Summary

다운스트림 순환 프리 DNA 응용을 위한 표준화된 액체 생검 사전 분석 프로토콜

Published: September 16, 2022
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Summary

액체 생검은 종양학 번역 연구에 대한 우리의 접근 방식에 혁명을 일으켰으며, 샘플 수집, 품질 및 보관은 성공적인 임상 적용을위한 중요한 단계입니다. 여기에서는 대부분의 번역 연구 실험실에 적용 할 수있는 다운스트림 순환 프리 DNA 응용 프로그램에 대한 표준화되고 검증 된 프로토콜을 설명합니다.

Abstract

액체 생검 (LB)이라는 용어는 단백질, DNA, RNA, 세포 또는 혈액 및 원발성 및 / 또는 전이성 종양에서 유래 한 다른 체액의 세포 밖 소포와 같은 분자를 의미합니다. LB는 번역 연구의 주류로 부상했으며 임상 종양학 실습의 일부가되기 시작하여 고형 생검에 대한 최소 침습적 대안을 제공합니다. LB는 혈액과 같은 최소 침습적 샘플 추출을 통해 종양을 실시간으로 모니터링 할 수 있습니다. 응용 분야에는 조기 암 검출, 질병 진행 검출을위한 환자 추적 관찰, 최소 잔류 질환의 평가, 분자 진행 및 내성 메커니즘의 잠재적 인 확인이 포함됩니다. 클리닉에서보고 할 수있는 이러한 샘플에 대한 신뢰할 수있는 분석을 달성하기 위해서는 사전 분석 절차를 신중하게 고려하고 엄격하게 따라야합니다. 샘플 수집, 품질 및 스토리지는 다운스트림 응용 프로그램에서의 유용성을 결정하는 중요한 단계입니다. 여기에서는 순환이 없는 DNA를 기반으로 하는 다운스트림 액체 생검 분석을 위해 혈장 및 혈청 샘플을 수집, 처리 및 저장하기 위한 액체 생검 작업 모듈의 표준화된 프로토콜을 제시합니다. 여기에 제시된 프로토콜은 표준 장비를 필요로하며 생물학적 절차에 중점을 둔 대부분의 실험실에 적용 할 수있을만큼 유연합니다.

Introduction

용어 “액체 생검”은 2010년1 차 종양으로부터 기원되는 혈액 및 다른 체액에서 분자(예를 들어, 단백질, 데옥시리보핵산(DNA), 리보핵산(RNA)), 세포밖 소포(예를 들어, 엑소좀)의 존재로서 정의되었다. 액체 생검 샘플의 사용은 특정 순간에 특정 영역으로 제한된 조직 생검이 종양 이질성으로 인해 관련 클론을 놓칠 수 있기 때문에 번역 종양학 연구에 혁명을 일으켰습니다. 또한, 액체 생검은 침습적 생검을 피할 수 있기 때문에 원발성 조직이 부족하거나 접근할 수 없는 종양 유형에서 관련 역할을 하며, 이는 환자의 비용과 위험을 감소시킬 수 있기 때문이다. 더욱이, 종양 분자 특성은 주로 치료 압력으로 인해 끊임없이 진화하고 있으며, 액체 생검 샘플은 기준선, 치료, 최상의 반응, 질병 진행 또는 심지어 전과 같은 질병의 다른 임상 및 치료 시간에서 종적으로, 복용 할 수 있기 때문에 종양 클론 역학을 포착 할 수 있습니다. “실시간 액체 생검”의 개념은 종양의 동적 변화를 실시간으로 모니터링 할 수 있으므로이 질병에서 정밀 의학을 가능하게한다는 것을 의미합니다. 액체 생검은 암의 스크리닝 및 조기 발견, 질병의 실시간 모니터링, 최소 잔류 질환의 검출, 치료 저항성에 대한 메커니즘 연구 및 치료 수준1에서 환자의 계층화를 포함하여 클리닉에서 수많은 잠재적 인 응용 프로그램을 가지고 있습니다. 질병 재발 및 진행의 조기 발견은 많은 종양 유형에서 충족되지 않은 임상 적 요구이며 암 환자의 생존과 삶의 질을 높이는 핵심 요소입니다. 일상적인 영상화 방식 및 가용성 종양 마커는 이 작업에 필요한 민감도 및/또는 특이성이 부족할 수 있다. 따라서, 신규한 예측 마커는 순환하는 유리 핵산에 기초한 것들과 같은 클리닉에서 긴급하게 필요하다.

액체 생검 연구에 사용되는 샘플의 유형은 혈액, 소변, 타액 및 대변 샘플을 포함하지만 이에 국한되지 않습니다. 다른 종양-특이적 샘플은 세포 아스피레이트, 뇌척수액, 흉막액, 낭종 및 복수액, 객담, 및 췌장 주스2일 수 있다. 전액은 상이한 유형의 암 유래 물질, 순환 종양 세포 (CTC), 또는 엑소좀 및 무세포 순환 종양 DNA (ctDNA)와 같은 단편을 함유할 수 있다. 핵산은 세포밖 소포(EVs)에 캡슐화되거나 세포 사멸 및 손상으로 인해 체액으로 방출될 수 있다. 순환 자유 DNA (cfDNA)는 주로 사멸 또는 괴사 세포로부터 혈류로 방출되며 모든 개체에 존재하며 염증성 또는 종양학 질환에서 증가 된 수준을 보여줍니다3. 엑소좀은 핵산, 단백질 및 지질을 포함하는 세포에 의해 분비되는 작은 세포밖 소포 (∼30-150 nm)이다. 이 소포는 세포 간 통신 네트워크의 일부를 형성하며 일반적으로 많은 유형의 체액에서 발견됩니다2. EV 내부에 둘러싸인 핵산은 체액 내의 가혹한 환경으로부터 보호되므로 액체 생검 설정에서 이러한 분자를 연구하는보다 강력한 방법을 제공합니다.

전반적으로, 액체 생검 샘플에서 순환 핵산의 수준은 매우 낮기 때문에 디지털 PCR 또는 차세대 시퀀싱 (NGS)과 같은 검출에 민감한 방법이 필요합니다. 샘플의 사전 분석 관리는 혈액 세포 용해 및 손상되지 않은 DNA의 방출을 방지하여 cfDNA와 게놈 DNA의 오염을 일으키는 데 중요합니다. 또한, 효소 기반 분석 방법의 억제제의 존재를 피하기 위해 샘플을 추출 할 때주의해야합니다.

여기서 우리는 혈장 및 혈청 샘플의 수집 및 저장을위한 표준화 된 방법을 제시하며, 이는 순환 핵산 분석을 포함한 액체 생검 기반 하류 적용을위한 중요한 첫 번째 단계입니다.

Protocol

혈액 샘플을 추출하기 전에 참여 센터에서 사전 윤리적 승인을 받았습니다. 혈청 및 혈장 분리를 위한 다음의 프로토콜은 생물의학 연구를 위한 윤리적 원리에 따라 수행되었다. 참고: 프로토콜을 시작하기 전에 미리 고려해야 할 사항이 여기에 나와 있습니다. 생물 의학 연구에서 인간 샘플을 사용하려면 사전 윤리적 승인이 필요하며 해당 정보에 입각 한 동의가 필요합니다…

Representative Results

항응고제 없이 혈액관을 원심분리한 후, 상층부는 옅은 노란색으로 나타나며 혈청 분획에 해당한다(도 2). 이 분획은 조심스럽게 제거되고 후속 분석을 위해 분취됩니다. 용혈은 혈장 또는 혈청 분획 중 하나에 존재할 수 있으며, 상상은 용혈의 존재 및 정도를 나타내는 붉은 외관을 가질 것이다 (그림 3). EDTA 튜…

Discussion

액체 생검은 암 관리 중 다른 시간에 수많은 잠재적 인 응용 프로그램을 가지고 있습니다. 첫째, 진단에서 임상적으로 더 조사될 수 있는 잠재적인 종양 병변의 존재를 시사하는 종양 분자 마커를 동정한다. 둘째, 질병의 실시간 모니터링을 위한 치료 동안, 치료 분자 반응의 평가, 클론 진화, 및 질병 재발 또는 치료 저항성의 조기 검출. 마지막으로, 외과 적 치료 후, 최소한의 잔류 질환의 검출을?…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

우리는 그들의 지원과 다음과 같은 프로젝트 보조금에 대한 암 생물 의학 연구 네트워크 (CIBERONC)에 감사드립니다 : LB CIBERONC PLATFORM : CIBERONC 플랫폼 액체 생검의 표준화 및 홍보. PI 로드리고 톨레도, (CIBERONC), 2019-2021.

Materials

1.5 mL Eppendorf tubes Eppendorf 0030 120.086 Any standard tubes/equipment can be used
10 mL serological disposable pipettes BIOFIL GSP010010 Any standard tubes/equipment can be used
10 mL Vacutainer K2 EDTA tube Becton Dickinson 367525 These tubes can be used for plasma collection
15 mL polypropylene centrifuge tubes BIOFIL CFT411150 Any standard tubes/equipment can be used
3.5 mL BD Vacutainer tube without anticoagulant Becton Dickinson 368965 Either 8.5 or 3.5 mL tubes can be used for serum collection
4 mL polypropylene cryogenic vial, round bottom, self-standing Corning 430662 Any standard tubes/equipment can be used
4 mL Vacutainer K2 EDTA tube Becton Dickinson 367864 These tubes can be used for plasma collection
4200 TapeStation System Agilent G2991BA Several quantification methods are available with a  specific application for cfDNA
5 mL serological disposable pipettes BIOFIL GSP010005 Any standard tubes/equipment can be used
8.5 mL BD Vacutainer tube without anticoagulant Becton Dickinson 366468 Either 8.5 or 3.5 mL tubes can be used for serum collection
Centrifuge, capable of ~3000 x g with a swing bucket rotor Thermo Fisher Scientific Sorvall ST 16  10688725 Any standard tubes/equipment can be used
Freezer storage boxes for 1–4 mLcryogenic vials Corning 431120 These boxes are needed when using 4 mL vials for storage
p1000 pipette tips CORNING 4809 Any standard tubes/equipment can be used
QIAamp Circulating Nucleic Acid Kit Qiagen 55114 Any commercially available kit that is specific for cfDNA isolation can be used with this blood prcessing protocol.
Streck Cell-Free DNA BCT CE tubes 10 mL Streck 218997 These tubes can be used for plasma collection
Temperature Freezer (-80 °C) ESCO 2180104 Any standard tubes/equipment can be used

Riferimenti

  1. Alix-Panabières, C., Pantel, K. Clinical applications of circulating tumor cells and circulating tumor DNA as liquid biopsy. Cancer Discovery. 6 (5), 479-491 (2016).
  2. Zhou, B., et al. Application of exosomes as liquid biopsy in clinical diagnosis. Signal Transduction and Targeted Therapy. 5 (1), 144 (2020).
  3. Bettegowda, C., et al. Liquid biopsies: Genotyping circulating tumor DNA. Nature Medicine. 4 (6), (2014).
  4. Heitzer, E., et al. Recommendations for a practical implementation of circulating tumor DNA mutation testing in metastatic non-small-cell lung cancer. ESMO Open. 7 (2), 100399 (2022).
  5. Gennari, A., et al. ESMO Clinical Practice Guideline for the diagnosis, staging and treatment of patients with metastatic breast cancer. Annals of Oncology: Official Journal of the European Society for Medical Oncology. 32 (12), 1475-1495 (2021).
  6. Van Buren, T., Arwatz, G., Smits, A. J. A simple method to monitor hemolysis in real time. Scientific Reports. 10 (1), 5101 (2020).
  7. Ignatiadis, M., Sledge, G. W., Jeffrey, S. S. Liquid biopsy enters the clinic – implementation issues and future challenges. Nature Reviews. Clinical Oncology. 18 (5), 297-312 (2021).
  8. Sidstedt, M., et al. Inhibition mechanisms of hemoglobin, immunoglobulin G, and whole blood in digital and real-time PCR. Analytical and Bioanalytical Chemistry. 410 (10), 2569-2583 (2018).
  9. Maass, K. K., et al. From sampling to sequencing: A liquid biopsy pre-analytic workflow to maximize multi-layer genomic information from a single tube. Cancers. 13 (12), 3002 (2021).
  10. Greytak, S. R., et al. Harmonizing cell-free DNA collection and processing practices through evidence-based guidance. Clinical Cancer Research: An Official Journal of the American Association for Cancer Research. 26 (13), 3104-3109 (2020).
  11. Trigg, R. M., Martinson, L. J., Parpart-Li, S., Shaw, J. A. Factors that influence quality and yield of circulating-free DNA: A systematic review of the methodology literature. Heliyon. 4 (7), 00699 (2018).
  12. Boissier, E., et al. The centrifuge brake impacts neither routine coagulation assays nor platelet count in platelet-poor plasma. Clinical Chemistry and Laboratory Medicine. 58 (9), 185-188 (2020).
  13. Johansson, G., et al. Considerations and quality controls when analyzing cell-free tumor DNA. Biomolecular Detection and Quantification. 17, 100078 (2019).
  14. Casas-Arozamena, C., et al. Genomic profiling of uterine aspirates and cfDNA as an integrative liquid biopsy strategy in endometrial cancer. Journal of Clinical Medicine. 9 (2), 585 (2020).
  15. Alcoceba, M., et al. Liquid biopsy: a non-invasive approach for Hodgkin lymphoma genotyping. British Journal of Haematology. 195 (4), 542-551 (2021).
  16. Szpechcinski, A., et al. Cell-free DNA levels in plasma of patients with non-small-cell lung cancer and inflammatory lung disease. British Journal of Cancer. 113 (3), 476-483 (2015).
  17. Earl, J., et al. Somatic mutation profiling in the liquid biopsy and clinical analysis of hereditary and familial pancreatic cancer cases reveals kras negativity and a longer overall survival. Cancers. 13 (7), 1612 (2021).
  18. Lampignano, R., et al. Multicenter evaluation of circulating cell-free DNA extraction and downstream analyses for the development of standardized (pre)analytical work flows. Clinical Chemistry. 66 (1), 149-160 (2020).
  19. Febbo, P. G., et al. Minimum technical data elements for liquid biopsy data submitted to public databases. Clinical Pharmacology and Therapeutics. 107 (4), 730-734 (2020).
  20. De Mattos-Arruda, L., Siravegna, G. How to use liquid biopsies to treat patients with cancer. ESMO Open. 6 (2), 100060 (2021).
check_url/it/64123?article_type=t

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Citazione di questo articolo
Earl, J., Calabuig-Fariñas, S., Sarasquete, M. E., Muinelo Romay, L., Lopez-Tarruella, S., Bellosillo Paricio, B., Rodríguez, M., Valencia Leoz, K., Dueñas Porto, M., Tarazona, N., Hernandez Losa, J., Toledo, R. A. A Standardized Liquid Biopsy Preanalytical Protocol for Downstream Circulating-Free DNA Applications. J. Vis. Exp. (187), e64123, doi:10.3791/64123 (2022).

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