Summary

Etikettfri icke-linjär optik för studier av tubulinberoende defekter i centrala Myelin

Published: March 24, 2023
doi:

Summary

I den här artikeln presenterar vi ett protokoll för att detektera mikrotubulibelastade oligodendrocyter i en modell av tubulinopati genom en enkel, innovativ andra harmonisk generationens mikroskopimetod.

Abstract

Den tillfredsställande visualiseringen av cytoskelettkomponenter i hjärnan är utmanande. Den allestädes närvarande fördelningen av nätverken av mikrotubuli, mikrofilament och mellanliggande filament i alla neurala vävnader, tillsammans med variationen i resultaten av fluorescerande proteinfusionsstrategier och deras begränsade tillämplighet på dynamiska studier av antikroppar och läkemedel som kromoforfordon, gör klassiska optiska tillvägagångssätt inte lika effektiva som för andra proteiner. När tubulin behöver studeras är den etikettfria genereringen av andra övertoner ett mycket lämpligt alternativ på grund av molekylens icke-centrosymmetriska organisation. Denna teknik, när den konjugeras till mikroskopi, kan kvalitativt beskriva den volymetriska fördelningen av parallella buntar av mikrotubuli i biologiska prover, med den ytterligare fördelen att arbeta med färska vävnader som är ofixerade och oparfymerade. Detta arbete beskriver hur man avbildar tubulin med en kommersiell andra harmonisk generationens mikroskopiinställning för att markera mikrotubuli i oligodendrocyternas tubulinberikade strukturer, som vid hypomyelinering med atrofi av de basala ganglierna och cerebellum (H-ABC) tubulinopati, en nyligen beskriven myelinstörning.

Introduction

Den optiska avbildningen av cytoskelettstrukturer i vävnader och organpreparat är inte en lätt uppgift. Cytoskeletala filament är allestädes närvarande, så om generisk färgning utförs, till exempel mot alfa-tubulin eller beta-aktin eller potentiellt keratin i ett epitelprov, kommer signalen sannolikt att fördelas ganska homogent över hela provet. För att begränsa färgningen till en mer meningsfull delmängd av cellulära komponenter kan man antingen använda transgena möss med riktat uttryck1 eller planera att använda isoformspecifika antikroppar. Även om väldigt få av de senare finns på marknaden (och väldigt få finns alls 2,3,4), kan en transgen djurmodell finnas tillgänglig. Det måste dock förvärvas av labbet och ordentligt inrymmas, med alla kostnader som är involverade i processen. Vissa antikroppar eller kemikalier, till exempel fluoroforkonjugerade läkemedel som falloidin eller paklitaxel, kan vara delvis eller helt oförenliga med användning i levande celler eller vävnader, vilket begränsar deras tillämplighet till endast studier av fasta prover.

När det gäller tubulin måste en ytterligare aspekt beaktas, vilket är polymerens känslighet för fixering. Konventionell kemisk fixering med formaldehyd är känd för att inte vara tillräcklig för att optimalt bevara mikrotubuliens integritet5. Dessutom bekräftar en ny rapport att formaldehydkorsbindning inducerar subtila förändringar i mikrotubuliens ultrastruktur, liknande vad som händer med bindningen av vissa läkemedel eller fysiologiska molekyler som GTP6.

Den direkta visualiseringen av mikrotubuli i ostoppade, ofixerade prover är därför ofta önskvärt. För att uppnå detta är en teknisk lösning andra harmoniska generationens (SHG) mikroskopi7, som bygger på förmågan hos buntar av parallella mikrotubuli att fungera som harmonoforer och att avge frekvensfördubblat ljus när de är ordentligt upplysta med en intensiv, pulserad infraröd laser. Även om en starkare och stabilare andra harmonisk signal kan genereras från kollagen och myosin, som är de enda andra två biologiska materialen som är kända för att kunna frekvensfördubblas, har signalen från tubulin hittills använts mest för att studera mitotiska spindelomläggningar 8,9,10 och axonal mikrotubulimorfologi11,12,13.

I detta arbete introducerar vi en ny användning av SHG-mikroskopi som ett diagnostiskt verktyg för att skilja vävnader i centrala nervsystemet (CNS) som påverkas av tubulin beta 4 A (TUBB4A) tubulinopati från deras friska motsvarigheter14. Några av de mutationer som förekommer i denna övervägande neurala isoform av tubulin, som de som orsakar hypomyelinisering och atrofi av de basala ganglierna och cerebellum (H-ABC), inducerar mikrotubuliöverfyllning i oligodendrocyterna15,16; Cytoskelettförändringarna är i sin tur förknippade med nedströms effekter som dysmyelinisering, med djup försämring av motoriska och sensoriska vägar16,17,18,19. Taiep-murinmodellen som används i detta arbete visar onormalt mikrotubuliinnehåll i oligodendrocyterna och rekapitulerar de flesta sensoriska motoriska symtomen hos H-ABC-patienter17. Protokollet förklarar hur man avbildar strukturer som corpus callosum och lillhjärnan, som vanligtvis är mycket myeliniserade och som påverkas allvarligt hos mänskliga patienter såväl som i taiepråttan 19, för att belysa skillnaderna i SH-signaler mellan friska och mutanta vävnader.

Protocol

Alla beskrivna förfaranden gjordes i enlighet med de lagar och koder som godkänts i den sjunde titeln i förordningen om den allmänna hälsolagen om hälsoforskning från den mexikanska regeringen (NOM-062-ZOO-1999) och i enlighet med rekommendationerna från National Institutes of Health Guide for the Care and Use of Experimental Animals och godkändes av den institutionella kommittén för bioetik i forskning vid Universidad de Guanajuato och Benemérita Universidad Autónoma de Puebla. <s…

Representative Results

Bilderna som erhållits med denna metod har en inneboende låg bakgrundsnivå på grund av det mycket begränsade antalet harmonoforer som finns i biologiska vävnader, vilket är en av de betydande fördelarna med metoden. När fibrerna i corpus callosum avbildas kan fiberliknande korta strukturer och rundade element konsekvent hittas i taiep-hjärnan (figur 3B), medan corpus callosum i kontrollhjärnan visar en mycket mer heterogen och isotrop signal i …

Discussion

SHG-mikroskopi är en del av en grupp icke-linjära optiktekniker, som inkluderar tvåfotonexcitationsmikroskopi, tredje harmonisk generationsmikroskopi och koherent anti-Stokes Raman-spridningsmikroskopi, som har bidragit till att utöka utbudet av tillämpningar av konventionell optisk mikroskopi till livsvetenskaperna20.

Specifikt relaterar SHG-mikroskopins huvudsakliga styrka och svaghet till samma tillstånd: signalgeneratorn är icke-centrosymmetrisk<sup class="xr…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöddes av Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología (CONACYT) genom följande bidrag: infraestructura 226450 till VP-CIO, infraestructura 255277 till V.P. och FORDECYT-PRONACES/194171/2020 till V.H. Vi erkänner stödet från Juvenal Hernández Guevara på CIO i videoskapandet.

Materials

405/10 nm BrightLine(R) single-band bandpass filter  Semrock FF01-405/10-25 32 mm diameter, with housing ring
Black Nylon, Polyurethane-Coated Fabric Thorlabs BK5 5' x 9' (1.5 m x 2.7 m) x 0.005" (0.12 mm) Thick 
Blades for vibratome any commercial; e.g. Wilkinson Sword  Classic stainless steel double edge razor blades
Cell culture dishes, 35 mm any commercial; e.g. Falcon 351008
Confocal microscope Zeiss LSM710NLO AxioObserver Z1 Inverted microscope, objective used is LCI Plan-Neofluar 25x/0.8 NA 
Cooler any commercial Any insulated, polystyrene box could work, to mantain the sample at about 37 °C
Corn stach e.g. Maizena From the supermarket
Coverslips #1.5 any commercial Rectangular
Cyanoacrylate glue e.g. Loctite To glue the brain to the masking tape
Fine forceps fine science tools 11412-11 To manipulate tissue sections by handling from the meninges
Fine scissors fine science tools 14370-22 To cut the skin 
Fine scissors curved tip fine science tools 14061-09 To cut along the midline
Formaldehyde 37% Sigma-Aldrich 252549 To dilute 1:10 in PBS
Friedman Rongeur fine science tools 16000-14 To cut the bone
Gel packs any commercial Prewarmed to 37 °C, to help mantaining the temperature inside the cooler
Glass Pasteur pipette, modified any commercial To transfer the tissue section
Hanks′ Balanced Salt solution (HBSS) Gibco 14025-076 Could be prepared from powders
Kelly hemostats fine science tools 13018-14 To separate the bone 
Masking tape any commercial To protect th surface of the specimen plate
NDD module, type C Zeiss 000000-1410-101 To detect the signal, reducing light loss. Housing the 000000-1935-163 filter set with the SP485
Offset bone nippers fine science tools 16101-10 To cut the bone
Phosphate buffered saline (PBS) Gibco 10010-031 Could be prepared from powders or tabs
Pulsed laser Coherent Chameleon Vision II 680–1080 nm tunable laser
Scalpel any commercial Straight blade with sharp point
Standard pattern forceps fine science tools 11000-18
Vannas spring scissors fine science tools 15018-10 To cut meninges that remain joined to both the slice obtained from vibratome cutting and the section glued to the specimen plate.
Vibratome any commercial; e.g. Leica VT1200

Riferimenti

  1. Palmiter, R. D., et al. Cell lineage ablation in transgenic mice by cell-specific expression of a toxin gene. Cell. 50 (3), 435-443 (1987).
  2. Banerjee, A., et al. A monoclonal antibody against the type II isotype of beta-tubulin. Preparation of isotypically altered tubulin. The Journal of Biological Chemistry. 263 (6), 3029-3034 (1988).
  3. Banerjee, A., Roach, M. C., Trcka, P., Luduena, R. F. Preparation of a monoclonal antibody specific for the class IV isotype of beta-tubulin. Purification and assembly of alpha beta II, alpha beta III, and alpha beta IV tubulin dimers from bovine brain. The Journal of Biological Chemistry. 267 (8), 5625-5630 (1992).
  4. Banerjee, A., et al. Localization of βv tubulin in the cochlea and cultured cells with a novel monoclonal antibody. Cell Motility and the Cytoskeleton. 65 (6), 505-514 (2008).
  5. Cross, A. R., Williams, R. C. Kinky microtubules: Bending and breaking induced by fixation in vitro with glutaraldehyde and formaldehyde. Cell Motility and the Cytoskeleton. 20 (4), 272-278 (1991).
  6. Van Steenbergen, V., et al. Molecular understanding of label-free second harmonic imaging of microtubules. Nature Communications. 10 (1), 3530 (2019).
  7. Campagnola, P. J., Clark, H. A., Mohler, W. A., Lewis, A., Loew, L. M. Second-harmonic imaging microscopy of living cells. Journal of Biomedical Optics. 6 (3), 277 (2001).
  8. Campagnola, P. J., et al. Three-dimensional high-resolution second-harmonic generation imaging of endogenous structural proteins in biological tissues. Biophysical Journal. 82 (1), 493-508 (2002).
  9. Yu, C. -. H., et al. Measuring microtubule polarity in spindles with second-harmonic generation. Biophysical Journal. 106 (8), 1578-1587 (2014).
  10. Bancelin, S., et al. Probing microtubules polarity in mitotic spindles in situ using Interferometric Second Harmonic Generation Microscopy. Scientific Reports. 7, 6758 (2017).
  11. Dombeck, D. A., et al. Uniform polarity microtubule assemblies imaged in native brain tissue by second-harmonic generation microscopy. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 100 (12), 7081-7086 (2003).
  12. Psilodimitrakopoulos, S., et al. Estimation of the effective orientation of the SHG source in primary cortical neurons. Optics Express. 17 (16), 14418 (2009).
  13. Sharoukhov, D., Bucinca-Cupallari, F., Lim, H. Microtubule imaging reveals cytoskeletal deficit predisposing the retinal ganglion cell axons to atrophy in DBA/2J. Investigative Opthalmology & Visual Science. 59 (13), 5292 (2018).
  14. Alata, M., Piazza, V., Eguibar, J. R., Cortes, C., Hernandez, V. H. H-ABC tubulinopathy revealed by label-free second harmonic generation microscopy. Scientific Reports. 12, 14417 (2022).
  15. Duncan, I. D., Lunn, K. F., Holmgren, B., Urba-Holmgren, R., Brignolo-Holmes, L. The taiep rat: A myelin mutant with an associated oligodendrocyte microtubular defect. Journal of Neurocytology. 21 (12), 870-884 (1992).
  16. Duncan, I. D., et al. A mutation in the Tubb4a gene leads to microtubule accumulation with hypomyelination and demyelination: Tubb4a Mutation. Annals of Neurology. 81 (5), 690-702 (2017).
  17. Garduno-Robles, A., et al. MRI features in a rat model of H-ABC tubulinopathy. Frontiers in Neuroscience. 14, 555 (2020).
  18. Lopez-Juarez, A., et al. Auditory impairment in H-ABC tubulinopathy. Journal of Comparative Neurology. 529 (5), 957-968 (2021).
  19. Alata, M., et al. Longitudinal evaluation of cerebellar signs of H-ABC tubulinopathy in a patient and in the taiep model. Frontiers in Neurology. 12, 702039 (2021).
  20. Parodi, V., et al. Nonlinear optical microscopy: From fundamentals to applications in live bioimaging. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology. 8, 585363 (2020).
  21. Lefort, C. A review of biomedical multiphoton microscopy and its laser sources. Journal of Physics D: Applied Physics. 50 (42), 423001 (2017).
  22. Campagnola, P. J., Loew, L. M. Second-harmonic imaging microscopy for visualizing biomolecular arrays in cells, tissues and organisms. Nature Biotechnology. 21 (11), 1356-1360 (2003).
  23. vander Knaap, M. S., et al. New syndrome characterized by hypomyelination with atrophy of the basal ganglia and cerebellum. American Journal of Neuroradiology. 23 (9), 1466 (2002).
  24. Stoller, P., Kim, B. -. M., Rubenchik, A. M., Reiser, K. M., Da Silva, L. B. Polarization-dependent optical second-harmonic imaging of a rat-tail tendon. Journal of Biomedical Optics. 7 (2), 205 (2002).
  25. Brown, E. B., et al. In vivo measurement of gene expression, angiogenesis and physiological function in tumors using multiphoton laser scanning microscopy. Nature Medicine. 7 (7), 864-868 (2001).
  26. Chakraborti, S., Natarajan, K., Curiel, J., Janke, C., Liu, J. The emerging role of the tubulin code: From the tubulin molecule to neuronal function and disease. Cytoskeleton. 73 (10), 521-550 (2016).

Play Video

Citazione di questo articolo
Piazza, V., Alata, M., Hernandez, V. H., Eguibar, J. R., Cortes, C. Label-Free Non-Linear Optics for the Study of Tubulin-Dependent Defects in Central Myelin. J. Vis. Exp. (193), e63449, doi:10.3791/63449 (2023).

View Video