È richiesta un abbonamento a JoVE per visualizzare questo contenuto. Accedi o inizia la tua prova gratuita.

Articolo metodologico

Imaging dal vivo della dinamica dei microtubuli nelle cellule di glioblastoma che invadono il cervello del pesce zebra

2.8K visualizzazioni

⸱

DOI:

10.3791/64093

⸱

29 luglio 2022

 ,  , 

In questo articolo

Sommario

Riportiamo una tecnica che consente l'imaging dal vivo della dinamica dei microtubuli nelle cellule di glioblastoma (GBM) che invadono un tessuto cerebrale dei vertebrati. L'accoppiamento dell'iniezione ortotopica di cellule GBM marcate con fluorescenza in un cervello di zebrafish trasparente con imaging intravitale ad alta risoluzione consente la misurazione della dinamica del citoscheletro durante l'invasione del cancro in situ .

Abstract

Con un triste tempo di sopravvivenza mediano nelle popolazioni reali - tra 6 e 15 mesi - il glioblastoma (GBM) è il tumore cerebrale maligno più devastante. Il fallimento del trattamento è dovuto principalmente all'invasività delle cellule GBM, che parla della necessità di una migliore comprensione delle proprietà mobili GBM. Per studiare il meccanismo molecolare che supporta l'invasione del GBM, sono necessari nuovi modelli fisiologici che consentano una caratterizzazione approfondita della dinamica delle proteine durante l'invasione. Queste osservazioni aprirebbero la strada alla scoperta di nuovi bersagli per bloccare l'infiltrazione tumorale e migliorare i risultati dei pazienti. Questo articolo riporta come uno xenotrapianto ortotopico di cellule GBM nel cervello del pesce zebra consenta l'imaging dal vivo intravitale subcellulare. Concentrandoci sui microtubuli (MT), descriviamo una procedura per l'etichettatura MT nelle cellule GBM, la microiniezione di cellule GBM nel cervello trasparente delle larve di zebrafish 3 giorni dopo la fecondazione (DPF), l'imaging intravitale delle MT negli xenotrapianti disseminanti, l'alterazione della dinamica della MT per valutare il loro ruolo durante l'invasione GBM e l'analisi dei dati acquisiti.

Introduzione

La motilità cellulare è un processo stereotipato che richiede la creazione dell'asse di polarità e riarrangiamenti citoscheletrici generatori di forza. La polimerizzazione dell'actina e la sua associazione con la miosina sono riconosciute come i principali contributori alle forze protrusive e contrattili richieste per il movimento cellulare1. I microtubuli sono considerati i principali attori della polarizzazione cellulare e della persistenza direzionale durante la migrazione2. Negli ultimi anni, le MT hanno anche dimostrato di creare e stabilizzare protrusioni per supportare le forze di meccanocompressione durante l'inv....

Accesso limitato. Accedi o avvia una prova gratuita per visualizzare questo contenuto.

Protocollo

Gli esperimenti sugli animali sono stati condotti secondo le linee guida dell'Unione europea per la manipolazione di animali da laboratorio. Tutti i protocolli sono stati approvati dal Comitato Etico per la Sperimentazione Animale dell'Institut Pasteur - CEEA 89 e dal Ministero della Ricerca e dell'Istruzione francese (permesso #01265.03). Durante le iniezioni o le sessioni di imaging dal vivo, gli animali sono stati anestetizzati con Tricaine.At la fine delle procedure sperimentali, sono stati eutanizzati da overdose di anestetico. Vedere la tabella dei materiali per i dettagli relativi ai materiali, alle attrezzature e al software utilizzati in ques....

Accesso limitato. Accedi o avvia una prova gratuita per visualizzare questo contenuto.

Risultati

Per analizzare il ruolo svolto dalle MT durante l'invasione GBM in vivo, descriviamo qui i principali passi per eseguire la marcatura MT stabile nelle cellule GBM mediante infezione lentivirale, xenotrapianti ortotopici di cellule GBM in larve di zebrafish 3 dpf, imaging intravitale ad alta risoluzione della dinamica MT, trattamento MTA e suoi effetti sull'invasione GBM e analisi delle immagini della dinamica MT e invasione in vivo (Figura 1). La dinamica .......

Accesso limitato. Accedi o avvia una prova gratuita per visualizzare questo contenuto.

Discussione

È probabile che l'imaging di xenotrapianti tumorali a risoluzione singola cellulare diventi uno strumento indispensabile per migliorare la nostra comprensione della biologia GBM. L'imaging dal vivo nei modelli PDX murini ha portato a preziose scoperte su come GBM invade collettivamente il tessuto cerebrale18. Tuttavia, ad oggi, la risoluzione spaziotemporale non è abbastanza alta da rivelare la dinamica delle proteine che controllano l'invasione GBM. Abbiamo ragionato che accoppiando l'attecchimen.......

Accesso limitato. Accedi o avvia una prova gratuita per visualizzare questo contenuto.

Dichiarazioni

Gli autori non hanno conflitti di interesse da rivelare.

Ringraziamenti

Siamo estremamente grati al Dr. P. Herbomel (Institut Pasteur, Francia) e al suo laboratorio, in particolare Valérie Briolat, ed Emma Colucci-Guyon per averci fornito le linee zebrafish e lo stampo in plastica per le piastre di microiniezione, e per la loro preziosa esperienza sulle procedure sperimentali del pesce zebra. Riconosciamo con gratitudine UtechS Photonic BioImaging (C2RT, Institut Pasteur, supportato dall'Agenzia nazionale francese per la ricerca France BioImaging, e ANR-10-INBS-04; Investimenti per il futuro). Questo lavoro è stato sostenuto dalla Ligue contre le cancer (EL2017. LNCC), il Centre National de la Recherche Scientifique, e l'Institut Pasteur ....

Accesso limitato. Accedi o avvia una prova gratuita per visualizzare questo contenuto.

Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Coltura cellulare di glioblastoma
Siero di vitello fetaleEurobioCVFSVF00-01Reagente
MEM NEAAGibco11140-050Reagente
Medium di Eagle modificatoEurobioCM1MEM18-01Reagente
Penicillina... streptomicinaGibco15140-122Reagente
U-87 MGECACC89081402-1VL
CelluleProduzione di Lenitivirus
BD FACSAria IIIBD bioscienzeStrumento
BD FACSDiva software v8.0BD bioscienzeSoftware
HEK-293TMerck12022001Cells
pMD2.GAddgenePlasmid #12259Reagente
psPAX2AddgenePlasmid #12260Reagente
Ultracentrifuga Optima XPN-80Beckman CoulterInstrument
Cell Passging and coloring
dPBSGibco14190-094Chimico
Hoechst 34580Sigma-Aldrich63493
Tripsina-EDTA chimica (0,05%)Gibco25300-054Reagent
Zebrafish allevamento
Stereomicroscopio a fluorescenza LEICA M165FCLEICAhttps://www.leica-microsystems.com/fr/produits/stereomicroscopes-et-macroscopes/informations-detaillees/leica-m165-fc/Strumento
Idrato di metilene bluSigma-AldrichM4159Chimico
N-Feniltiourea (PTU)Sigma-AldrichP7629-25GTrasferimento chimico
Pipette punte finiSamcoScientific 232Trasferimento di attrezzature
Pipette Bulbo grande3mLSamco Scientific225Attrezzatura
Tricaina (Etile 3-amminobenzoato metanosulfonato)Sigma-AldrichCat#: A5040Acqua di
sorgente volvicaDUTSCHER DOMINIQUE SASReagent
Xenotransplantation
piastra a 24 pozzettiTPP92024Attrezzatura
Capillari in vetro borosilicato (1,0 ODx0,58IDx150L mm)Apparato Harvard(#30-0017 GC100-15Attrezzatura
CellTram olio vario microiniettoreEppendorf5176000.025Strumento
Microcaricamento puntali per pipette (Microloader) 20µ LEppendorf  5242956003
Attrezzatura MicromanipolatoreNARISHIGEhttps://products.narishige-group.com/group1/injection/english.htmlAttrezzatura
Olio MineraleSigmaM8410-100ml
Attrezzatura StereomicroscopioOlympusKL 2500 LCDStrumento
capillare universaleEppendorf5176190002Attrezzatura
Estrattore verticale per pipetteKOPF (Roucaire)Modello 720Instrument
Intravital Imaging
3,5 cm piatto di videoimaging con fondo in vetroMatTek Life Sciences, MA, USAP35G-1,5-14-CSoftware di acquisizione dell'attrezzatura
: NIS-Elements-AR versione 5.21NikonSoftware
Heat-BlockTechneDRI-BLOCK DB-2DAttrezzatura
Testa del microscopio Nikon Ti2ENikonInstrument
sCMOS camera Prime 95BPhotometricsInstrument
sCMOS camera Orca Flash 4Hammatsu
Instrument Ultrapure Basso punto di fusione agarosioInvitrogen16520-050Chemical
Yokagawa CSU-W1 spinning disk unitàHammatsuInstrument
Drug Treatment
DMSOSigma-AldrichD2650-100ML
NocodazoloSigma-AldrichM1404-2MGChemical
Image Analysis
Imaris 9.5.1 softwareOxford StrumentiSoftware
ImarisFileConverter 9.5.1Oxford InstrumentsSoftware
chimica 999556 Supporto chimico

Riferimenti

  1. Pollard, T. D., Borisy, G. G. Cellular motility driven by assembly and disassembly of actin filaments. Cell. 112 (4), 453-465 (2003).
  2. Etienne-Manneville, S. Microtubules in cell migration. Annual Review of Cell and Developmental Biology. 29, 471-499 (2013).

Accesso limitato. Accedi o avvia una prova gratuita per visualizzare questo contenuto.

Ristampe e permessi

Esplora altri articoli

Invasione del glioblastomaxenotrapianto ortotopicomicroscopia confocalemarcatura dei microtubuliimaging intravitaletrattamento con nocodazolomodelli di tumore cerebrale