttet til samme tilstand: signalgeneratoren er ikke-sentrosymmetrisk2…
The authors have nothing to disclose.
Dette arbeidet ble støttet av Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología (CONACYT) gjennom følgende tilskudd: infraestructura 226450 til VP-CIO, infraestructura 255277 til V.P., og FORDECYT-PRONACES/194171/2020 til V.H. Vi anerkjenner støtten fra Juvenal Hernández Guevara hos CIO i videoproduksjonen.
405/10 nm BrightLine(R) single-band bandpass filter | Semrock | FF01-405/10-25 | 32 mm diameter, with housing ring |
Black Nylon, Polyurethane-Coated Fabric | Thorlabs | BK5 | 5' x 9' (1.5 m x 2.7 m) x 0.005" (0.12 mm) Thick |
Blades for vibratome | any commercial; e.g. Wilkinson Sword | Classic stainless steel double edge razor blades | |
Cell culture dishes, 35 mm | any commercial; e.g. Falcon | 351008 | |
Confocal microscope | Zeiss | LSM710NLO AxioObserver Z1 | Inverted microscope, objective used is LCI Plan-Neofluar 25x/0.8 NA |
Cooler | any commercial | Any insulated, polystyrene box could work, to mantain the sample at about 37 °C | |
Corn stach | e.g. Maizena | From the supermarket | |
Coverslips #1.5 | any commercial | Rectangular | |
Cyanoacrylate glue | e.g. Loctite | To glue the brain to the masking tape | |
Fine forceps | fine science tools | 11412-11 | To manipulate tissue sections by handling from the meninges |
Fine scissors | fine science tools | 14370-22 | To cut the skin |
Fine scissors curved tip | fine science tools | 14061-09 | To cut along the midline |
Formaldehyde 37% | Sigma-Aldrich | 252549 | To dilute 1:10 in PBS |
Friedman Rongeur | fine science tools | 16000-14 | To cut the bone |
Gel packs | any commercial | Prewarmed to 37 °C, to help mantaining the temperature inside the cooler | |
Glass Pasteur pipette, modified | any commercial | To transfer the tissue section | |
Hanks′ Balanced Salt solution (HBSS) | Gibco | 14025-076 | Could be prepared from powders |
Kelly hemostats | fine science tools | 13018-14 | To separate the bone |
Masking tape | any commercial | To protect th surface of the specimen plate | |
NDD module, type C | Zeiss | 000000-1410-101 | To detect the signal, reducing light loss. Housing the 000000-1935-163 filter set with the SP485 |
Offset bone nippers | fine science tools | 16101-10 | To cut the bone |
Phosphate buffered saline (PBS) | Gibco | 10010-031 | Could be prepared from powders or tabs |
Pulsed laser | Coherent | Chameleon Vision II | 680–1080 nm tunable laser |
Scalpel | any commercial | Straight blade with sharp point | |
Standard pattern forceps | fine science tools | 11000-18 | |
Vannas spring scissors | fine science tools | 15018-10 | To cut meninges that remain joined to both the slice obtained from vibratome cutting and the section glued to the specimen plate. |
Vibratome | any commercial; e.g. Leica | VT1200 |