Summary

Modelo Cirúrgico de Insuficiência Cardíaca com Fração de Ejeção Preservada em Miniporcos Tibetanos

Published: February 18, 2022
doi:

Summary

O presente protocolo descreve um procedimento passo a passo para estabelecer um modelo miniporco de insuficiência cardíaca com fração de ejeção preservada usando constrição da aorta descendente. Os métodos para avaliação da morfologia, histologia e função cardíaca desse modelo de doença também são apresentados.

Abstract

Mais da metade dos casos de insuficiência cardíaca (IC) são classificados como insuficiência cardíaca com fração de ejeção preservada (ICFEP) em todo o mundo. Modelos animais de grande porte são limitados para investigar os mecanismos fundamentais da ICFEP e identificar potenciais alvos terapêuticos. Este trabalho fornece uma descrição detalhada do procedimento cirúrgico de constrição da aorta descendente (DAC) em miniporcos tibetanos para estabelecer um modelo animal de grande porte de ICFEP. Esse modelo utilizou uma constrição precisamente controlada da aorta descendente para induzir sobrecarga pressórica crônica no ventrículo esquerdo. O ecocardiograma foi utilizado para avaliar as alterações morfológicas e funcionais do coração. Após 12 semanas de estresse na DAC, o septo ventricular estava hipertrófico, mas a espessura da parede posterior estava significativamente reduzida, acompanhada de dilatação do ventrículo esquerdo. Entretanto, a fração de ejeção do VE dos corações modelo foi mantida em >50% durante o período de 12 semanas. Além disso, o modelo DAC exibiu dano cardíaco, incluindo fibrose, inflamação e hipertrofia de cardiomiócitos. Os marcadores de insuficiência cardíaca estavam significativamente elevados no grupo DAC. Esta ICFEP induzida por DAC em miniporcos é uma ferramenta poderosa para investigar mecanismos moleculares desta doença e para testes pré-clínicos.

Introduction

A insuficiência cardíaca com fração de ejeção preservada (ICFEP) é responsável por mais da metade dos casos de insuficiência cardíaca e tornou-se um problema de saúde pública mundial1. Observações clínicas indicaram várias características críticas da ICFEP: (1) disfunção diastólica ventricular, acompanhada de aumento da rigidez sistólica, (2) fração de ejeção normal em repouso com prejuízo no desempenho do exercício e (3) remodelação cardíaca2. Os mecanismos propostos incluem desregulação hormonal, inflamação microvascular sistêmica, distúrbios metabólicos e anormalidades nas proteínas do sarcomérico e da matriz extracelular3. Entretanto, estudos experimentais têm demonstrado que a insuficiência cardíaca com fração de ejeção reduzida (ICDS) causa essas alterações. Estudos clínicos têm explorado os efeitos terapêuticos dos inibidores dos receptores da angiotensina e de fármacos no tratamento da ICDS na ICFEP 4,5. No entanto, abordagens terapêuticas únicas para ICFEP são necessárias. Em comparação com a compreensão dos sintomas clínicos, as alterações na patologia, bioquímica e biologia molecular da ICFEP permanecem pouco definidas.

Modelos animais de ICFEP têm sido desenvolvidos para explorar mecanismos, marcadores diagnósticos e abordagens terapêuticas. Animais de laboratório, incluindo porcos, cães, ratos e camundongos, podem desenvolver ICFEP, e diversos fatores de risco, incluindo hipertensão, diabetes mellitus e envelhecimento, foram selecionados como fatores de indução 6,7. Por exemplo, acetato de deoxicorticosterona, isolado ou combinado com dieta rica em gordura/açúcar, induz ICFEP em suínos 8,9. A sobrecarga de pressão ventricular é outra técnica utilizada para o desenvolvimento da ICFEP em modelos de animais de grande e pequeno porte10. Além disso, valores de corte específicos de FE para definir ICFEP têm sido adotados em todos os continentes nos últimos anos, como visto nas diretrizes da Sociedade Europeia de Cardiologia, American College of Cardiology Foundation/American Heart Association11, Japanese Circulation Society/Japanese Heart Failure Society12. Assim, muitos modelos previamente estabelecidos podem se tornar apropriados para estudos de ICFEP se os critérios clínicos forem adotados. Por exemplo, Youselfi et al., afirmaram que uma linhagem de camundongos geneticamente modificada, Col4a3-/-, era um modelo eficaz de HFpEF. Essa cepa desenvolveu sintomas cardíacos típicos da ICFEP, como disfunção diastólica, disfunção mitocondrial e remodelamento cardíaco13. Um estudo anterior utilizou uma dieta de alta energia para induzir remodelação cardíaca com uma faixa média de FE em macacos idosos14, caracterizada por distúrbio metabólico, fibrose e redução da actomiosina MgATPase no miocárdio. A constrição aórtica transversa (TAC) de camundongos é um dos modelos mais utilizados para mimetizar a cardiomiopatia ventricular induzida por hipertensão. O ventrículo esquerdo evolui de hipertrofia concêntrica com aumento da FE para remodelamento dilatado com redução da FE15,16. Os fenótipos transicionais entre esses dois estágios típicos sugerem que a técnica de constrição aórtica pode ser usada para estudar a ICFEP.

As características patológicas, a sinalização celular e os perfis de RNAm de um modelo suíno de ICFEP foram previamente publicados17. Aqui, um protocolo passo-a-passo é apresentado para estabelecer esse modelo e as abordagens para avaliar os fenótipos desse modelo. O procedimento está ilustrado na Figura 1. Resumidamente, o plano cirúrgico foi feito em conjunto pelo pesquisador principal, cirurgiões, técnicos de laboratório e equipe de cuidados com os animais. Os miniporcos foram submetidos a exames de saúde, incluindo exames bioquímicos e ecocardiografia. Após a cirurgia, foram realizados procedimentos anti-inflamatórios e analgésicos. Ecocardiografia, exame histológico e biomarcadores foram utilizados para avaliar os fenótipos.

Protocol

Todos os estudos em animais foram aprovados pelo Comitê Institucional de Cuidados e Uso de Animais do Instituto de Monitoramento de Animais de Laboratório de Guangdong (aprovação nº. IACUC2017009). Todos os experimentos com animais foram realizados seguindo o Guide for the Care and Use of Laboratory Animals (8th Ed., 2011, The National Academies, EUA). Os animais foram alojados em uma instalação credenciada pela AAALAC no Instituto de Monitoramento de Animais de Laboratório de Guangdong (licença nº. SYXK (YUE) …

Representative Results

EcocardiografiaA estrutura e a função cardíaca foram avaliadas nas semanas 0, 2, 4, 6, 8, 10 e 12. Os registros em modo B e modo M da visão paraesternal de eixo curto são exibidos na Figura 4A. A medida ecocardiográfica incluiu espessura do septo ventricular (VST), espessura da parede posterior (PWT) e dimensão interna do ventrículo esquerdo (LVID). O TEV no final da diástole aumentou nos corações DAC, enquanto o PWT no final da diástole aumentou e depois dim…

Discussion

Este estudo utilizou técnicas de DAC para desenvolver um modelo de HFpEF para miniporcos tibetanos. Um protocolo passo a passo de preparo de animais e instrumentos é apresentado aqui, incluindo sedação, intubação traqueal, canulação venosa, procedimento cirúrgico e cuidados pós-cirúrgicos. As técnicas de registro das imagens ecocardiográficas do coração modo B e modo M também são apresentadas. Após a DAC, o coração sofreu hipertrofia ventricular esquerda durante as semanas 4 e 6 e dilatação após a …

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabalho foi apoiado pelo Programa de Ciência e Tecnologia de Guangdong (2008A08003, 2016A020216019, 2019A030317014), pelo Programa de Ciência e Tecnologia de Guangzhou (201804010206), pela Fundação Nacional de Ciências Naturais da China (31672376, 81941002) e pelo Laboratório Chave de Animais de Laboratório da Província de Guangdong (2017B030314171).

Materials

Absorbable surgical suture Putong Jinhua Medical Co. Ltd, China 4-0
Aesthesia ventilator station Shenzhen Mindray Bio-Medical Electronics Co., Ltd, China WATO EX-35vet
Aspirator Shanghai Baojia Medical Apparatus Co., Ltd, China YX930D
Benzylpenicillin Sichuan Pharmaceutical. INC, China H5021738
Disposal endotracheal tube with cuff Shenzhen Verybio Co., Ltd, China 20 cm, ID 0.9
Disposal transducer Guangdong Baihe Medical Technology Co., Ltd, China
Dissection blade Shanghai Medical Instruments (Group) Co., Ltd, China
Electrocautery Shanghai Hutong Medical Instruments (Group) Co., Ltd, China GD350-B
Enzyme-linked immunosorbent assay ELISA kit Cusabio Biotech Co., Ltd, China CSB-E08594r
Eosin Sigma-Aldrich Corp. E4009
Flunixin meglumine Shanghai Tongren Pharmaceutical Co., Ltd., China Shouyaozi(2012)-090242103
Forceps Shanghai Medical Instruments (Group) Co., Ltd.,China
Hematoxylin Sigma-Aldrich Corp. H3136
Isoflurane RWD Life Science Co., Ltd, China Veteasy for animals
Laryngoscope Taixing Simeite Medical Apparatus and Instruments Limited Co., Ltd, China For adults
LED surgical lights Mingtai Medical Group, China ZF700
Microplate reader Thermo Fisher Scientific, USA Multiskan FC
Microscope Leica, Germany DM2500
Mobile restraint unit Customized N/A A mobile restraint unit, made by metal frame and wheels, with a canvas cover
Oxygen Local suppliers, Guangzhou, China
Paraformaldehyde Sigma-Aldrich Corp. V900894
Patient monitor Shenzhen Mindray Bio-Medical Electronics Company, China Beneview T5
Peripheral Intravenous (IV) Catheter Shenzhen Yima Pet Industry Development Co., Ltd., China 26G X 16 mm
Propofol Guangdong Jiabo Phamaceutical Co., Ltd. H20051842
Rib retractor Shanghai Medical Instruments (Group) Co., Ltd.,China
Ruler Deli Manufacturing Company, China
Scalpel handles Shanghai Medical Instruments (Group) Co., Ltd.,China
Scissors (g) Shanghai Medical Instruments (Group) Co., Ltd.,China
Suture Medtronic-Coviden Corp. 3-0, 4-0
Ultrasonic gel Tianjin Xiyuansi Production Institute, China TM-100
Veterinary monitor Shenzhen Mindray Bio-Medical Electronics Company, China ePM12M Vet
Veterinary ultrasound system Esatoe, Italy MyLab30 Equiped with phased array transducer (3-8 Hz)
Xylazine hydrochloride injection Shenda Animal Phamarceutical Co., Ltd., China Shouyaozi(2016)-07003
Zoletil injection Virbac, France Zoletil 50 Tiletamine and zolazepam for injection

Riferimenti

  1. Dunlay, S. M., Roger, V. L., Redfield, M. M. Epidemiology of heart failure with preserved ejection fraction. Nature Reviews Cardiology. 14 (10), 591-602 (2017).
  2. Redfield, M. M. Heart failure with preserved ejection fraction. New England Journal of Medicine. 375 (19), 1868-1877 (2016).
  3. Lam, C. S. P., Voors, A. A., de Boer, R. A., Solomon, S. D., van Veldhuisen, D. J. Heart failure with preserved ejection fraction: From mechanisms to therapies. European Heart Journal. 39 (30), 2780-2792 (2018).
  4. Solomon, S. D., et al. Angiotensin receptor neprilysin inhibition in heart failure with preserved ejection fraction: Rationale and design of the PARAGON-HF trial. JACC-Heart Failure. 5 (7), 471-482 (2017).
  5. Cunningham, J. W., et al. Effect of sacubitril/valsartan on biomarkers of extracellular matrix regulation in patients with HFpEF. Journal of the American College of Cardiology. 76 (5), 503-514 (2020).
  6. Conceição, G., Heinonen, I., Lourenço, A. P., Duncker, D. J., Falcão-Pires, I. Animal models of heart failure with preserved ejection fraction. Netherlands Heart Journal. 24 (4), 275-286 (2016).
  7. Noll, N. A., Lal, H., Merryman, W. D. Mouse models of heart failure with preserved or reduced ejection fraction. American Journal of Pathology. 190 (8), 1596-1608 (2020).
  8. Schwarzl, M., et al. A porcine model of hypertensive cardiomyopathy: Implications for heart failure with preserved ejection fraction. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 309 (9), 1407-1418 (2015).
  9. Reiter, U., et al. Early-stage heart failure with preserved ejection fraction in the pig: A cardiovascular magnetic resonance study. Journal of Cardiovascular Magnetic Resonance. 18 (1), 63 (2016).
  10. Silva, K. A. S., et al. Tissue-specific small heat shock protein 20 activation is not associated with traditional autophagy markers in Ossabaw swine with cardiometabolic heart failure. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 319 (5), 1036-1043 (2020).
  11. Ponikowski, P., et al. 2016 ESC Guidelines for the diagnosis and treatment of acute and chronic heart failure: The Task Force for the diagnosis and treatment of acute and chronic heart failure of the European Society of Cardiology (ESC)Developed with the special contribution of the Heart Failure Association (HFA) of the ESC. European Heart Journal. 37 (27), 2129-2200 (2016).
  12. Tsutsui, H., et al. JCS 2017/JHFS 2017 guideline on diagnosis and treatment of acute and chronic heart failure – Digest version. Circulation Journal. 83 (10), 2084-2184 (2019).
  13. Yousefi, K., Dunkley, J. C., Shehadeh, L. A. A preclinical model for phenogroup 3 HFpEF. Aging (Albany NY). 11 (13), 4305-4307 (2019).
  14. Zheng, S., et al. Aged monkeys fed a high-fat/high-sugar diet recapitulate metabolic disorders and cardiac contractile dysfunction. Journal of Cardiovascular Translational Research. 14 (5), 799-815 (2021).
  15. Shirakabe, A., et al. Drp1-dependent mitochondrial autophagy plays a protective role against pressure overload-induced mitochondrial dysfunction and heart failure. Circulation. 133 (13), 1249-1263 (2016).
  16. Zhabyeyev, P., et al. Pressure-overload-induced heart failure induces a selective reduction in glucose oxidation at physiological afterload. Cardiovascular Research. 97 (4), 676-685 (2013).
  17. Tan, W., et al. A porcine model of heart failure with preserved ejection fraction induced by chronic pressure overload characterized by cardiac fibrosis and remodeling. Frontiers in Cardiovascular Medicine. 8, 677727 (2021).
  18. Beznak, M. Changes in heart weight and blood pressure following aortic constriction in rats. Canadian Journal of Biochemistry and Physiology. 33 (6), 995-1002 (1955).
  19. Bikou, O., Miyashita, S., Ishikawa, K. Pig model of increased cardiac afterload induced by ascending aortic banding. Methods in Molecular Biology. 1816, 337-342 (2018).
  20. Hiemstra, J. A., et al. Chronic low-intensity exercise attenuates cardiomyocyte contractile dysfunction and impaired adrenergic responsiveness in aortic-banded mini-swine. Journal of Applied Physiology. 124 (4), 1034-1044 (2018).
  21. Massie, B. M., et al. Myocardial high-energy phosphate and substrate metabolism in swine with moderate left ventricular hypertrophy. Circulation. 91 (6), 1814-1823 (1995).
  22. Melleby, A. O., et al. A novel method for high precision aortic constriction that allows for generation of specific cardiac phenotypes in mice. Cardiovascular Research. 114 (12), 1680-1690 (2018).
  23. Charles, C. J., et al. A porcine model of heart failure with preserved ejection fraction: magnetic resonance imaging and metabolic energetics. ESC Heart Failure. 7 (1), 92-102 (2020).
  24. Olver, T. D., et al. Western, diet-fed, aortic-banded ossabaw swine: A Preclinical model of cardio-metabolic heart failure. JACC Basic to Translational Science. 4 (3), 404-421 (2019).
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Citazione di questo articolo
Li, X., Tan, W., Li, X., Zheng, S., Zhang, X., Chen, H., Pan, Z., Zhu, C., Yang, F. H. A Surgical Model of Heart Failure with Preserved Ejection Fraction in Tibetan Minipigs. J. Vis. Exp. (180), e63526, doi:10.3791/63526 (2022).

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