Summary

Analyser av proteinuri, renal infiltrasjon av leukocytter og nyreavsetning av proteiner i lupusutsatt MRL/lpr-mus

Published: June 08, 2022
doi:

Summary

Den nåværende protokollen beskriver en metode for å spore lupusprogresjon hos mus. Ytterligere to prosedyrer presenteres for å karakterisere lupus nefritt basert på celleinfiltrasjon og proteinavsetning i nyrene.

Abstract

Systemisk lupus erythematosus (SLE) er en autoimmun lidelse uten kjent kur og er preget av vedvarende betennelse i mange organer, inkludert nyrene. Under slike omstendigheter mister nyrene sin evne til å rense avfall fra blodet og regulere salt- og væskekonsentrasjoner, noe som til slutt fører til nyresvikt. Kvinner, spesielt de i fertil alder, diagnostiseres ni ganger oftere enn menn. Nyresykdom er den viktigste årsaken til dødelighet hos SLE-pasienter. Denne protokollen beskriver en rask og enkel metode for å måle utskilte proteinnivåer i innsamlet urin, og spore lupusprogresjon over tid. I tillegg er en tilnærming til å isolere mononukleære nyreceller gitt basert på størrelse og tetthetsvalg for å undersøke nyreinfiltrasjon av leukocytter. Videre er det utviklet en immunhistokjemisk metode for å karakterisere proteinavsetning i glomeruli- og leukocyttinfiltrasjon i tubulointerstitiell plass. Sammen kan disse metodene bidra til å undersøke utviklingen av kronisk betennelse assosiert med nyrene til lupus-utsatte MRL / lpr-mus.

Introduction

Nyrenes primære funksjon er eliminering av giftige stoffer gjennom urin samtidig som homeostase av vann ogsalter opprettholdes. Denne funksjonen er truet hos pasienter med systemisk lupus erythematosus (SLE), som fører til såkalt lupus nefritt (LN). LN er en konsekvens av at immunsystemet angriper nyrene, noe som fører til vedvarende nyrebetennelse, og mister derfor evnen til å rense avfall fra blodet og regulere salt- og væskekonsentrasjoner. Dette vil til slutt føre til nyresvikt, noe som kan være dødelig. Under den nefritiske prosessen rekrutteres sirkulerende B-celler, T-celler og monocytter til nyrene, utskiller kjemokiner, cytokiner og immunkompleksdannende autoantistoffer. Dette resulterer til slutt i endotelcelleskade, membranøse skader, nyretubulær atrofi og fibrose2.

MRL/Mp-Fas lpr (MRL/lpr) lupusutsatte mus er en klassisk musemodell som viser lupuslignende kliniske tegn som ligner menneskelig SLE3. Denne modellen har vært medvirkende til å forstå en av de viktigste årsakene til dødelighet hos SLE-pasienter, lupus nefritt (LN)4. I både human og mus SLE er LN preget av gradvis betennelse utløst av nyreavsetning av immunkomplekser, etterfulgt av komplementaktivering, rekruttering av inflammatoriske celler og tap av nyrefunksjon5. Immunkompleksavsetningen er det første skrittet for å indusere kjemokin- og cytokinproduksjon av inneboende nyreceller, som utvider den inflammatoriske responsen ved å rekruttere immunceller6. Den nåværende protokollen presenterer flere teknikker for å følge nyresykdomsprogresjon som analyserer celleinfiltrasjon og immunkompleksavsetning.

Urin samlet hver uke muliggjør deteksjon og visualisering av tidsforløpet av proteinuri før, under og etter lupusutbrudd. Proteinuri som biomarkør kan bestemme den biologiske progresjonen av LN. Andre fordeler med denne teknikken er at den er ikke-invasiv, kostnadseffektiv og enkel å implementere7. Når nyrene fungerer perfekt, er proteinurinivået konsekvent lavt; Hos MRL/LPR-mus, etter 8-9 ukers alder, observeres imidlertid en gradvis økning av proteinurinivået, som til slutt er høyt nok til å forårsake nyresvikt8. Flere reagensstrimler og kolorimetriske reagenser er kommersielt tilgjengelige for å overvåke problemet. Bradford-analysen er imidlertid billig og svært nøyaktig for å bestemme utbruddet av proteinuri og løpet av lupus nephritis. Denne analysen er rask, og reagenset påvirkes ikke av tilstedeværelsen av løsningsmidler, buffere, reduksjonsmidler og metallchelaterende midler som kan være i prøven 9,10,11.

Et viktig aspekt å vurdere er celleinfiltrasjon i nyrene. Disse infiltratratene fremmer patogenesen ved å utløse sekresjon av oppløselige faktorer som cytokiner for å forverre betennelse12. For bedre å forstå hvilke cellepopulasjoner som er tilstede i infiltratene, er en nyttig metode å isolere leukocytter13. Her brukes deteksjon av nyreinfiltrasjon av B-celler som et eksempel. Prosedyren begynner med en fordøyelsesprosess med deoksyribonuklease (DNase) og kollagenase, etterfulgt av tetthetsgradientseparasjon som fjerner rusk, røde blodlegemer og tette granulocytter. Årsaken til å isolere B-celler (CD19+) og plasmaceller (CD138+) er at lupus nyrer kan konsentrere disse cellene14. Det foreslås at tilstedeværelsen av B-celler i små aggregater i nyrene kan indikere klonal ekspansjon og følgelig immunoglobulin (Ig) produksjon. Plasmaceller er velkjente for å være til stede i disse aggregatene også15. Når leukocytter er isolert, kan fluorescensaktivert cellesortering (FACS) brukes til å analysere cellene av interesse ved farging med forskjellige fluorescenskonjugerte antistoffer.

Immunfluorescens er en av immunhistokjemi (IHC) deteksjonsmetoder som muliggjør fluorescerende visualisering av proteiner i 4 μm tykke nyrevevsprøver. Andre IHC-deteksjonsmetoder avhenger av arten av analytter, bindingskjemi og andre faktorer16. Immunfluorescens er en rask identifikasjonsmetode som utsetter antigenet for dets motpartsantistoff merket med et spesifikt fluorokrom (eller et fluorescerende fargestoff). Når den er opphisset, produserer den lys som et fluorescensmikroskop kan oppdage. Denne teknikken kan brukes til å observere avsetningen av komplement C3 og IgG2a17. Overdreven komplementkaskadeaktivering kan være forbundet med en ukontrollert immunrespons og tap av funksjon18. Immunavsetning av anti-dobbeltstrenget DNA (anti-dsDNA) autoantistoffer i nyrene er en stor bekymring19, hvor de med IgG2a isotype har vært assosiert med LN20. Spesielt viser anti-dsDNA-antistoffer mer patogenitet og affinitet til nukleære materialer, og danner immunkomplekser21. Når IgG2a er tilstede, aktiveres komplementkaskaden, inkludert C3, for å fjerne immunkompleksene22. C3- og IgG2a-markørene kan kvantifiseres individuelt eller overlappes for å fastslå korrelasjonen.

Spesielt er serumkreatininmåling en annen pålitelig teknikk som kan brukes sammen med mikroskopisk hematuri og nyrebiopsier for å diagnostisere LN23. Tilstedeværelsen av proteinuri er imidlertid en sterk indikator på glomerulær skade. I den forstand kan overvåking av proteinurinivået under lupus oppdage sykdomsutbrudd og utfylle andre metoder for å diagnostisere lupus. I tillegg kan immunkomplekser avsatt i glomeruli indusere en inflammatorisk respons, aktivere komplementsystemet og rekruttere flere inflammatoriske celler. Et annet bemerkelsesverdig poeng med denne protokollen er B-celleinfiltrasjon i nyrene. Dette, sammen med de infiltrerte T-cellene, forsterker lokale immunresponser som utløser organskade. Det er viktig at klassifiseringen av LN ikke bare er basert på glomerulære morfologiske endringer sett i mikroskopi, men også immunavsetninger observert med immunfluorescens. Derfor, i denne protokollen, tilbys nøyaktige og kostnadseffektive metoder for analyse av nyrefunksjon i laboratorieinnstillinger.

Protocol

Denne protokollen er godkjent av Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) ved Virginia Tech. Siden lupussykdom har høyere forekomst hos kvinner, ble det kun brukt MRL/LPR-mus hos kvinner. Prøvesamlingen ble startet ved 4 ukers alder og avsluttet ved 15 uker. Musene ble hentet fra kommersielle kilder (se Materialtabell) og ble avlet og vedlikeholdt i et spesifikt patogenfritt miljø etter de institusjonelle retningslinjene. 1. Proteinuri test <ol…

Representative Results

Protokollen bruker flere metoder for å vurdere MRL / lpr mus for lupus nefritt. Først beskrives en prosedyre for å studere økte proteinurinivåer på grunn av nyresvikt over tid. Som vist i figur 1 ble hunnmus behandlet med oral gavage på 200 μL fosfatbufret saltvann (1x PBS) som kontrollgruppe og probiotisk Lactobacillus reuteri som behandlingsgruppe, i en konsentrasjon på 109 cfu/ml, to ganger i uken. Behandlingen startet ved 3 ukers alder og avsluttet ved 15 uke…

Discussion

LN er en ledende dødsårsak hos SLE-pasienter, og faktorer som forverrer sykdommen er fortsatt uklare. Anvendelsen av denne protokollen er å karakterisere nyrefunksjonen ved hjelp av flere metoder, inkludert måling av proteinuri, FACS-analyse av isolerte nyreleukocytter og immunfluorescensfarging av frosne nyreseksjoner.

Et viktig poeng å vurdere når du samler urin er at man må være konsistent med tidspunktet på dagen og plasseringen av urinsamlingen. Mus er nattdyr, så de mest nøyak…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker Flow Cytometry Core Facility, Histopathology Laboratory, Fralin Imaging Center ved Virginia Polytechnic Institute og State University for teknisk støtte. Dette arbeidet støttes av ulike NIH og interne tilskudd.

Materials

10x Tris-Buffered Saline (TBS) Thermo Fisher Scientific J60764.K2
2-mercaptoethanol Thermo Fisher Scientific 21985-023
Anti-Human/Mouse C3 Cedarlane CL7632F
Anti-Mouse CD138 BV711 Biolegend 142519
Anti-Mouse CD45 AF700 Biolegend 103127
Bovine Serum Albumin Sigma-Aldrich A9418-100G
Collagenase D Sigma-Aldrich 11088882001
Confocal Microscope LSM 880 Zeiss LSM 880
Coplin jar Fisher Scientific 50-212-281
Cryomold Fisher Scientific NC9511236
Density gradient medium GE Healthcare 17-1440-02 Percoll
DEPC-Treated water Thermo Fisher Scientific AM9906
DNase I Sigma-Aldrich D4527
dsDNA-EC InvivoGen tlrl-ecdna
Ethylenediaminetetraacetic Acid Fisher Scientific S311-500 EDTA
EVOS M5000 Microscope imaging system Thermo Fisher Scientific AMF5000
FACS Fusion Cell sorter BD Biosciences FACS Fusion
Fetal Bovine Serum – Premium, Heat Inactivated R&D systems S11150H
Fisherbrand 96-Well Polystyrene Plates Fisher Scientific 12-565-501
Graphpad prism GraphPad N/A
Hank’s Balanced Salt Solution Thermo Fisher Scientific 14175-079
HEPES Thermo Fisher Scientific 15630-080
ImageJ software National Institutes of Health N/A
Lactobacillus reuteri Kandler et al. ATCC 23272
MEM non-essential amino acids Thermo Fisher Scientific 11140-050
MRL/MpJ-Fas lpr /J Mice (MRL/lpr) Jackson Lab 485
Nail enamel N/A N/A Any conventional store
O.C.T compound Tisse-Tek 4583
PAP pen Sigma-Aldrich Z377821
Peel-A-Way Disposable Embedding Molds Polysciences R-30
Penicillin-Streptomycin Thermo Fisher Scientific 15140-122
Phosphate-buffered saline (PBS) Thermo Fisher Scientific 70011069
Pierce 20x TBS Buffer Thermo Fisher Scientific 28358
Pierce Coomassie Plus (Bradford) Assay kit Thermo Fisher Scientific 23236 Albumin standard included
ProLon Gold Antifade Mountant ThermoFisher P36934
Purified Rat Anti-Mouse CD16/CD32 BD Biosciences 553141 FcR block
RPMI 1640 Thermo Fisher Scientific 11875-093
Sodium pyruvate Thermo Fisher Scientific 11360-070
SpectraMax M5 Molecular Devices N/A SoftMax Pro 6.1 software
Sterile cell Strainers 100 µM Fisher Scientific 22363549
Tween 20 Fisher Scientific BP337-500
Vancomycin Hydrochloride Goldbio V-200-1
Zombie Aqua Biolegend 423102 fluorescent dye for flow cytometry analysis

Riferimenti

  1. Tsokos, G. C. Systemic Lupus Erythematosus. New England Journal of Medicine. 365 (22), 2110-2121 (2011).
  2. Davidson, A., Aranow, C. Lupus nephritis: lessons from murine models. Nature Reviews Rheumatology. 6 (1), 13-20 (2010).
  3. Maldonado, M. A., et al. The role of environmental antigens in the spontaneous development of autoimmunity in MRL-lpr mice. Journal of Immunology. 162 (11), 6322-6330 (1999).
  4. Lech, M., Anders, H. J. The pathogenesis of lupus nephritis. Journal of the American Society of Nephrology. 24 (9), 1357-1366 (2013).
  5. Bagavant, H., Fu, S. M. Pathogenesis of kidney disease in systemic lupus erythematosus. Current Opinion in Rheumatology. 21 (5), 489-494 (2009).
  6. Li, Q. Z., et al. Identification of autoantibody clusters that best predict lupus disease activity using glomerular proteome arrays. Journal of Clinical Investigation. 115 (12), 3428-3439 (2005).
  7. Aragón, C. C., et al. Urinary biomarkers in lupus nephritis. Journal of Translational Autoimmunity. 3, 100042 (2020).
  8. Mu, Q., et al. Control of lupus nephritis by changes of gut microbiota. Microbiome. 5 (1), 73 (2017).
  9. Lu, T. -. S., Yiao, S. -. Y., Lim, K., Jensen, R. V., Hsiao, L. -. L. Interpretation of biological and mechanical variations between the Lowry versus Bradford method for protein quantification. North American Journal of Medical Sciences. 2 (7), 325-328 (2010).
  10. Lamb, E. J., MacKenzie, F., Stevens, P. E. How should proteinuria be detected and measured. Annals of Clinical Biochemistry. 46, 205-217 (2009).
  11. Viswanathan, G., Upadhyay, A. Assessment of proteinuria. Advances in Chronic Kidney Disease. 18 (4), 243-248 (2011).
  12. Hsieh, C., et al. Predicting outcomes of lupus nephritis with tubulointerstitial inflammation and scarring. Arthritis Care & Research. 63 (6), 865-874 (2011).
  13. Hill, G. S., Delahousse, M., Nochy, D., Mandet, C., Bariéty, J. Proteinuria and tubulointerstitial lesions in lupus nephritis. Kidney International. 60 (5), 1893-1903 (2001).
  14. Chang, A., et al. In situ B cell-mediated immune responses and tubulointerstitial inflammation in human lupus nephritis. Journal of Immunology. 186 (3), 1849-1860 (2011).
  15. Schrezenmeier, E., Jayne, D., Dörner, T. Targeting B Cells and plasma cells in glomerular diseases: translational perspectives. Journal of the American Society of Nephrology. 29 (3), 741 (2018).
  16. Fitzgibbons, P. L., et al. Principles of analytic validation of immunohistochemical assays: Guideline from the college of American pathologists pathology and laboratory quality center. Archives of Pathology & Laboratory Medicine. 138 (11), 1432-1443 (2014).
  17. Lewis, M. J., Botto, M. Complement deficiencies in humans and animals: links to autoimmunity. Autoimmunity. 39 (5), 367-378 (2006).
  18. Watanabe, H., et al. Modulation of renal disease in MRL/lpr mice genetically deficient in the alternative complement pathway factor B. Journal of Immunology. 164 (2), 786-794 (2000).
  19. Yin, Z., et al. IL-10 regulates murine lupus. Journal of Immunology. 169 (4), 2148-2155 (2002).
  20. Singh, R. R., et al. Differential contribution of IL-4 and STAT6 vs STAT4 to the development of lupus nephritis. Journal of Immunology. 170 (9), 4818-4825 (2003).
  21. van Bavel, C. C., Fenton, K. A., Rekvig, O. P., vander Vlag, J., Berden, J. H. Glomerular targets of nephritogenic autoantibodies in systemic lupus erythematosus. Arthritis & Rheumatism. 58 (7), 1892-1899 (2008).
  22. Zuniga, R., et al. Identification of IgG subclasses and C-reactive protein in lupus nephritis: the relationship between the composition of immune deposits and FCgamma receptor type IIA alleles. Arthritis & Rheumatism. 48 (2), 460-470 (2003).
  23. Wang, S., Wang, F., Wang, X., Zhang, Y., Song, L. Elevated creatinine clearance in lupus nephritis patients with normal creatinine. International Journal of Medical Sciences. 18 (6), 1449-1455 (2021).
  24. Bradford, M. M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical Biochemistry. 72 (1), 248-254 (1976).
  25. Cabana-Puig, X., et al. Phenotypic drift in lupus-prone MRL/lpr Mice: potential roles of micrornas and gut microbiota. Immunohorizons. 6 (1), 36-46 (2022).
  26. Wang, S., Wang, F., Wang, X., Zhang, Y., Song, L. Elevated creatinine clearance in lupus nephritis patients with normal creatinine. International Journal of Medical Sciences. 18 (6), 1449-1455 (2021).
  27. Kienzle, N., Young, D., Zehntner, S., Bushell, G., Sculley, T. B. DNaseI treatment is a prerequisite for the amplification of cDNA from episomal-based genes. Biotechniques. 20 (4), 612-616 (1996).
  28. Park, J. G. -., et al. Immune cell composition in normal human kidneys. Scientific Reports. 10 (1), 15678 (2020).
  29. Im, K., Mareninov, S., Diaz, M. F. P., Yong, W. H. An introduction to performing immunofluorescence staining. Methods in Molecular Biology. 1897, 299-311 (2019).
  30. Okutucu, B., Dınçer, A., Habib, &. #. 2. 1. 4. ;., Zıhnıoglu, F. Comparison of five methods for determination of total plasma protein concentration. Journal of Biochemical and Biophysical Methods. 70 (5), 709-711 (2007).
check_url/it/63506?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Cabana-Puig, X., Luo, X. M. Analyses of Proteinuria, Renal Infiltration of Leukocytes, and Renal Deposition of Proteins in Lupus-prone MRL/lpr Mice. J. Vis. Exp. (184), e63506, doi:10.3791/63506 (2022).

View Video