Summary

Une approche d’implantation rétrograde pour la mise en place d’un cathéter de dialyse péritonéale chez la souris

Published: July 20, 2022
doi:

Summary

Cet article décrit les modifications d’une procédure d’implantation d’un cathéter de dialyse péritonéale dans un modèle murin afin d’éviter les problèmes techniques majeurs observés avec les techniques conventionnelles.

Abstract

Des modèles murins sont utilisés pour sonder divers aspects de la dialyse péritonéale (MP), tels que l’inflammation péritonéale et la fibrose. Ces événements entraînent une défaillance de la membrane péritonéale chez l’homme, qui reste un domaine de recherche intense en raison de ses profondes implications cliniques dans la prise en charge des patients atteints d’insuffisance rénale terminale (MRT). Malgré l’importance clinique de la MP et de ses complications, les modèles murins expérimentaux actuels souffrent de défis techniques clés qui compromettent la performance des modèles. Ceux-ci comprennent la migration et le pliage du cathéter et justifient généralement un retrait plus précoce du cathéter. Ces limites entraînent également la nécessité d’un plus grand nombre d’animaux pour compléter une étude. Abordant ces inconvénients, cette étude introduit des améliorations techniques et des nuances chirurgicales pour prévenir les complications courantes du cathéter de MP observées dans un modèle murin. De plus, ce modèle modifié est validé en induisant une inflammation péritonéale et une fibrose à l’aide d’injections de lipopolysaccharidiques. Essentiellement, cet article décrit une méthode améliorée pour créer un modèle expérimental de MP.

Introduction

Charge de morbidité rénale terminale
L’insuffisance rénale chronique (IRC) est un problème de santé mondial1. Les estimations actuelles suggèrent que plus de 850 millions de personnes dans le monde souffrent d’une maladie rénale. La prévalence de la maladie rénale double presque le nombre de personnes atteintes de diabète (422 millions) et est plus de 20 fois supérieure à la prévalence du cancer (42 millions) ou du VIH/sida (36,7 millions) dans le monde2. Environ un Américain sur sept souffre d’IRC et deux Américains sur 1 000 ont une MRT nécessitant une greffe de rein ou une dialyse3. Compte tenu du fardeau croissant de l’IRT dans le monde entier, l’optimisation de la technologie de dialyse est cruciale3.

Dialyse péritonéale
La MP est une modalité considérablement sous-utilisée pour le traitement de la MRT aux États-Unis. Selon le système de données rénales des États-Unis (USRDS), le pourcentage de patients atteints de MP prévalents n’était que de 11% en 2020 4,5. La MP confère plusieurs avantages par rapport à l’hémodialyse en centre (HD), notamment une meilleure qualité de vie, moins de visites à la clinique et une diminution des dépenses de Medicare 6,7. De plus, la MP est une thérapie à domicile et est associée à un risque beaucoup plus faible d’infections graves telles que la bactériémie et l’endocardite qui sont souvent liées aux cathéters d’hémodialyse. De plus, la MP peut être initiée rapidement avec un protocole de démarrage urgent, ce qui réduit le besoin d’initiation de la dialyse avec des cathéters vasculaires à demeure8. La MP est considérée comme la méthode de dialyse préférée dans la population pédiatrique de MRT9.

Insuffisance péritonéale induite par la dialyse péritonéale
La MP implique l’introduction de liquide (dialysat) dans le péritoine, ce qui entraîne une inflammation et un remodelage de la membrane péritonéale au fil du temps. L’inflammation péritonéale déclenche la fibrose, aboutissant à la perte potentielle des capacités d’ultrafiltration de la membrane au fil du temps. La préservation de la membrane péritonéale est un défi important dans la MP, et d’autres recherches sont d’une importance cruciale pour s’assurer que les meilleures pratiques cliniques sont disponibles pour les praticiens. Il existe des modèles murins bien établis pour aider à mieux comprendre les mécanismes physiopathologiques de l’infection péritonéale et de l’inflammation, du soluté, de la cinétique du transport de l’eau et de la défaillance membranaire; Pourtant, des problèmes techniques avec le cathéter limitent souvent ces modèles10.

Analyse des changements de la membrane péritonéale
Chez les patients atteints d’IRT, le dialysat est traditionnellement introduit dans la cavité péritonéale par un cathéter Tenkhoff avec un brassard profond et superficiel. Les patients peuvent potentiellement présenter des complications liées au cathéter, notamment la migration du cathéter, la douleur à la perfusion et un mauvais drainage du dialysat11,12,13. Deux grands types de cathéters péritonéaux ont été introduits pour les humains, enroulés ou droits, afin de minimiser ces complications12. Plusieurs modifications, y compris un brassard supplémentaire aux cathéters conventionnels à deux manchettes, ont été ajoutées aux cathéters originaux pour prolonger la survie du cathéter11. La technique d’insertion varie en fonction de plusieurs facteurs en évitant l’ajout de la migration du cathéter après la survie, notamment la disponibilité des ressources et le niveau d’expertise14.

En revanche, les modèles murins de dialyse péritonéale présentent des différences fondamentales dans les techniques et le but par rapport aux cathéters péritonéaux humains. Par exemple, les cathéters péritonéaux dans les modèles murins sont principalement utilisés pour étudier les altérations de la membrane et sont moins destinés aux fonctions de drainage bidirectionnel. La technique actuelle souffre d’un déplacement potentiel du port et de la migration du cathéter en raison de la manipulation des animaux. Dans les modèles murins conventionnels, les ports d’accès n’étaient pas fixés à la peau. Cet aspect a créé un port d’accès instable, qui, chez les animaux éveillés, pourrait être délogé, entraînant la migration des cathéters. Compte tenu de l’importance des modèles murins dans la recherche sur la membrane péritonéale, il est impératif de créer des techniques chirurgicales efficaces pour générer des modèles fiables. Par conséquent, nous avons entrepris d’optimiser le modèle conventionnel de placement du cathéter. Il est important de noter que le cathéter lui-même provoque des altérations histopathologiques de la membrane péritonéale et, par conséquent, toute conclusion concernant l’effet des solutions de MP dans les études animales doit être interprétée dans le contexte du cathéter comme un corps étranger15,16,17.

Histopathologie de la membrane péritonéale
L’échec de la MP est principalement lié à la fibrose et à l’angiogenèse excessive entraînant la perte d’un gradient de concentration osmolaire. De plus, la capacité de filtration de la membrane péritonéale pourrait être affectée par une péritonite. En outre, la péritonite infectieuse est une cause bien établie de changement dans la modalité de dialyse de la dialyse péritonéale à l’hémodialyse. 18.

Protocol

Pour cette étude, huit souris C57BL/6J femelles, âgées de 8 à 12 semaines, et pesant en moyenne 20 g ont été utilisées. Les souris ont été logées dans des conditions standard et ont été nourries avec du chow et de l’eau ad libitum. Cette étude a été réalisée avec l’approbation de l’Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC), Boston University Medical Center (AN-1549). Les procédures décrites ici ont été effectuées dans des conditions stériles. <stro…

Representative Results

Tous les cathéters implantés étaient fonctionnels jusqu’à la fin de l’étude, et le déplacement ou le pliage du cathéter n’a compliqué aucun des cathéters implantés. La technique actuelle modifiée a été validée avec un modèle induit par la péritonite à l’aide de LPS. Les souris témoins ont reçu 200 μL d’injections quotidiennes normales de solution saline, tandis que les souris expérimentales ont reçu 200 μL de LPS, comme indiqué à l’étape 11 du protocole, pendant un total de 7 jours a…

Discussion

Trois modèles murins de MP sont décrits. Cela comprend une ponction aveugle de la surface péritonéale, un système ouvert-permanent et un système fermé10. La ponction aveugle de la surface péritonéale implique un accès péritonéal direct similaire aux injections intrapéritonéales mais ne permet pas le drainage du dialysat. Étant une procédure en aveugle, cette méthode peut blesser les organes viscéraux abdominaux. Le modèle de système ouvert-permanent maintient le cathéter de di…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ce travail a été soutenu par NIH 1R01HL132325 et R21 DK119740-01 (VCC) et AHA Cardio-oncology SFRN CAT-HD Center grant 857078 (VCC et SL).

Materials

10% heparin  Canada Inc., Boucherville, QC, Canada) Pharmaceutical product
     Buprenorphine 0.3 mg/mL      PAR Pharmaceutical            NDC 42023-179-05
C57BL/6J mice The Jackson Lab IMSR_JAX:000664
CD31 Abcam Ab9498
            Clamp      Fine Science Tools                13002-10
            Forceps      Fine Science Tools                11002-12
Dumont #5SF Forceps Fine Science Tools 11252-00
Dumont Vessel Cannulation Forceps Fine Science Tools 11282-11
Fine Scissors – Large Loops Fine Science Tools 14040-10
Fisherbrand Animal Ear-Punch Fisher Scientific 13-812-201
Hill Hemostat Fine Science Tools 13111-12
Huber point needle  Access  technologies  PG25-500 Needle for injections
            Isoflurane, USP             Covetrus             NDC 11695-6777-2
       Lipopolysaccharide from E.coli             SIGMA               L4391
Microscope Nikon Eclipse Inverted Microscope TE2000
Minute Mouse Port 4French with retention beads and cross holes     Access  technologies         MMP-4S-061108A
 Posi-Grip Huber point needles 25 G x 1/2´´    Access  technologies                PG25-500
            Scissors      Fine Science Tools                14079-10
Vicryl Suture AD-Surgical #L-G330R24

Riferimenti

  1. Saran, R., et al. US Renal Data System 2019 Annual Data Report: Epidemiology of Kidney Disease in the United States. American Journal of Kidney Diseases. 75, 6-7 (2020).
  2. ESRD, U.S.R.D.S.M. 2017 USRDS Annual Data Report: Epidemiology of Kidney Disease in the United States, Bethesda, MD, National Institutes of Health, National Institute of Diabetes and Digestive and Kidney Diseases. USRD. , (2017).
  3. Center of Disease Control, U.S.D.o.H.a.H.S. Chronic Kidney Disease in the United States, 2019. CDC Publications and Resources. , (2019).
  4. Cho, Y., et al. Peritoneal dialysis use and practice patterns: An international survey study. American Journal of Kidney Diseases. 77 (3), 315-325 (2021).
  5. Xieyi, G., Xiaohong, T., Xiaofang, W., Zi, L. Urgent-start peritoneal dialysis in chronic kidney disease patients: A systematic review and meta-analysis compared with planned peritoneal dialysis and with urgent-start hemodialysis. Peritoneal Dialysis International. 41 (2), 179-193 (2021).
  6. Gokal, R., Figueras, M., Olle, A., Rovira, J., Badia, X. Outcomes in peritoneal dialysis and haemodialysis–a comparative assessment of survival and quality of life. Nephrology Dialysis Transplantation. 14, 24-30 (1999).
  7. Gardezi, A. I., Sequeira, A., Narayan, R. Going home: Access for home modalities. Advances in Chronic Kidney Disease. 27 (3), 253-262 (2020).
  8. van de Luijtgaarden, M. W., et al. Trends in dialysis modality choice and related patient survival in the ERA-EDTA Registry over a 20-year period. Nephrology Dialysis Transplantation. 31 (1), 120-128 (2016).
  9. Schaefer, F., Warady, B. A. Peritoneal dialysis in children with end-stage renal disease. Nature Reviews. Nephrology. 7 (11), 659-668 (2011).
  10. Gonzalez-Mateo, G. T., Pascual-Anton, L., Sandoval, P., Aguilera Peralta, A., Lopez-Cabrera, M. Surgical techniques for catheter placement and 5/6 nephrectomy in murine Models of Peritoneal Dialysis. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (137), e56746 (2018).
  11. Chow, K. M., et al. Straight versus coiled peritoneal dialysis catheters: A randomized controlled trial. American Journal of Kidney Diseases. 75 (1), 39-44 (2020).
  12. LaPlant, M. B., et al. Peritoneal dialysis catheter placement, outcomes and complications. Pediatric Surgery International. 34 (11), 1239-1244 (2018).
  13. Al-Hwiesh, A. K. A modified peritoneal dialysis catheter with a new technique: Farewell to catheter migration. Saudi Journal of Kidney Diseases and Transplantation. 27 (2), 281-289 (2016).
  14. Crabtree, J. H., Chow, K. M. Peritoneal dialysis catheter insertion. Seminars Nephrology. 37 (1), 17-29 (2017).
  15. Flessner, M. F., et al. Peritoneal changes after exposure to sterile solutions by catheter. Journal of the American Society of Nephrology. 18 (8), 2294-2302 (2007).
  16. Kowalewska, P. M., Margetts, P. J., Fox-Robichaud, A. E. Peritoneal dialysis catheter increases leukocyte recruitment in the mouse parietal peritoneum microcirculation and causes Fibrosis. Peritonial Dialysis International: Journal of the International Society for Peritonial Dialysis. 36 (1), 7-15 (2016).
  17. Kowalewska, P. M., Patrick, A. L., Fox-Robichaud, A. E. Syndecan-1 in the mouse parietal peritoneum microcirculation in inflammation. PLoS One. 9 (9), 104537 (2014).
  18. Yanez-Mo, M., et al. Peritoneal dialysis and epithelial-to-mesenchymal transition of mesothelial cells. The New England Journal of Medicine. 348 (5), 403-413 (2003).
  19. Arinze, N. V., et al. Tryptophan metabolites suppress Wnt pathway and promote adverse limb events in CKD patients. The Journal of Clinical Investigation. 132 (1), (2021).
  20. Belghasem, M., et al. Metabolites in a mouse cancer model enhance venous thrombogenicity through the aryl hydrocarbon receptor-tissue factor axis. Blood. 134 (26), 2399-2413 (2019).
  21. Krediet, R. T. The peritoneal membrane in chronic peritoneal dialysis. Kidney International. 55 (1), 341-356 (1999).
  22. Gonzalez-Mateo, G. T., et al. Chronic exposure of mouse peritoneum to peritoneal dialysis fluid: structural and functional alterations of the peritoneal membrane. Peritonial Dialysis International: Journal of the International Society for Peritonial Dialysis. 29 (2), 227-230 (2009).
  23. Sukul, N., et al. Patient-reported advantages and disadvantages of peritoneal dialysis: results from the PDOPPS. BMC Nephrology. 20 (1), 116 (2019).
  24. Lu, Y., et al. A method for islet transplantation to the omentum in mouse. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (143), e57160 (2019).
  25. Gotloib, L., Wajsbrot, V., Shostak, A. A short review of experimental peritoneal sclerosis: from mice to men. The International Journal of Artificial Organs. 28 (2), 97-104 (2005).
  26. Tateda, K., Matsumoto, T., Miyazaki, S., Yamaguchi, K. Lipopolysaccharide-induced lethality and cytokine production in aged mice. Infection and Immunity. 64 (3), 769-774 (1996).
  27. Vila Cuenca, M., et al. Differences in peritoneal response after exposure to low-GDP bicarbonate/lactate-buffered dialysis solution compared to conventional dialysis solution in a uremic mouse model. International Urology and Nephrology. 50 (6), 1151-1161 (2018).
  28. Penar, J., et al. Selected indices of peritoneal fibrosis in patients undergoing peritoneal dialysis. Postepy Higieny Medycyny Doswiadczalnej (Online). 63, 200-204 (2009).
  29. Yung, S., Chan, T. M. Pathophysiological changes to the peritoneal membrane during PD-related peritonitis: the role of mesothelial cells. Mediators of Inflammation. 2012, 484167 (2012).
check_url/it/63689?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Lotfollahzadeh, S., Zhang, M., Napoleon, M. A., Yin, W., Orrick, J., Elzind, N., Morrissey, A., Sellinger, I. E., Stern, L. D., Belghasem, M., Francis, J. M., Chitalia, V. C. A Retrograde Implantation Approach for Peritoneal Dialysis Catheter Placement in Mice. J. Vis. Exp. (185), e63689, doi:10.3791/63689 (2022).

View Video