Summary

Mesure continue à long terme du débit sanguin rénal chez les rats conscients

Published: February 08, 2022
doi:

Summary

Le présent protocole décrit une mesure continue à long terme du débit sanguin rénal chez des rats conscients et l’enregistrement simultané de la pression artérielle avec des cathéters implantés (remplis de liquide ou par télémétrie).

Abstract

Les reins jouent un rôle crucial dans le maintien de l’homéostasie des fluides corporels. La régulation du débit sanguin rénal (FBR) est essentielle aux fonctions vitales de filtration et de métabolisme de la fonction rénale. De nombreuses études aiguës ont été réalisées chez des animaux anesthésiés pour mesurer le FBR dans diverses conditions afin de déterminer les mécanismes responsables de la régulation de la perfusion rénale. Cependant, pour des raisons techniques, il n’a pas été possible de mesurer la FBR en continu (24 h/jour) chez des rats non anesthésiés non retenus sur des périodes prolongées. Ces méthodes permettent la détermination continue de la FBR pendant plusieurs semaines tout en enregistrant simultanément la pression artérielle (PA) avec des cathéters implantés (remplis de liquide ou par télémétrie). La surveillance du FBR est effectuée avec des rats placés dans une cage à rats circulaire servo-contrôlée qui permet le mouvement sans retenue du rat tout au long de l’étude. Dans le même temps, l’emmêlement des câbles de la sonde d’écoulement et des cathéters artériels est empêché. Les rats sont d’abord instrumentés avec un placement de sonde d’écoulement ultrasonique sur l’artère rénale gauche et un cathéter artériel implanté dans l’artère fémorale droite. Ceux-ci sont acheminés par voie sous-cutanée vers la nuque et connectés au débitmètre et au transducteur de pression, respectivement, pour mesurer le FBR et la PA. Après l’implantation chirurgicale, les rats sont immédiatement placés dans la cage pour récupérer pendant au moins une semaine et stabiliser les enregistrements de la sonde à ultrasons. La collecte d’urine est également réalisable dans ce système. Les procédures chirurgicales et post-chirurgicales pour la surveillance continue sont démontrées dans ce protocole.

Introduction

Les reins ne représentent que 0,5% du poids corporel mais sont riches en flux sanguin, recevant 20% à 25% du débit cardiaque total1. La régulation du débit sanguin rénal (FBR) est essentielle à la fonction rénale, aux fluides corporels et à l’homéostasie électrolytique. L’importance de la régulation du flux sanguin vers le rein est bien illustrée par l’augmentation substantielle de la FBR dans le rein restant après néphrectomie unilatérale 2,3,4 et par les réductions de FBR qui se produisent dans l’insuffisance rénale 5,6,7. Il a été difficile de déterminer si de tels changements dans le FBR se produisent en réponse à des altérations de la fonction rénale ou à une diminution de la fonction due à une réduction de la FBR chez des animaux ou des sujets humains anesthésiés préparés chirurgicalement. Des études temporelles sont nécessaires dans lesquelles les événements peuvent être déterminés avant et après un changement défini et observés chez le même animal au cours de la progression des événements. Dans les études animales et humaines, la FBR a été estimée indirectement par la clairance de l’acide para-amino hippurique (HAP)8,9,10 et, plus récemment, par des techniques d’imagerie telles que l’échographie9,11,12, l’IRM4,13 et la TEP-TDM 14,15 qui donnent des images instantanées utiles de chaque rein et qui peuvent suivre la progression de la maladie. Il est difficile d’évaluer la FBR chez les petits animaux par échographie ou IRM sans anesthésie. Il a été impossible de mesurer en continu la FBR dans des conditions conscientes chez le même rat sur des périodes prolongées.

Le présent protocole a donc mis au point des techniques permettant des mesures simultanées en continu 24 heures sur 24 de la FBR, qui ont été combinées à des méthodes de mesure continue de la pression artérielle pour les rats en mouvement libre, comme décrit précédemment 16,17,18,19,20,21 . Cette technologie permet l’évaluation temporelle de la FBR dans divers modèles de rats afin d’étudier les relations de cause à effet dans divers troubles rénaux à l’avenir.

Protocol

Le protocole est approuvé par le Medical College of Wisconsin Institutional Animal Care and Use. Des rats sensibles au sel Dahl (mâles et femelles), âgés de ~8 semaines, 200-350 g, ont été utilisés pour les expériences. 1. Préparation des animaux Installez un système de cage de réponse au mouvement pour le rat, un module de flux périvasculaire, une pompe à seringue, un appareil d’enregistrement et un logiciel (voir le tableau des matériaux</st…

Representative Results

Les données sur la pression artérielle moyenne (figure 1A) et les données sur le débit sanguin (figure 1B) d’un rat mâle Dahl sensible au sel sont présentées. Les rats sensibles au sel Dahl sont maintenus dans une colonie et élevés au Medical College of Wisconsin. La chirurgie a été effectuée à l’âge de 8 semaines et le poids corporel était de 249 g au moment de la chirurgie. Les rats ont été nourris avec un régime NaCl à 0,4%, et le régi…

Discussion

Le présent protocole décrit une technique qui utilise des instruments disponibles dans le commerce pour enregistrer la FBR et la pression artérielle en continu pendant plusieurs semaines. De plus, l’urine peut être recueillie à l’aide du dispositif décrit à l’étape 1.1. Il peut également être utilisé pour évaluer les métabolites dans l’urine et, lorsqu’un cathéter artériel est implanté, le prélèvement de sang pour analyse.

Traditionnellement, les mesures de FBR ont …

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Cette étude a été financée par des subventions pour la recherche scientifique (P01 HL116264, RO1 HL137748). Les auteurs tiennent à remercier Theresa Kurth pour ses conseils et son aide dans le maintien de l’environnement expérimental en tant que gestionnaire du laboratoire.

Materials

1RB probe Transonic 1RB ultrasonic flow probe
Betadine Avrio Health povidone-iodine
Buprenorphine SR-LAB ZooPharm Buprenorphine
Cefazolin APOTEX NDC 60505 Cefazolin
Crile Hemostats Fine Surgical Instruments 13004-14 Hemostats for blunt dissection
Isoflurane Piramal NDC 66794 Isoflurane
Medium Clear PVC cement Oatey PVC cement
Mersilene polyester fiber mesh Ethicon polyester fiber mesh
MetriCide28 Metrex SKU 10-2805 2.5% glutaraldehyde
Micro-Renathane 0.025 x 0.012 Braintree Scientific MRE 025 use for catheter
MINI HYPE-WIPE Current Technologies #9803 1% sodium hypochlorite
Oatey Medium Clear PVC Cement Oatey #31018 PVC cement
PHD2000 syringe pump Harvard apparatus 71-2000 syringe pump
Ponemah software DSI recording software
Precision 3630 Tower Dell Computer for recording
Raturn Stand-Alone System BASi MD-1407 a movement response caging system
RenaPulse High Fidelity Pressure Tubing 0.040 x 0.025 Braintree Scientific RPT 040 use for catheter
Silicone cuff Transonic AAPC102 skin button
Surgical lubricant sterile bacteriostatic Fougera 0168-0205-36 gell for flow probe
Tergazyme Alconox protease contained anionic detergent
TS420 Perivascular Flow Module Transonic TS420 perivascular flow module
Vetbond 3M 1469SB tissue adhesive
WinDaq software DATAQ recording software

Riferimenti

  1. Chonchol, M., Smogorzewski, M., Stubbs, J., Yu, A. . Brenner & Rector’s The Kidney. 11, (2019).
  2. Chen, J. -. K., et al. Phosphatidylinositol 3-kinase signaling determines kidney size. Journal of Clinical Investigation. 125 (6), 2429-2444 (2015).
  3. Sigmon, D. H., Gonzalez-Feldman, E., Cavasin, M. A., Potter, D. L., Beierwaltes, W. H. Role of nitric oxide in the renal hemodynamic response to unilateral nephrectomy. Journal of the American Society of Nephrology. 15 (6), 1413-1420 (2004).
  4. Romero, C. A., et al. Noninvasive measurement of renal blood flow by magnetic resonance imaging in rats. American Journal of Physiology-Renal Physiology. 314 (1), 99-106 (2018).
  5. Basile, D. P., Anderson, M. D., Sutton, T. A. Pathophysiology of acute kidney injury. Comprehensive Physiology. 2 (2), 1303-1353 (2012).
  6. Regan, M. C., Young, L. S., Geraghty, J., Fitzpatrick, J. M. Regional renal blood flow in normal and disease states. Urological Research. 23 (1), 1-10 (1995).
  7. Ter Wee, P. M. Effects of calcium antagonists on renal hemodynamics and progression of nondiabetic chronic renal disease. Archives of Internal Medicine. 154 (11), 1185 (1994).
  8. Mazze, R. I., Cousins, M. J., Barr, G. A. Renal effects and metabolism of isoflurane in man. Anesthesiology. 40 (6), 536-542 (1974).
  9. Corrigan, G., et al. PAH extraction and estimation of plasma flow in human postischemic acute renal failure. American Journal of Physiology-Renal Physiology. 277 (2), 312-318 (1999).
  10. Laroute, V., Lefebvre, H. P., Costes, G., Toutain, P. -. L. Measurement of glomerular filtration rate and effective renal plasma flow in the conscious beagle dog by single intravenous bolus of iohexol and p-aminohippuric acid. Journal of Pharmacological and Toxicological Methods. 41 (1), 17-25 (1999).
  11. Wei, K., et al. Quantification of renal blood flow with contrast-enhanced ultrasound. Journal of the American College of Cardiology. 37 (4), 1135-1140 (2001).
  12. Cao, W., et al. Contrast-enhanced ultrasound for assessing renal perfusion impairment and predicting acute kidney injury to chronic kidney disease progression. Antioxidants & Redox Signaling. 27 (17), 1397-1411 (2017).
  13. Markl, M., Frydrychowicz, A., Kozerke, S., Hope, M., Wieben, O. 4D flow MRI. Journal of Magnetic Resonance Imaging. 36 (5), 1015-1036 (2012).
  14. Juillard, L., et al. Dynamic renal blood flow measurement by positron emission tomography in patients with CRF. American Journal of Kidney Diseases. 40 (5), 947-954 (2002).
  15. Juárez-Orozco, L. E., et al. Imaging of cardiac and renal perfusion in a rat model with 13N-NH3 micro-PET. The International Journal of Cardiovascular Imaging. 31 (1), 213-219 (2015).
  16. Mori, T., Cowley, A. W. Role of pressure in angiotensin II-induced renal injury. Hypertension. 43 (4), 752-759 (2004).
  17. Mori, T., et al. High perfusion pressure accelerates renal injury in salt-sensitive hypertension. Journal of the American Society of Nephrology. 19 (8), 1472-1482 (2008).
  18. Polichnowski, A. J., Cowley, A. W. Pressure-induced renal injury in angiotensin II versus norepinephrine-induced hypertensive rats. Hypertension. 54 (6), 1269-1277 (2009).
  19. Polichnowski, A. J., Jin, C., Yang, C., Cowley, A. W. Role of renal perfusion pressure versus angiotensin II renal oxidative stress in angiotensin II-induced hypertensive rats. Hypertension. 55 (6), 1425-1430 (2010).
  20. Evans, L. C., et al. Increased perfusion pressure drives renal T-cell infiltration in the dahl salt-sensitive rat. Hypertension. 70 (3), 543-551 (2017).
  21. Shimada, S., et al. Renal perfusion pressure determines infiltration of leukocytes in the kidney of rats with angiotensin II-induced hypertension. Hypertension. 76 (3), 849-858 (2020).
  22. Cousins, M. J., Mazze, R. I. Anaesthesia, surgery and renal function: Immediate and delayed effects. Anaesthesia and Intensive Care. 1 (5), 355-373 (1973).
  23. Cousins, M. J., Skowronski, G., Plummer, J. L. Anaesthesia and the kidney. Anaesthesia and Intensive Care. 11 (4), 292-320 (1983).
  24. Schiffer, T. A., Christensen, M., Gustafsson, H., Palm, F. The effect of inactin on kidney mitochondrial function and production of reactive oxygen species. PLOS ONE. 13 (11), 0207728 (2018).
  25. Evans, R. G., et al. Chronic renal blood flow measurement in dogs by transit-time ultrasound flowmetry. Journal of Pharmacological and Toxicological Methods. 38 (1), 33-39 (1997).
  26. Bell, T. D., DiBona, G. F., Biemiller, R., Brands, M. W. Continuously measured renal blood flow does not increase in diabetes if nitric oxide synthesis is blocked. American Journal of Physiology-Renal Physiology. 295 (5), 1449-1456 (2008).
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Citazione di questo articolo
Shimada, S., Cowley, Jr., A. W. Long-Term Continuous Measurement of Renal Blood Flow in Conscious Rats. J. Vis. Exp. (180), e63560, doi:10.3791/63560 (2022).

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