Summary

Tillverkning av mycket öppna porösa mikrosfärer (HUMM) via mikrofluidisk teknik

Published: May 16, 2022
doi:

Summary

Detta protokoll beskriver tillverkningen av poly(mjölksyra-co-glykolsyra)-baserade mycket öppna porösa mikrosfärer (HUMM) via den enemulsionsformuleringsbaserade facila mikrofluidiska tekniken. Dessa mikrosfärer har potentiella tillämpningar inom vävnadsteknik och läkemedelsscreening.

Abstract

Jämfört med bulkställningar och direktinsprutning av celler ensam har de injicerbara modulära enheterna fått enormt intresse för att reparera felaktiga vävnader på grund av bekvämlighet i cellförpackningen, förbättrad cellretention och minimal invasivitet. Dessutom kan den porösa konformationen hos dessa mikroskalabärare förbättra medieutbytet och förbättra nivån på näringsämnen och syretillförsel. Den aktuella studien illustrerar den praktiska tillverkningen av poly(mjölksyra-co-glykolsyra)-baserade mycket öppna porösa mikrosfärer (PLGA-HOPM) genom den facila mikrofluidiska tekniken för cellleveransapplikationer. De resulterande monodisperserade PLGA-HOPM: erna hade partikelstorlekar på ~ 400 μm och öppna porer på ~ 50 μm med sammankopplade fönster. Kortfattat infördes de emulgerade oljedropparna (PLGA-lösning i diklormetan, DCM), inslagna med 7,5% (w / v) gelatinvattenfasen, i den 1% (w / v) kontinuerliga flytande poly (vinylalkohol) (PVA) vattenlösningen genom koaxialmunstycket i den anpassade mikrofluidiska installationen. Därefter utsattes mikrosfärerna för lösningsmedelsextraktion och lyofiliseringsförfaranden, vilket resulterade i produktion av HUMPM. I synnerhet spelar olika formuleringar (koncentrationer av PLGA och porogen) och bearbetningsparametrar (emulgeringskraft, nålmätare och flödeshastighet för dispergerad fas) avgörande roller i egenskaperna och egenskaperna hos de resulterande PLGA HOPM: erna. Dessutom kan dessa arkitekturer potentiellt kapsla in olika andra biokemiska ledtrådar, såsom tillväxtfaktorer, för utökad läkemedelsupptäckt och vävnadsregenereringsapplikationer.

Introduction

Cellbelastade mikrosfärer erbjuder gynnsamma fördelar, såsom förbättrad cellretentionskapacitet in situ, effektiv leverans av celler och efterföljande förmåga till cellproliferation in vivo1. Hittills har många undersökningar lagts fram för att utveckla en framgångsrik byggnadsställningsstruktur för att stödja en gynnsam miljö för celler för vävnadsregenerering eller läkemedelsscreeningsapplikationer2. Hypoximiljön är dock ofta oundviklig i interiören på grund av otillräcklig tillförsel av näringsämnen / syre och ansamling av metaboliskt avfall3. För att övervinna dessa problem har mycket porösa mikrosfärer (PM) utvecklats med hjälp av olika biomaterial 4,5,6. I dynamisk kultur lider ställningarna dessutom av överdriven skjuvspänning7, och odlingsmediets instabila tillstånd kan bryta troheten hos PM. Alternativt kan poly(mjölk-co-glykolsyra) (PLGA) användas för att bearbeta PM med god mekanisk hållfasthet för dynamisk kultur1. Till exempel demonstrerade vi saminjektion av musmyoblast (C2C12) -laddad PLGA mycket öppna PM (HOPM) och humana navelvenendotelceller (HUVEC) -laddade poly (etylenglykol) ihåliga mikroroder för att läka volymetrisk muskelförlust, vilket uppnådde anmärkningsvärd förbättring av in situ skelettmuskelregenerering8.

I synnerhet kännetecknas PM av stora ytor och höga porositeter, vilket är av särskilt intresse för celladhesion och tillväxt mot minimalt invasiv cellleverans9. Mot bakgrund av dessa aspekter har olika biokompatibla material använts för att tillverka PMs10,11. Dessa designbara PM som odlas tillsammans med celler erbjuder utmärkt vidhäftning, betydande mekanisk hållfasthet och mycket sammankopplade fönster, vilket kan förbättra cellproliferationen för reparation av skadade vävnader12. I detta avseende har olika tekniker också utvecklats för att tillverka porösa sfärer13,14. Å ena sidan producerades PM med hjälp av gasbildande medel, såsomNH4HCO3, som var fasthållna på grund av otillräcklig sammankoppling15,16,17. Å andra sidan skjuvades PM direkt efter emulgering, vilket ledde till polydispers PM18. I slutändan är droppmikrofluidiktekniken baserad på emulsionsmallmetoden kanske en effektiv metod för att konstruera PM, eftersom det ofta resulterar i likformiga partiklar19. I synnerhet beror mikrosfärernas morfologiska attribut ofta på kvaliteten på de genererade emulsionsdropparna (dvs. vatten-i-olja, W/O eller olja-i-vatten, O/W), vilket kan påverka egenskaperna hos biomaterialen20 avsevärt. Det är värt att notera att den fördesignade mikrofluidiska plattformen kan appliceras för att generera mikrofibrerna eller mikrosfärerna. demonstrerade produktionen av cellbelastade mikrofibrösa strukturer baserade på kapillärbaserade mikrofluidiska plattformar, som kan användas för att montera cellulära nätverk för att efterlikna naturliga vävnader21. tillverkade fotoniska kristallmikrokapslar genom mallreplikering av kiseldioxidkolloidala kristallpärlor genom mikrofluidikteknik, vilket kan övervinna många begränsningar av nuvarande tekniker som kräver komplex märkning och specifik apparat22.

Faktum är att motiveringen bakom användningen av denna teknik beror på olika fördelar, såsom att vara lätt i naturen, vilket inte kräver någon sofistikerad utrustning och dess bekvämlighet med att syntetisera likformiga PM för cellleverans och regenerativ medicinapplikationer. I detta sammanhang, med fördesignade komponenter av emulsionsmallning, kan PM med hög porositet och sammankoppling bekvämt erhållas från en mikrofluidisk anordning monterad av poly (vinylklorid) (PVC) rör, en glaskapillär och en nål. En W/O-emulsionsprekursor framställs genom homogenisering av en vattenlösning av gelatin och en organisk lösning av PLGA. Genom att selektivt injicera den tillämpliga delen av emulsionen i den mikrofluidiska plattformen tillverkas PM: erna med enhetliga partikelstorlekar och sammankopplade porer i hela ytan till det inre. Detta protokoll syftar till att tillverka PLGA-HOPM genom emulsion-mallning i den mikrofluidiska plattformen. Man tror att detta protokoll möjliggör reproducerbar produktion av PLGA-HOPM och kommer potentiellt att vara tillämpligt inom deras relaterade områden inom vävnadsteknik och läkemedelsscreening.

Protocol

1. Beredning av lösningar Bered PVA-stamlösningen i förväg genom att värma PVA-lösningen i ett 80 °C vattenbad och därefter placera den i kylskåpet vid 4 °C. Kyl till rumstemperatur (RT) för experimentell användning. Bered emulsionsprekursorn genom att tillsätta den vattenhaltiga gelatinlösningen (1 ml, 7,5 %, vikt/volym) till den organiska fasen av PLGA (2 ml, 2 %, w/v i diklormetan, DCM) (se materialförteckning).OBS: I allmänhet involverar mikro…

Representative Results

Baserat på tidigare arbete som optimerade huvudparametrarna1 löstes PLGA upp i det ångbara DCM-lösningsmedlet. Den primära W / O-emulsionen framställdes genom homogenisering med gelatin under ultraljudssondbehandling. Den anpassade samflödesfluidstrukturen monterades förenklat, där en spruta användes för att ständigt införa flödena. Dessutom utfördes tillräckliga sköljningsförfaranden för att eliminera PVA och gelatin i PLGA-mikrosfärer (figur 1A, kompletterande figur 1…

Discussion

I den här artikeln beskrivs en effektiv strategi för att tillverka PLGA-baserade arkitekturer, nämligen PLGA-HOPM. Det bör noteras att flera kritiska steg måste vidtas noggrant, inklusive att undvika lösningsmedelsförångning av PLGA och mild justering av ultraljudseffekten till målpositionen under beredningen av emulsionen. Dessutom kan vätskeutloppet för 20 ml sprutan justeras i viss utsträckning för att lösa fasseparationen av emulgerade prekursorer. En begränsning är dock att eftersom porogentillstånd…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

SCL, YW, RKK och AZC erkänner ekonomiskt stöd från National Natural Science Foundation of China (NSFC, 32071323, 81971734 och U1605225) och Program for Innovative Research Team in Science and Technology i Fujian Province University. YSZ stöddes varken av något av dessa program eller fick betalning av något slag; I stället erkänns stöd från Brigham Research Institute.

Materials

Centrifuge tube Solarbio, Beijing, China 5 mL & 50 mL (sterility)
Confocal laser scanning microscopy Leica, Wetzlar, Germany TCS SP8
Dichloromethane Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd, Shanghai, China 20161110 Research Grade
Dispensing needle Kindly, Shanghai, China 26 G, ID: 250 μm, OD: 460 μm
DMEM/F-12 Gibco; Life Technologies Corporation, Calsbad, USA 15400054 DMEM/F-12 50/50, 1x (Dulbecco's
Mod. Of Eagle's Medium/Ham's F12
50/50 Mix) with L-glutamine
Ethyl alcohol Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd, Shanghai, China 20210918 Research Grade
Ethyl-enediaminetetraacetic acid (EDTA)-trypsin Biological Industries, Kibbutz Beit-Haemek, Isra Trypsin (0.25%), EDTA (0.02%)
Fetal bovine serum (FBS) Biological Industries, Kibbutz Beit-Haemek, Isra Research Grade
Freeze drier Bilon, Shanghai, China FD-1B-50
Gelatin Sigma-Aldrich Co. Ltd, St. Louis, USA lot# SZBF2870V From porcine skin, Type A
Glass bottom plate Biosharp, Hefei, China BS-15-GJM, 35 mm
Glass capillary Huaou, Jiangsu, China 0.9-1.1 × 120 mm
Incubator shaker Zhicheng, Shanghai, China ZWYR-200D
Live dead kit cell imaging kit Solarbio, Beijing, China 60421211112 Green fluorescence in live cells (ex/em 488 nm/515 nm). Red fluorescence in dead cells (ex/em 570 nm/602 nm)
Low-speed centrifuge Xiangyi, Hunan, China TD5A
Magnetron sputter Riye electric Co. Ltd, Suzhou, China MSP-2S
Microflow injection pump Harvard Apparatus, Holliston, USA Harvard Pump 11 Plus
Penicillin-streptomycin Biological Industries, Kibbutz Beit-Haemek, Isra 2135250 Research Grade
Phosphate buffered saline (PBS) Servicebio Technology Co.,Ltd. Wuhan, China GP21090181556 PBS 1x, culture grade, no Calcium, no Magnesium
Poly(lactic-co-glycolic acid) Sigma-Aldrich Co. Ltd, St. Louis, USA lot# MKCF9651 66–107 kDa, lactide:glycolide 75:25
Poly(vinyl alcohol) Sigma-Aldrich Co. Ltd, St. Louis, USA lot# MKCK4266 13-13 kDa, 98% Hydrolyzed
PVC tube Shenchen, Shanghai, China Inner diameter, ID: 1 mm
Rat bone marrow mesenchyml stem cells Procell, Wuhan, China
Scanning electron microscope Phenom pure, Eindhoven, Netherlands Set acceleration voltage at 5 kV
Syrine for medical purpose Kindly, Shanghai, China 5 mL & 50 mL (with the needle)
Temperature water bath Mingxiang, Shenzhen, China 36 W
Transformer Riye electric Co. Ltd, Suzhou, China SZ-2KVA
Ultrasonic cell breaker JY 92-IID, Scientz, Ningbo, China JY 92-IID
UV curing glue Zhuolide, Foshan, China D-3100

Riferimenti

  1. Kankala, R. K., et al. Highly porous microcarriers for minimally invasive in situ skeletal muscle cell delivery. Small. 15 (25), 1901397 (2019).
  2. Wang, Y., et al. Modeling endothelialized hepatic tumor microtissues for drug screening. Advanced Science. 7 (21), 2002002 (2020).
  3. Li, Q., et al. Tripeptide-based macroporous hydrogel improves the osteogenic microenvironment of stem cells. Journal of Materials Chemistry B. 9 (30), 6056-6067 (2021).
  4. Liu, Y., et al. PLGA hybrid porous microspheres as human periodontal ligament stem cell delivery carriers for periodontal regeneration. Chemical Engineering Journal. 420, 129703 (2021).
  5. Wei, P., Xu, Y., Zhang, H., Wang, L. Continued sustained insulin-releasing PLGA nanoparticles modified 3D-printed PCL composite scaffolds for osteochondral repair. Chemical Engineering Journal. 422, 130051 (2021).
  6. Sang, S., et al. Biocompatible chitosan/polyethylene glycol/multi-walled carbon nanotube composite scaffolds for neural tissue engineering. Journal of Zhejiang University-Science B. 23 (1), 58-73 (2022).
  7. Ghasemian, M., et al. Hydrodynamic characterization within a spinner flask and a rotary wall vessel for stem cell culture. Biochemical Engineering Journal. 157, 107533 (2020).
  8. Wang, Y., et al. Minimally invasive co-injection of modular micro-muscular and micro-vascular tissues improves in situ skeletal muscle regeneration. Biomaterials. 277, 121072 (2021).
  9. Kang, S. W., Bae, Y. H. Cryopreservable and tumorigenic three-dimensional tumor culture in porous poly(lactic-co-glycolic acid) microsphere. Biomaterials. 30 (25), 4227-4232 (2009).
  10. Fan, D., et al. Mesoporous silicon-PLGA composite microspheres for the double controlled release of biomolecules for orthopedic tissue Engineering. Advanced Functional Materials. 22 (2), 282-293 (2012).
  11. Xu, Y., et al. Metabolism balance regulation via antagonist-functionalized injectable microsphere for nucleus pulposus regeneration. Advanced Functional Materials. 30 (52), 2006333 (2020).
  12. Yao, R., Zhang, R., Lin, F., Luan, J. Injectable cell/hydrogel microspheres induce the formation of fat lobule-like microtissues and vascularized adipose tissue regeneration. Biofabrication. 4 (4), 045003 (2012).
  13. Sikavitsas, V. I., Bancroft, G. N., Mikos, A. G. Formation of three-dimensional cell/polymer constructs for bone tissue engineering in a spinner flask and a rotating wall vessel bioreactor. Journal of Biomedical Materials Research. 62 (1), 136-148 (2002).
  14. Kim, T. K., Yoon, J. J., Lee, D. S., Park, T. G. Gas foamed open porous biodegradable polymeric microspheres. Biomaterials. 27 (2), 152-159 (2006).
  15. Wang, C. Y., Liao, H. F., Sheu, D. C. Enhancement of recombinant human macrophage colony-stimulating factor production using culture systems with porous polymeric microspheres. Journal of the Taiwan Institute of Chemical Engineers. 41 (2), 203-208 (2010).
  16. Amoyav, B., Benny, O. Microfluidic based fabrication and characterization of highly porous polymeric microspheres. Polymers. 11 (3), 419 (2019).
  17. Zhang, H., et al. Microfluidic fabrication of inhalable large porous microspheres loaded with H2S-releasing aspirin derivative for pulmonary arterial hypertension therapy. Journal of Controlled Release. 329, 286-298 (2021).
  18. Qu, M., et al. Injectable open-porous PLGA microspheres as cell carriers for cartilage regeneration. Journal of Biomedical Materials Research Part A. 109 (11), 2091-2100 (2021).
  19. Zheng, Y., et al. Microfluidic droplet-based functional materials for cell manipulation. Lab on a Chip. 21 (22), 4311-4329 (2021).
  20. Kawakatsu, T., Kikuchi, Y., Nakajima, M. Regular-sized cell creation in microchannel emulsification by visual microprocessing method. Journal of the American Oil Chemists’ Society. 74 (3), 317-321 (1997).
  21. Yu, Y., Shang, L., Guo, J., Wang, J., Zhao, Y. Design of capillary microfluidics for spinning cell-laden microfibers. Nature Protocols. 13 (11), 2557-2579 (2018).
  22. Ye, B., et al. Photonic crystal microcapsules for label-free multiplex detection. Advanced Materials. 26 (20), 3270-3274 (2014).
  23. Zhong, Z., et al. Zn/Sr dual ions-collagen co-assembly hydroxyapatite enhances bone regeneration through procedural osteo-immunomodulation and osteogenesis. Bioactive Materials. 10, 195-206 (2022).
  24. Poole, C. A., Brookes, N. H., Clover, G. M. Keratocyte networks visualized in the living cornea using vital dyes. Journal of Cell Science. 106 (2), 685-692 (1993).
  25. Gentile, P., Chiono, V., Carmagnola, I., Hatton, P. V. An overview of poly(lactic-co-glycolic) acid (PLGA)-based biomaterials for bone tissue engineering. International Journal of Molecular Sciences. 15 (3), 3640-3659 (2014).
  26. Lanao, R. P. F., et al. Physicochemical properties and applications of Poly(lactic-co-glycolic acid) for use in bone regeneration. Tissue Engineering Part B-Reviews. 19 (4), 380-390 (2013).
check_url/it/63971?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Luo, S., Wang, Y., Kankala, R. K., Zhang, Y. S., Chen, A. Fabricating Highly Open Porous Microspheres (HOPMs) via Microfluidic Technology. J. Vis. Exp. (183), e63971, doi:10.3791/63971 (2022).

View Video