Summary

Høyoppløselig hjertepositronemisjonstomografi/computertomografi for små dyr

Published: December 16, 2022
doi:

Summary

Her presenterer vi en eksperimentell bildeprotokoll for kvantifisering av hjertefunksjon og morfologi ved bruk av høyoppløselig positronemisjonstomografi/computertomografi for små dyr. Både mus og rotter blir vurdert, og diskuterer de forskjellige kravene til kontrastmidler for computertomografi for de to artene.

Abstract

Positronemisjonstomografi (PET) og computertomografi (CT) er blant de mest brukte diagnostiske bildebehandlingsteknikkene, og begge tjener til å forstå hjertefunksjon og metabolisme. I preklinisk forskning benyttes dedikerte skannere med høy følsomhet og høy spatio-temporal oppløsning, designet for å takle de krevende teknologiske kravene som stilles av den lille hjertestørrelsen og svært høye hjertefrekvenser av mus og rotter. I dette papiret beskrives en bimodal hjerte PET / CT-bildebehandlingsprotokoll for eksperimentelle mus- og / eller rottemodeller av hjertesykdommer, fra dyreforberedelse og bildeoppkjøp og rekonstruksjon til bildebehandling og visualisering.

Spesielt tillater den 18 F-merkede fluorodeoksyglukose ([18F]FDG)-PET-skanningen måling og visualisering av glukosemetabolismen i de forskjellige segmentene av venstre ventrikel (LV). Polarkart er praktiske verktøy for å vise denne informasjonen. CT-delen består av en tidsoppløst 3D-rekonstruksjon av hele hjertet (4D-CT) ved hjelp av retrospektiv gating uten elektrokardiografi (EKG) ledninger, noe som muliggjør morfofunksjonell evaluering av LV og påfølgende kvantifisering av de viktigste hjertefunksjonsparametrene, som ejeksjonsfraksjon (EF) og slagvolum (SV). Ved hjelp av en integrert PET / CT-skanner kan denne protokollen utføres innenfor samme anestesiinduksjon uten å måtte flytte dyret mellom forskjellige skannere. Derfor kan PET / CT ses som et omfattende verktøy for morfofunksjonell og metabolsk evaluering av hjertet i flere små dyremodeller av hjertesykdommer.

Introduction

Små dyremodeller er ekstremt viktige for å fremme forståelsen av kardiovaskulære sykdommer 1,2. Ikke-invasive, diagnostiske bildebehandlingsverktøy har revolusjonert måten vi ser på hjertefunksjon de siste tiårene, både i kliniske og prekliniske omgivelser. Når det gjelder smådyrmodeller av hjertesykdommer, er det utviklet spesifikke bildebehandlingsverktøy med svært høy spatiotemporal oppløsning. Dermed kan slike instrumenter matche behovet for nøyaktig kvantifisering av de relevante metabolske og kinetiske myokardparametrene på de svært små og svært raske hjertene til mus og rotter i spesifikke sykdomsmodeller, for eksempel hjertesvikt (HF)3 eller hjerteinfarkt (MI)4. Flere modaliteter er tilgjengelige for dette formålet, hver med sine egne styrker og svakheter. Ultralyd (US) bildebehandling er den mest brukte modaliteten på grunn av sin store fleksibilitet, svært høye tidsmessige oppløsning og relativt lave kostnader. Adopsjonen av amerikansk hjerteavbildning hos små dyr har økt betydelig siden adventen av systemer som bruker sonder med ultrahøyfrekvent5,6, med romlige oppløsninger under 50 μm.

Blant de viktigste ulempene med USA for full 3D-hjerteavbildning er behovet for lineære skanninger langs hjerteaksen ved å montere sonden på et motorisert oversettelsestrinn for å lage en full stabel med dynamiske B-modusbilder av hele hjertet7. Til slutt gir denne prosedyren opphav (etter nøyaktig romlig og tidsmessig registrering av bildene som er oppnådd i hver sondeposisjon) til et 4D-bilde med forskjellige romlige oppløsninger mellom in-plane og out-of-plane retninger. Det samme problemet med ujevn romlig oppløsning forekommer i hjerte-MR (CMR),8 som fortsatt representerer gullstandarden i funksjonell avbildning av hjertet. Ekte isotropisk 3D-avbildning kan i stedet oppnås ved hjelp av både computertomografi (CT) og positronemisjonstomografi (PET)9. PET gir et svært følsomt verktøy når det gjelder bildesignal per mengde injisert sonde (i nanomolarområdet), selv om det lider av redusert romlig oppløsning sammenlignet med CT, MR eller US. Den største fordelen med PET er dens evne til å vise de cellulære og molekylære mekanismene som ligger til grunn for organets patofysiologi. For eksempel tillater en PET-skanning etter injeksjonen av [18F] FDG rekonstruksjon av et 3D-kart over glukosemetabolismen i kroppen. Ved å kombinere dette med dynamisk (dvs. tidsbestemt) datainnsamling, kan tracer kinetisk modellering brukes til å beregne parametriske kart over metabolske hastigheter av glukoseopptak (MRGlu), som vil gi viktig informasjon om myokard levedyktighet10.

CT krever betydelige mengder eksterne kontrastmidler (CA) ved høye konsentrasjoner (opptil 400 mg jod per ml) for å gi en målbar forbedring av de relevante vevskomponentene (f.eks. Blod vs. muskel), men det utmerker seg i romlig og tidsmessig oppløsning, spesielt ved bruk av toppmoderne mikro-CT-skannere designet for smådyravbildning. 11 En typisk sykdomsmodell der hjertets PET/CT kan anvendes, er eksperimentell evaluering av hjerteinfarkt og hjertesvikt og relatert respons på behandlingen. En vanlig måte å indusere MI hos små dyr er ved kirurgisk ligering av venstre fremre synkende (LAD) koronararterie12,13 og deretter langsgående evaluering av sykdomsprogresjonen og hjerteombyggingen i de påfølgende dagene4. Likevel er den kvantitative morfofunksjonelle evalueringen av hjertet hos små dyr i stor grad anvendelig også for andre sykdomsmodeller, for eksempel evaluering av effekten av aldring på hjertefunksjon14 eller endret reseptoruttrykk i modeller av fedme15. Den presenterte bildeprotokollen er ikke begrenset til en gitt sykdomsmodell og kan derfor være av største interesse i flere sammenhenger av preklinisk forskning med smågnagere.

I dette papiret presenterer vi en start-til-ende eksperimentell protokoll for hjerteavbildning ved hjelp av små dyr integrert PET / CT. Selv om den presenterte protokollen er designet for en bestemt bimodal integrert skanner, kan PET- og CT-delene av den beskrevne prosedyren utføres uavhengig av separate skannere fra forskjellige produsenter. I PET/CT-skanneren som brukes, er operasjonssekvensen organisert i en forhåndsprogrammert arbeidsflyt. Hovedgrenene i hver arbeidsflyt er en eller flere anskaffelsesprotokoller; Hver anskaffelsesprotokoll kan ha en eller flere grener for spesifikke forbehandlingsprotokoller, og i sin tur kan hver forbehandlingsprotokoll ha en eller flere grener for spesifikke rekonstruksjonsprotokoller. Både preparatet av dyret på bildesengen og forberedelsen av de eksterne midlene som skal injiseres under bildebehandlingsprosedyrene, er beskrevet. Etter at prosedyren for bildeopptak er fullført, tilbys eksempler på prosedyrer for kvantitativ bildeanalyse basert på allment tilgjengelige programvareverktøy. Hovedprotokollen er spesielt designet for musemodeller; Selv om musen fortsatt er den mest brukte arten på dette feltet, viser vi også en tilpasning av protokollen for rotteavbildning på slutten av hovedprotokollen. Representative resultater er vist for både mus og rotter, og viser hvilken type utgang som kan forventes med de beskrevne prosedyrene. En grundig diskusjon er gjort på slutten av denne artikkelen for å understreke fordeler og ulemper med teknikken, kritiske punkter, samt hvordan forskjellige PET-radiotracere kan brukes med nesten ingen modifikasjon av de forberedende og oppkjøps- / rekonstruksjonstrinnene.

Protocol

Dyreforsøk ble utført i samsvar med anbefalingene i Veiledning for stell og bruk av forsøksdyr i de internasjonale retningslinjene for håndtering av forsøksdyr, krevd av EU-direktivet (direktiv 86/609/EØF av 1986 og direktiv 2010/63/UE) og italienske lover (D.Lgs. 26/2014). 1. Oppsett av PET / CT-bildeprotokollene og arbeidsflyten MERK: Protokollen som presenteres her er spesielt utviklet for hjerteavbildning av musemodeller. Arbeid med rotter k…

Representative Results

I denne delen vises typiske resultater for både PET- og CT-analyse etter prosedyrene som er beskrevet så langt. Figur 6 viser resultatene av den automatiske myokard- og LV-hulromssegmenteringen av [18F]FDG PET-skanningen av en kontrollert (sunn) CD-1-mus. Selv om høyre ventrikkel ikke alltid er synlig i de rekonstruerte bildene, kan orienteringsaksene basert på DICOM-overskriften brukes til å diskriminere interventrikulær septum riktig fra de andre LV-veggene, etter behov fo…

Discussion

Protokollen som presenteres i denne artikkelen fokuserer på en typisk eksperimentell prosedyre for translasjonell kardiovaskulær forskning på smådyrmodeller av hjerteskade ved bruk av høyoppløselig PET / CT-bildebehandling. De presenterte resultatene indikerer den høye kvantitative og kvalitative verdien av PET- og Cine-CT-bilder, og gir både funksjonell og strukturell informasjon om hele hjertet angående glukosemetabolismen, formen og dynamikken i sammentrekningen. Videre er alle bildene som er oppnådd 3D, tid…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne forskningen ble delvis støttet av JPI-HDHL-INTIMIC “GUTMOM” -prosjektet: Maternal obesity and cognitive dysfunction in the offspring: Cause-effect role of the GUT MicrobiOMe and early dietary prevention (prosjekt nr. INTIMIC-085, det italienske utdanningsdepartementet, universitets- og forskningsdekret nr. 946/2019).

Materials

0.9% sterile saline Fresenius Kabi 0.9% sodium chloride for injection
1025L Physiological Monitoring Small Animal Instruments Physiological monitoring system for small animal imaging
5 mL syringes Artsana Syringes with needle for injection of PET tracer
Atomlab 500 Else Nuclear PET Dose calibrator
Atrium software Inviscan Version 1.5.5 PET/CT operating software
Butterfly catheters Delta Med 27.5 G needle
Carimas software Turku PET Center Version 2.10 Image analysis software
Fenestra VC Medilumine Lipid emulsion iodinated contrast agent for small animals
Heat lamp Heat lamp with clamp and switch
Insulin syringes Artsana Syringes with needle for injection of CT CA
Iomeron 400 mgI/mL Bracco Iomeprol, vascular contrast agent
IRIS PET/CT Inviscan PET/CT scanner for small animals
Isoflurane Zoetis Inhalation anesthetic, 250 mL
OneTouch Glucometer Johnson&Johnson Medical Glucose meter kit
Osirix MD software Pixmeo Version 11 Image analysis software
Oxygen Air liquide Compressed gas
Rectal probe for 1025L Small Animal Instruments Rectal probe with cable for SAII 1025L systems
Respiratory sensor for 1025L Small Animal Instruments Respiratory pillow with tubings for SAII 1025L systems
TJ-3A syringe pump Longer Motorized syringe pump for CT CA injection

Riferimenti

  1. Zaragoza, C. Animal models of cardiovascular diseases. Journal of Biomedicine and Biotechnology. 2011, 497841 (2011).
  2. Russell, J. C., Proctor, S. D. Small animal models of cardiovascular disease: Tools for the study of the roles of metabolic syndrome, dyslipidemia, and atherosclerosis. Cardiovascular Pathology. 15 (6), 318-330 (2006).
  3. Riehle, C., Bauersachs, J. Small animal models of heart failure. Cardiovascular Research. 115 (13), 1838-1849 (2019).
  4. Menichetti, L., et al. MicroPET/CT imaging of αvß3 integrin via a novel 68Ga-NOTA-RGD peptidomimetic conjugate in rat myocardial infarction. European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 40 (8), 1265-1274 (2013).
  5. Zhou, H., et al. Development of a micro-computed tomography-based image-guided conformal radiotherapy system for small animals. International Journal of Radiation Oncology, Biology, Physics. 78 (1), 297-305 (2010).
  6. Di Lascio, N., Kusmic, C., Stea, F., Faita, F. Ultrasound-based pulse wave velocity evaluation in mice. Journal of Visualized Experiments. (120), e54362 (2017).
  7. Dann, M. M., et al. Quantification of murine myocardial infarct size using 2-D and 4-D high-frequency ultrasound. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 322 (3), 359-372 (2022).
  8. Espe, E. K. Novel insight into the detailed myocardial motion and deformation of the rodent heart using high-resolution phase contrast cardiovascular magnetic resonance. Journal of Cardiovascular Magnetic Resonance. 15 (1), 82 (2013).
  9. Vanhove, C., et al. Accurate molecular imaging of small animals taking into account animal models, handling, anaesthesia, quality control and imaging system performance. EJNMMI Physics. 2 (1), 31 (2015).
  10. Garcia, M. J., et al. State of the art: Imaging for myocardial viability: A scientific statement from the American Heart Association. Circulation: Cardiovascular Imaging. 13 (7), 000053 (2020).
  11. Panetta, D., et al. Cardiac computed tomography perfusion: Contrast agents, challenges and emerging methodologies from preclinical research to the clinics. Academic Radiology. 28 (1), 1-18 (2020).
  12. Kusmic, C. Up-regulation of heme oxygenase-1 after infarct initiation reduces mortality, infarct size and left ventricular remodeling: experimental evidence and proof of concept. Journal of Translational Medicine. 12 (1), 89 (2014).
  13. Muthuramu, I., Lox, M., Jacobs, F., De Geest, B. Permanent ligation of the left anterior descending coronary artery in mice: A model of post-myocardial infarction remodelling and heart failure. Journal of Visualized Experiments. (94), e52206 (2014).
  14. Fischer, M., et al. Comparison of metabolic and functional parameters using cardiac 18F-FDG-PET in early to mid-adulthood male and female mice. EJNMMI Research. 11 (1), 7 (2021).
  15. Valenta, I., et al. Feasibility evaluation of myocardial cannabinoid type 1 receptor imaging in obesity: A translational approach. JACC: Cardiovascular Imaging. 11 (2), 320-332 (2018).
  16. Fueger, B. J., et al. Impact of animal handling on the results of 18F-FDG PET studies in mice. Journal of Nuclear Medicine. 47 (6), 999-1006 (2006).
  17. . Carimas User Manual Available from: https://turkupetcentre.fl/carimas/files/archive/Html/a1.html (2022)
  18. Peters, A. M. Graphical analysis of dynamic data: The Patlak-Rutland plot. Nuclear Medicine Communications. 15 (9), 669-672 (1994).
  19. Choi, Y., et al. Parametric images of myocardial metabolic rate of glucose generated from dynamic cardiac PET and 2-[18F]fluoro-2-deoxy-d-glucose studies. Journal of Nuclear Medicine. 32 (4), 733-738 (1991).
  20. Laffon, E., Marthan, R. Is Patlak y-intercept a relevant metrics. European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 48 (5), 1287-1290 (2021).
  21. Flores, J. E., McFarland, L. M., Vanderbilt, A., Ogasawara, A. K., Williams, S. -. P. The effects of anesthetic agent and carrier gas on blood glucose and tissue uptake in mice undergoing dynamic FDG-PET imaging: Sevoflurane and isoflurane compared in air and in oxygen. Molecular Imaging and Biology. 10 (4), 192-200 (2008).
  22. Ng, C. K. Sensitivity of myocardial fluorodeoxyglucose lumped constant to glucose and insulin. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 260 (2), 593-603 (1991).
  23. Shoghi, K. I., Welch, M. J. Hybrid image and blood sampling input function for quantification of small animal dynamic PET data. Nuclear Medicine and Biology. 34 (8), 989-994 (2007).
  24. Heuberger, J., Pixmeo, S., Rosset, A. OsiriX User Manual. Blurb. , (2017).
  25. Cerqueira, M. D., et al. Standardized myocardial segmentation and nomenclature for tomographic imaging of the heart. A statement for healthcare professionals from the Cardiac Imaging Committee of the Council on Clinical Cardiology of the American Heart Association. Circulation. 105 (4), 539-542 (2002).
  26. Kolanowski, T. J., et al. Multiparametric evaluation of post-MI small animal models using metabolic ([18F]FDG) and perfusion-based (SYN1) heart viability tracers. International Journal of Molecular Sciences. 22 (22), 12591 (2021).
  27. Guiducci, L., et al. Contribution of organ blood flow, intrinsic tissue clearance and glycaemia to the regulation of glucose use in obese and type 2 diabetic rats: A PET study. Nutrition Metabolism and Cardiovascular Diseases. 21 (9), 726-732 (2011).
  28. Tadinada, S. M., et al. Functional resilience of C57BL/6J mouse heart to dietary fat overload. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 321 (5), 850-864 (2021).
  29. Dreyfuss, A. D., et al. A novel mouse model of radiation-induced cardiac injury reveals biological and radiological biomarkers of cardiac dysfunction with potential clinical relevance. Clinical Cancer Research. 27 (8), 2266-2276 (2021).
  30. Hsu, B. PET tracers and techniques for measuring myocardial blood flow in patients with coronary artery disease. Journal of Biomedical Research. 27 (6), 452-459 (2013).
  31. Dinkel, J., et al. Intrinsic gating for small-animal computed tomography. Circulation: Cardiovascular Imaging. 1 (3), 235-243 (2008).
  32. Kuntz, J., et al. Fully automated intrinsic respiratory and cardiac gating for small animal CT. Physics in Medicine and Biology. 55 (7), 2069-2085 (2010).
  33. Li, Y., Zhang, W., Wu, H., Liu, G. Advanced tracers in PET imaging of cardiovascular disease. BioMed Research International. 2014, 504532 (2014).
  34. Kim, D. -. Y., Cho, S. -. G., Bom, H. -. S. Emerging tracers for nuclear cardiac PET imaging. Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 52 (4), 266-278 (2018).
  35. Maddahi, J., Packard, R. R. S. Cardiac PET perfusion tracers: Current status and future directions. Seminars in Nuclear Medicine. 44 (5), 333-343 (2014).
  36. Bentourkia, M. Kinetic modeling of PET data without blood sampling. IEEE Transactions on Nuclear Science. 52 (3), 697-702 (2005).
  37. Lammertsma, A. A. Forward to the past: The case for quantitative PET imaging. Journal of Nuclear Medicine. 58 (7), 1019-1024 (2017).
  38. Nahrendorf, M., et al. High-resolution imaging of murine myocardial infarction with delayed-enhancement cine micro-CT. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 292 (6), 3172-3178 (2007).
  39. Badea, C. T., Fubara, B., Hedlund, L. W., Johnson, G. A. 4-D micro-CT of the mouse heart. Molecular Imaging. 4 (2), 110-116 (2005).
  40. Technical Resources. MediLumine Available from: https://www.medilumine.com/technical-resources (2019)
  41. Nebuloni, L., Kuhn, G. A., Müller, R. A Comparative analysis of water-soluble and blood-pool contrast agents for in vivo vascular imaging with micro-CT. Academic Radiology. 20 (10), 1247-1255 (2013).
  42. Panetta, D., et al. Performance evaluation of the CT component of the IRIS PET/CT preclinical tomograph. Nuclear Instruments & Methods in Physics Research Section A: Accelerators Spectrometers Detectors and Associated Equipment. 805, 135-144 (2016).
  43. Gu, J., et al. At what dose can total body and whole abdominal irradiation cause lethal intestinal injury among C57BL/6J mice. Dose-Response. 18 (3), 1559325820956783 (2020).
  44. Amirrashedi, M., Zaidi, H., Ay, M. R. Advances in preclinical PET instrumentation. PET Clinics. 15 (4), 403-426 (2020).
  45. Clark, D. P., Badea, C. T. Advances in micro-CT imaging of small animals. Physica Medica. 88, 175-192 (2021).
  46. Belcari, N., Del Guerra, A., Panetta, D., Grupen, C., Buvat, I. High-Resolution and Animal Imaging Instrumentation and Techniques. Handbook of Particle Detection and Imaging. , 1497-1535 (2021).
  47. Wang, G., Rahmim, A., Gunn, R. N. PET Parametric imaging: Past, present, and future. IEEE Transactions on Radiation and Plasma Medical Sciences. 4 (6), 663-675 (2020).
  48. Befera, N. T., Badea, C. T., Johnson, G. A. Comparison of 4D-microSPECT and microCT for murine cardiac function. Molecular Imaging and Biology. 16 (2), 235-245 (2014).
  49. van Deel, E., Ridwan, Y., van Vliet, J. N., Belenkov, S., Essers, J. In vivo quantitative assessment of myocardial structure, function, perfusion and viability using cardiac micro-computed tomography. Journal of Visualized Experiments. (108), e53603 (2016).
  50. Lee, C. -. L., et al. Assessing cardiac injury in mice with dual energy-microCT, 4D-microCT and microSPECT imaging following partial-heart irradiation. International Journal of Radiation Oncology, Biology, Physics. 88 (3), 686-693 (2014).
  51. Harms, H., et al. Comparison of clinical non-commercial tools for automated quantification of myocardial blood flow using oxygen-15-labelled water PET/CT. European Heart Journal – Cardiovascular Imaging. 15 (4), 431-441 (2013).
  52. Nesterov, S. V., et al. Myocardial perfusion quantitation with 15O-labelled water PET: High reproducibility of the new cardiac analysis software (CarimasTM). European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 36 (10), 1594-1602 (2009).
  53. Nesterov, S. V., et al. Myocardial perfusion quantification with Rb-82 PET: Good interobserver agreement of Carimas software on global, regional, and segmental levels. Annals of Nuclear Medicine. 36, 507-514 (2022).
  54. Nesterov, S. V., et al. One-tissue compartment model for myocardial perfusion quantification with N-13 ammonia PET provides matching results: A cross-comparison between Carimas, FlowQuant, and PMOD. Journal of Nuclear Cardiology. , (2021).
  55. Thackeray, J. T., Kuntner-Hannes, C., Haemisch, Y. Preclinical Multimodality Imaging and Image Fusion in Cardiovascular Disease. Image Fusion in Preclinical Applications. , 161-181 (2019).
  56. Vohra, R., Batra, A., Forbes, S. C., Vandenborne, K., Walter, G. A. Magnetic resonance monitoring of disease progression in mdx mice on different genetic backgrounds. The American Journal of Pathology. 187 (9), 2060-2070 (2017).
  57. Baehr, A., et al. Agrin promotes coordinated therapeutic processes leading to improved cardiac repair in pigs. Circulation. 142 (9), 868-881 (2020).
  58. Lalwani, K., et al. Contrast agents for quantitative microCT of lung tumors in mice. Comparative Medicine. 63 (6), 482-490 (2013).
  59. Bertoldo, A., et al. Evaluation of compartmental and spectral analysis models of [18F]FDG kinetics for heart and brain studies with PET. IEEE Transactions on Bio-medical Engineering. 45 (12), 1429-1448 (1998).
  60. Li, Y., Kundu, B. K. An improved optimization algorithm of the three-compartment model with spillover and partial volume corrections for dynamic FDG PET images of small animal hearts in vivo. Physics in Medicine and Biology. 63 (5), 055003 (2018).
  61. Mabrouk, R., Dubeau, F., Bentourkia, M., Bentabet, L. Extraction of time activity curves from gated FDG-PET images for small animals’ heart studies. Computerized Medical Imaging and Graphics. 36 (6), 484-491 (2012).
check_url/it/64066?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Panetta, D., Guzzardi, M. A., La Rosa, F., Granziera, F., Terlizzi, D., Kusmic, C., Iozzo, P. High-Resolution Cardiac Positron Emission Tomography/Computed Tomography for Small Animals. J. Vis. Exp. (190), e64066, doi:10.3791/64066 (2022).

View Video