Summary

Ett standardiserat preanalytiskt protokoll för flytande biopsi för nedströms cirkulationsfria DNA-applikationer

Published: September 16, 2022
doi:

Summary

Den flytande biopsin har revolutionerat vårt tillvägagångssätt för onkologiska translationella studier, med provinsamling, kvalitet och lagring som avgörande steg för dess framgångsrika kliniska tillämpning. Här beskriver vi ett standardiserat och validerat protokoll för nedströms cirkulationsfria DNA-applikationer som kan tillämpas i de flesta translationella forskningslaboratorier.

Abstract

Termen flytande biopsi (LB) avser molekyler som proteiner, DNA, RNA, celler eller extracellulära vesiklar i blod och andra kroppsvätskor som härrör från den primära och / eller metastatiska tumören. LB har framstått som en grundpelare i translationell forskning och har börjat bli en del av klinisk onkologipraxis, vilket ger ett minimalt invasivt alternativ till fast biopsi. LB möjliggör realtidsövervakning av en tumör via en minimalt invasiv provutvinning, såsom blod. Applikationerna inkluderar tidig upptäckt av cancer, patientuppföljning för upptäckt av sjukdomsprogression, bedömning av minimal restsjukdom och potentiell identifiering av molekylär progression och resistensmekanism. För att uppnå en tillförlitlig analys av dessa prover som kan rapporteras i kliniken bör de preanalytiska procedurerna noggrant övervägas och följas strikt. Provinsamling, kvalitet och lagring är viktiga steg som avgör deras användbarhet i underordnade program. Här presenterar vi standardiserade protokoll från vår flytande biopsiarbetsmodul för insamling, bearbetning och lagring av plasma- och serumprover för nedströms flytande biopsianalys baserat på cirkulerande fritt DNA. Protokollen som presenteras här kräver standardutrustning och är tillräckligt flexibla för att kunna tillämpas i de flesta laboratorier som fokuserar på biologiska förfaranden.

Introduction

Termen “flytande biopsi” definierades 20101 som närvaron av molekyler (t.ex. protein, deoxiribonukleinsyra (DNA), ribonukleinsyra (RNA)), celler eller extracellulära vesiklar (t.exosomer) i blod och andra kroppsvätskor som härrör från den primära tumören. Användningen av flytande biopsiprover har revolutionerat translationell onkologiforskning eftersom vävnadsbiopsier, begränsade till en viss region vid ett visst ögonblick, kan missa relevanta kloner på grund av tumörheterogenitet. Dessutom spelar flytande biopsi en relevant roll i tumörtyper där primär vävnad är knapp eller inte tillgänglig, eftersom det kan undvika en invasiv biopsi, vilket minskar kostnaderna och risken för patienterna. Dessutom utvecklas tumörmolekylära egenskaper ständigt främst på grund av terapitrycket, och flytande biopsiprover kan fånga tumörklonaldynamiken eftersom de kan tas i längdriktningen, i olika kliniska och terapeutiska tider av sjukdomen, såsom baslinje, vid behandling, bästa svar och vid sjukdomsprogression eller till och med tidigare. Begreppet “flytande biopsi i realtid” innebär att dynamiska förändringar i tumören kan övervakas i realtid, vilket möjliggör precisionsmedicin vid denna sjukdom. Den flytande biopsin har många potentiella tillämpningar i kliniken, inklusive screening och tidig upptäckt av cancer, realtidsövervakning av sjukdom, upptäckt av minimal restsjukdom, studier av mekanismer för behandlingsresistens och stratifiering av patienter på terapeutisk nivå1. Tidig upptäckt av återkommande och progression av sjukdomar är ett ouppfyllt kliniskt behov i många tumörtyper och är en nyckelfaktor för att öka överlevnaden och livskvaliteten för cancerpatienter. Rutinmässiga avbildningsmetoder och lösliga tumörmarkörer kan sakna den känslighet och / eller specificitet som krävs för denna uppgift. Således behövs nya prediktiva markörer i kliniken, såsom de som är baserade på cirkulerande fria nukleinsyror.

De typer av prover som används för flytande biopsistudier inkluderar men är inte begränsade till blod-, urin-, saliv- och avföringsprover. Andra tumörspecifika prover kan vara cellsaspirater, cerebrospinalvätska, pleuravätska, cyst- och ascitesvätska, sputum och bukspottkörteljuice2. De tidigare vätskorna kan innehålla olika typer av cancer-härledda material, cirkulerande tumörceller (CTC) eller fragment såsom exosomer och cellfritt cirkulerande tumör-DNA (ctDNA). Nukleinsyror kan vara inkapslade i extracellulära vesiklar (EV) eller släppas ut i kroppsvätskor på grund av celldöd och skada. Cirkulerande fritt DNA (CFDNA) frigörs huvudsakligen i blodomloppet från apoptotiska eller nekrotiska celler och finns hos alla individer, vilket visar ökade nivåer vid inflammatoriska eller onkologiska sjukdomar3. Exosomer är små extracellulära vesiklar (~ 30-150 nm) utsöndras av celler som innehåller nukleinsyror, proteiner och lipider. Dessa vesiklar utgör en del av det intercellulära kommunikationsnätverket och finns vanligtvis i många typer av kroppsvätskor2. Nukleinsyrorna som är inneslutna i elbilar är skyddade från den hårda miljön i kroppsvätskor, vilket ger ett mer robust sätt att studera dessa molekyler i flytande biopsiinställning.

Sammantaget är nivåerna av cirkulerande nukleinsyror i flytande biopsiprover mycket låga, och därför behövs känsliga metoder för detektion, såsom digital PCR eller nästa generations sekvensering (NGS). Preanalytisk hantering av provet är avgörande för att förhindra blodcellslys och frisättning av intakt DNA, vilket orsakar kontaminering av CFDNA med det genomiska DNA. Dessutom måste man vara försiktig vid extraktion av prover för att undvika förekomst av hämmare av enzymbaserade analysmetoder.

Här presenterar vi en standardiserad metod för insamling och lagring av plasma- och serumprover, vilket är ett avgörande första steg för flytande biopsibaserade nedströmsapplikationer, inklusive cirkulerande nukleinsyraanalyser.

Protocol

Tidigare etiskt godkännande erhölls från deltagande centra före utvinning av blodprover. Följande protokoll för serum- och plasmaisolering utfördes i enlighet med de etiska principerna för biomedicinsk forskning. OBS: Tidigare överväganden innan protokollet påbörjas finns här. Förhandsetiskt godkännande krävs för användning av humanprover i biomedicinsk forskning, med motsvarande informerade samtycke. Ett klass II biosäkerhetsskåp krävs för att hantera blodprover. En labb…

Representative Results

Efter centrifugering av blodrören utan antikoagulant uppträder den övre fasen en blekgul och motsvarar serumfraktionen (figur 2). Denna fraktion avlägsnas försiktigt och alikvoteras för efterföljande analys. Hemolys kan vara närvarande i antingen plasma- eller serumfraktionen, och den övre fasen kommer att ha ett rödaktigt utseende, vilket indikerar närvaron och graden av hemolys (Figur 3). Efter…

Discussion

Den flytande biopsin har många potentiella tillämpningar vid olika tidpunkter under hanteringen av cancer. Först vid diagnos för att identifiera tumörmolekylära markörer som skulle föreslå förekomsten av en potentiell tumörskada som kan undersökas ytterligare kliniskt. För det andra, under behandling för realtidsövervakning av sjukdomen, bedömning av behandlingsmolekylärt svar, klonal evolution och tidig upptäckt av sjukdomsåterfall eller behandlingsresistens. Slutligen, efter den kirurgiska behandling…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi vill tacka Biomedical Research Network in Cancer (CIBERONC) för deras stöd och följande projektbidrag: LB CIBERONC PLATFORM: CIBERONC plattform för standardisering och främjande av flytande biopsi. Pi Rodrigo Toledo, (CIBERONC), 2019-2021.

Materials

1.5 mL Eppendorf tubes Eppendorf 0030 120.086 Any standard tubes/equipment can be used
10 mL serological disposable pipettes BIOFIL GSP010010 Any standard tubes/equipment can be used
10 mL Vacutainer K2 EDTA tube Becton Dickinson 367525 These tubes can be used for plasma collection
15 mL polypropylene centrifuge tubes BIOFIL CFT411150 Any standard tubes/equipment can be used
3.5 mL BD Vacutainer tube without anticoagulant Becton Dickinson 368965 Either 8.5 or 3.5 mL tubes can be used for serum collection
4 mL polypropylene cryogenic vial, round bottom, self-standing Corning 430662 Any standard tubes/equipment can be used
4 mL Vacutainer K2 EDTA tube Becton Dickinson 367864 These tubes can be used for plasma collection
4200 TapeStation System Agilent G2991BA Several quantification methods are available with a  specific application for cfDNA
5 mL serological disposable pipettes BIOFIL GSP010005 Any standard tubes/equipment can be used
8.5 mL BD Vacutainer tube without anticoagulant Becton Dickinson 366468 Either 8.5 or 3.5 mL tubes can be used for serum collection
Centrifuge, capable of ~3000 x g with a swing bucket rotor Thermo Fisher Scientific Sorvall ST 16  10688725 Any standard tubes/equipment can be used
Freezer storage boxes for 1–4 mLcryogenic vials Corning 431120 These boxes are needed when using 4 mL vials for storage
p1000 pipette tips CORNING 4809 Any standard tubes/equipment can be used
QIAamp Circulating Nucleic Acid Kit Qiagen 55114 Any commercially available kit that is specific for cfDNA isolation can be used with this blood prcessing protocol.
Streck Cell-Free DNA BCT CE tubes 10 mL Streck 218997 These tubes can be used for plasma collection
Temperature Freezer (-80 °C) ESCO 2180104 Any standard tubes/equipment can be used

Riferimenti

  1. Alix-Panabières, C., Pantel, K. Clinical applications of circulating tumor cells and circulating tumor DNA as liquid biopsy. Cancer Discovery. 6 (5), 479-491 (2016).
  2. Zhou, B., et al. Application of exosomes as liquid biopsy in clinical diagnosis. Signal Transduction and Targeted Therapy. 5 (1), 144 (2020).
  3. Bettegowda, C., et al. Liquid biopsies: Genotyping circulating tumor DNA. Nature Medicine. 4 (6), (2014).
  4. Heitzer, E., et al. Recommendations for a practical implementation of circulating tumor DNA mutation testing in metastatic non-small-cell lung cancer. ESMO Open. 7 (2), 100399 (2022).
  5. Gennari, A., et al. ESMO Clinical Practice Guideline for the diagnosis, staging and treatment of patients with metastatic breast cancer. Annals of Oncology: Official Journal of the European Society for Medical Oncology. 32 (12), 1475-1495 (2021).
  6. Van Buren, T., Arwatz, G., Smits, A. J. A simple method to monitor hemolysis in real time. Scientific Reports. 10 (1), 5101 (2020).
  7. Ignatiadis, M., Sledge, G. W., Jeffrey, S. S. Liquid biopsy enters the clinic – implementation issues and future challenges. Nature Reviews. Clinical Oncology. 18 (5), 297-312 (2021).
  8. Sidstedt, M., et al. Inhibition mechanisms of hemoglobin, immunoglobulin G, and whole blood in digital and real-time PCR. Analytical and Bioanalytical Chemistry. 410 (10), 2569-2583 (2018).
  9. Maass, K. K., et al. From sampling to sequencing: A liquid biopsy pre-analytic workflow to maximize multi-layer genomic information from a single tube. Cancers. 13 (12), 3002 (2021).
  10. Greytak, S. R., et al. Harmonizing cell-free DNA collection and processing practices through evidence-based guidance. Clinical Cancer Research: An Official Journal of the American Association for Cancer Research. 26 (13), 3104-3109 (2020).
  11. Trigg, R. M., Martinson, L. J., Parpart-Li, S., Shaw, J. A. Factors that influence quality and yield of circulating-free DNA: A systematic review of the methodology literature. Heliyon. 4 (7), 00699 (2018).
  12. Boissier, E., et al. The centrifuge brake impacts neither routine coagulation assays nor platelet count in platelet-poor plasma. Clinical Chemistry and Laboratory Medicine. 58 (9), 185-188 (2020).
  13. Johansson, G., et al. Considerations and quality controls when analyzing cell-free tumor DNA. Biomolecular Detection and Quantification. 17, 100078 (2019).
  14. Casas-Arozamena, C., et al. Genomic profiling of uterine aspirates and cfDNA as an integrative liquid biopsy strategy in endometrial cancer. Journal of Clinical Medicine. 9 (2), 585 (2020).
  15. Alcoceba, M., et al. Liquid biopsy: a non-invasive approach for Hodgkin lymphoma genotyping. British Journal of Haematology. 195 (4), 542-551 (2021).
  16. Szpechcinski, A., et al. Cell-free DNA levels in plasma of patients with non-small-cell lung cancer and inflammatory lung disease. British Journal of Cancer. 113 (3), 476-483 (2015).
  17. Earl, J., et al. Somatic mutation profiling in the liquid biopsy and clinical analysis of hereditary and familial pancreatic cancer cases reveals kras negativity and a longer overall survival. Cancers. 13 (7), 1612 (2021).
  18. Lampignano, R., et al. Multicenter evaluation of circulating cell-free DNA extraction and downstream analyses for the development of standardized (pre)analytical work flows. Clinical Chemistry. 66 (1), 149-160 (2020).
  19. Febbo, P. G., et al. Minimum technical data elements for liquid biopsy data submitted to public databases. Clinical Pharmacology and Therapeutics. 107 (4), 730-734 (2020).
  20. De Mattos-Arruda, L., Siravegna, G. How to use liquid biopsies to treat patients with cancer. ESMO Open. 6 (2), 100060 (2021).
check_url/it/64123?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Earl, J., Calabuig-Fariñas, S., Sarasquete, M. E., Muinelo Romay, L., Lopez-Tarruella, S., Bellosillo Paricio, B., Rodríguez, M., Valencia Leoz, K., Dueñas Porto, M., Tarazona, N., Hernandez Losa, J., Toledo, R. A. A Standardized Liquid Biopsy Preanalytical Protocol for Downstream Circulating-Free DNA Applications. J. Vis. Exp. (187), e64123, doi:10.3791/64123 (2022).

View Video