Summary

Kryo-EM-datainnsamling med enkeltpartikler med scenetilt ved bruk av Leginon

Published: July 01, 2022
doi:

Summary

Denne protokollen beskriver et generalisert og lett implementert skjema for skråstilt enkeltpartikkeldatainnsamling i kryo-EM-eksperimenter. En slik prosedyre er spesielt nyttig for å skaffe et EM-kart av høy kvalitet for prøver som lider av fortrinnsorienteringsskjevhet på grunn av overholdelse av luft-vanngrensesnittet.

Abstract

Enkeltpartikkelanalyse (SPA) ved kryo-elektronmikroskopi (kryo-EM) er nå en vanlig teknikk for høyoppløselig strukturbiologi. Strukturbestemmelse ved SPA er avhengig av å oppnå flere forskjellige visninger av et makromolekylært objekt vitrifisert i et tynt lag av is. Ideelt sett ville en samling av jevnt fordelte tilfeldige projeksjonsorienteringer utgjøre alle mulige visninger av objektet, noe som gir opphav til rekonstruksjoner preget av isotrop retningsoppløsning. Men i virkeligheten lider mange prøver av fortrinnsvis orienterte partikler som fester seg til luft-vann-grensesnittet. Dette fører til ujevne vinkelorienteringsfordelinger i datasettet og inhomogen Fourier-rom-prøvetaking i rekonstruksjonen, oversatt til kart preget av anisotrop oppløsning. Vipping av prøvetrinnet gir en generaliserbar løsning for å overvinne oppløsningsanisotropi i kraft av å forbedre ensartetheten av orienteringsfordelinger, og dermed isotropien til Fourier-romprøvetaking. Den nåværende protokollen beskriver en automatisert datainnsamlingsstrategi på skråstilt stadium ved hjelp av Leginon, en programvare for automatisert bildeinnsamling. Prosedyren er enkel å implementere, krever ikke noe ekstra utstyr eller programvare, og er kompatibel med de fleste standard transmisjonselektronmikroskoper (TEM) som brukes til avbildning av biologiske makromolekyler.

Introduction

Fremkomsten av direkte elektrondetektorer i løpet av det siste tiåret 1,2,3 har ansporet en eksponentiell økning i antall høyoppløselige strukturer av makromolekyler og makromolekylære sammenstillinger løst ved bruk av enkeltpartikkelkryo-EM 4,5,6. Nesten alle rensede makromolekylære arter forventes å være egnet til strukturbestemmelse ved bruk av kryo-EM, bortsett fra de minste proteinene ~ 10 kDa i størrelse eller under7. Mengden utgangsmateriale som trengs for gridforberedelse og strukturbestemmelse er minst en størrelsesorden mindre enn andre strukturbestemmelsesteknikker, for eksempel kjernemagnetisk resonansspektroskopi og røntgenkrystallografi 4,5,6.

En hovedutfordring for strukturbestemmelse ved kryo-EM innebærer imidlertid egnet klargjøring av rutenett for avbildning. En omfattende studie som evaluerte ulike prøver ved hjelp av forskjellige vitrifikasjonsstrategier og rutenett antydet at de fleste tilnærminger for vitrifisering av prøver på kryo-EM-rutenett fører til fortrinnsvis overholdelse av makromolekyler til luft-vanngrensesnittet8. Slik etterlevelse kan potensielt forårsake fire suboptimale utfall: (1) den makromolekylære prøven denaturerer fullstendig, i hvilket tilfelle ingen vellykket datainnsamling og behandling er mulig; (2) prøven denaturerer delvis, i så fall kan det være mulig å oppnå strukturell innsikt fra regioner av makromolekylet som ikke er skadet; (3) prøven beholder innfødt struktur, men bare ett sett med partikkelorienteringer i forhold til retningen av elektronstrålen er representert i bildene; (4) prøven beholder naturlig struktur, og noen, men ikke alle mulige partikkelorienteringer i forhold til retningen til elektronstrålen er representert i bildene. For tilfeller (3) og (4) vil skråstilt datainnsamling bidra til å minimere retningsoppløsningsanisotropi som påvirker det rekonstruerte kryo-EM-kartet og gir en generaliserbar løsning for et bredt utvalg av prøver9. Teknisk sett kan vipping også være fordelaktig (2), siden denatureringen antagelig skjer ved luft-vann-grensesnittet og på samme måte begrenser antallet distinkte retninger som er representert i dataene. Graden av orienteringsskjevhet i datasettet kan potensielt endres ved å eksperimentere med løsningstilsetninger, men mangel på bred anvendelighet hindrer disse prøve-og-feile-tilnærmingene. Å vippe prøvetrinnet i en enkelt optimalisert hellingsvinkel er tilstrekkelig til å forbedre fordelingen av orienteringer i kraft av å endre geometrien til avbildningseksperimentet9 (figur 1). På grunn av den geometriske konfigurasjonen av den fortrinnsvis orienterte prøven med hensyn til elektronstrålen, for hver klynge av fortrinnsorienteringer, vipper rutenettet en kegle av belysningsvinkler i forhold til klyngesentroid. Derfor sprer dette utsikten og forbedrer følgelig Fourier-romprøvetaking og isotropien av retningsoppløsning.

Det er i praksis noen ulemper med å vippe scenen. Ved å vippe prøvetrinnet introduseres en fokusgradient over synsfeltet, noe som kan påvirke nøyaktigheten av CTF-estimeringer (contrast transfer function). Skråstilt datainnsamling kan også føre til økt stråleindusert partikkelbevegelse forårsaket av økte ladningseffekter ved avbildning av skråstilte prøver. Grid tilting fører også til en økning i tilsynelatende istykkelse, noe som igjen fører til støyende mikrografer og kan til slutt påvirke oppløsningen av rekonstruksjoner 5,9,10. Det kan være mulig å løse disse problemene ved å bruke avanserte databehandlingsskjemaer som er kort beskrevet i protokoll- og diskusjonsseksjonene. Til slutt kan vipping føre til økt partikkeloverlapping, noe som hindrer den påfølgende bildebehandlingsrørledningen. Selv om dette til en viss grad kan reduseres ved å optimalisere partikkelkonsentrasjonen på nettet, er det likevel en viktig faktor. Her beskrives en protokoll som er enkel å implementere for skråstilt datainnsamling ved hjelp av Leginon-programvarepakken (en automatisert programvare for bildeinnsamling), tilgjengelig åpen tilgang og kompatibel med et bredt spekter av mikroskoper11,12,13,14. Metoden krever minst versjon 3.0 eller nyere, med versjon 3.3 og utover som inneholder dedikerte forbedringer for å muliggjøre skråstilt datainnsamling. Ingen ekstra programvare eller utstyr er nødvendig for denne protokollen. Omfattende instruksjoner om beregningsinfrastruktur og installasjonsveiledninger er gitt andre steder15.

Protocol

1. Forberedelse av prøver Bruk rutenett som inneholder gullfolie og gullgitterstøtte16 (se Materialfortegnelse) fordi skråstilt datainnsamling kan fremheve stråleindusert bevegelse17.MERK: For denne studien ble prøver på rutenett vitrifisert ved hjelp av manuell stupende og blotting teknikk18 i et fuktet (større enn 80%) kjølerom (~ 4 ° C). Unngå å bruke rister som inneholder kobber…

Representative Results

DPS ved 0,3 mg/ml ble brukt til å demonstrere avbildning ved 0°, 30° og 60° helling. Data fra forskjellige hellingsvinkler ble samlet inn på samme rutenett i forskjellige rutenettregioner. CTF-oppløsning som passer for høyere vinkelhellinger har en tendens til å være dårligere, slik tilfellet var når man sammenlignet de tre datasettene i denne studien. Figur 4 viser komparative representative bilder og 2D-klassifiseringsgjennomsnitt. Selv om proteinkonsentrasjonen er uendret over …

Discussion

Foretrukket partikkelorientering forårsaket av prøvens overholdelse av luft-vann-grensesnittet er en av de siste store flaskehalsene for rutinemessig strukturbestemmelse med høy oppløsning ved bruk av kryo-EM SPA 4,5,6. Datainnsamlingsskjemaet som presenteres her gir en enkel å implementere strategi for å forbedre orienteringsfordelingen av partikler i et datasett. Vi gjør oppmerksom på at protokollen ikke krever ekstra …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker Bill Anderson, Charles Bowman og Jean-Christophe Ducom (TSRI) for hjelp med mikroskopi, Leginon installasjoner og dataoverføringsinfrastruktur. Vi takker også Gordon Louie (Salk Institute) og Yong Zi Tan (National University of Singapore) for kritisk lesning av manuskriptet. Vi takker Chris Russo (MRC Laboratory of Molecular Biology, Cambridge) for å gi oss plasmidet for uttrykk for DPS. Dette arbeidet ble støttet av tilskudd fra US National Institutes of Health (U54AI150472, U54 AI170855 og R01AI136680 til DL), National Science Foundation (NSF MCB-2048095 til DL), Hearst Foundations (til DL), og Arthur og Julie Woodrow Chair (til JPN).

Materials

Cryosparc Live v3.1.0+210216 Structura Biotechnology
DPS protein Purification adapted from protocol described in K.Naydenova et al IUCrJ. 2019 Nov 1; 6(Pt 6): 1086–1098.
K2 Summit Direct Electron Detector Gatan
Leginon software suite C Suloway et al Journal of Structural Biology 151 (1): pp. 41-60.
Manual plunging device Homemade guillotine-like device for vitrification of EM grids
Talos Arctica FEI/Thermo Fisher
UltrAufoil R1.2/1.3 300 mesh grids Quantifoil N1-A14nAu30-01

References

  1. Campbell, M. G., et al. Movies of ice-embedded particles enhance resolution in electron cryo-microscopy. Structure. 20 (11), 1823-1828 (2012).
  2. Bai, X. C., Fernandez, I. S., McMullan, G., Scheres, S. H. Ribosome structures to near-atomic resolution from thirty thousand cryo-EM particles. Elife. 2, 00461 (2013).
  3. Li, X. Electron counting and beam-induced motion correction enable near-atomic-resolution single-particle cryo-EM. Nature Methods. 10 (6), 584-590 (2013).
  4. Chua, E. Y. D., et al. cheaper: recent advances in cryo-electron microscopy. Annual Review of Biochemistry. , (2022).
  5. Lyumkis, D. Challenges and opportunities in cryo-EM single-particle analysis. Journal of Biological Chemistry. 294 (13), 5181-5197 (2019).
  6. Wu, M., Lander, G. C. Present and emerging methodologies in Cryo-EM single-particle analysis. Biophysical Journal. 119 (7), 1281-1289 (2020).
  7. Henderson, R. The potential and limitations of neutrons, electrons and X-rays for atomic resolution microscopy of unstained biological molecules. Quarterly Reviews of Biophysics. 28 (2), 171-193 (1995).
  8. Noble, A. J., et al. Routine single particle CryoEM sample and grid characterization by tomography. Elife. 7, 34257 (2018).
  9. Tan, Y. Z., et al. Addressing preferred specimen orientation in single-particle cryo-EM through tilting. Nature Methods. 14 (8), 793-796 (2017).
  10. Punjani, A., Rubinstein, J. L., Fleet, D. J., Brubaker, M. A. cryoSPARC: algorithms for rapid unsupervised cryo-EM structure determination. Nature Methods. 14 (3), 290-296 (2017).
  11. Potter, C. S., et al. Leginon: a system for fully automated acquisition of 1000 electron micrographs a day. Ultramicroscopy. 77 (3-4), 153-161 (1999).
  12. Suloway, C., et al. Automated molecular microscopy: The new Leginon system. Journal of Structural Biology. 151 (1), 41-60 (2005).
  13. Cheng, A., et al. Leginon: New features and applications. Protein Science. 30 (1), 136-150 (2021).
  14. Carragher, B., et al. Leginon: An automated system for acquisition of images from vitreous ice specimens. Journal of Structural Biology. 132 (1), 33-45 (2000).
  15. . NYSBC.org Homepage Available from: https://emg.nysbc.org/redmine/projects/leginon/wiki/Leginon_Homepage (2022)
  16. Russo, C. J., Passmore, L. A. Electron microscopy: Ultrastable gold substrates for electron cryomicroscopy. Science. 346, 1377-1380 (2014).
  17. Russo, C. J., Henderson, R. Charge accumulation in electron cryomicroscopy. Ultramicroscopy. 187, 43-49 (2018).
  18. Nguyen, H. P. M., McGuire, K. L., Cook, B. D., Herzik, M. A. Manual blot-and-plunge freezing of biological specimens for single-particle cryogenic electron microscopy. Journal of Visualized Experiments. (180), e62765 (2022).
  19. Patel, A., Toso, D., Litvak, A., Nogales, E. Efficient graphene oxide coating improves cryo-EM sample preparation and data collection from tilted grids. bioRxiv. , (2021).
  20. Naydenova, K., Peet Mathew, J., Russo Christopher J, J. Multifunctional graphene supports for electron cryomicroscopy. Proceedings of the National Academy of Sciences. 116 (24), 11718-11724 (2019).
  21. Naydenova, K., et al. CryoEM at 100 keV: a demonstration and prospects. IUCrJ. 6 (6), 1086-1098 (2019).
  22. Herzik, M. A., Gonen, T., Nannenga, B. L. . cryoEM: Methods and Protocols. , 125-144 (2021).
  23. Cash, J. N., Kearns, S., Li, Y., Cianfrocco, M. A. High-resolution cryo-EM using beam-image shift at 200 keV. IUCrJ. 7 (6), 1179-1187 (2020).
  24. Peck, J. V., Fay, J. F., Strauss, J. D. High-speed high-resolution data collection on a 200 keV cryo-TEM. IUCrJ. 9 (2), 243-252 (2022).
  25. Bouvette, J., et al. Beam image-shift accelerated data acquisition for near-atomic resolution single-particle cryo-electron tomography. Nature Communications. 12 (1), 1957 (1957).
  26. Cheng, A., et al. High resolution single particle cryo-electron microscopy using beam-image shift. Journal of Structural Biology. 204 (2), 270-275 (2018).
  27. Tegunov, D., Cramer, P. Real-time cryo-electron microscopy data preprocessing with Warp. Nature Methods. 16 (11), 1146-1152 (2019).
  28. . Structura Biotechnology Inc Available from: https://cryosparc.com/live (2022)
  29. DiIorio, M. C., Kulczyk, A. W. A robust single-particle cryo-electron microscopy (cryo-EM) processing workflow with cryoSPARC, RELION, and Scipion. Journal of Visualized Experiments. (179), e63387 (2022).
  30. Baldwin, P. R., Lyumkis, D. Non-uniformity of projection distributions attenuates resolution in Cryo-EM. Progress in Biophysics and Molecular Biology. 150, 160-183 (2020).
  31. Baldwin, P. R., Lyumkis, D. Tools for visualizing and analyzing Fourier space sampling in Cryo-EM. Progress in Biophysics and Molecular Biology. 160, 53-65 (2021).
  32. Aiyer, S., Zhang, C., Baldwin, P. R., Lyumkis, D., Gonen, T., Nannenga, B. L. . cryoEM: Methods and Protocols. , 161-187 (2021).
  33. Glaeser, R. M., et al. Defocus-dependent Thon-ring fading). Ultramicroscopy. 222, 113213 (2021).
check_url/64136?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Aiyer, S., Strutzenberg, T. S., Bowman, M. E., Noel, J. P., Lyumkis, D. Single-Particle Cryo-EM Data Collection with Stage Tilt using Leginon. J. Vis. Exp. (185), e64136, doi:10.3791/64136 (2022).

View Video