Summary

Studie van de functies en activiteiten van Neuronale K-Cl Co-Transporter KCC2 met behulp van Western Blotting

Published: December 09, 2022
doi:

Summary

Het huidige protocol benadrukt de toepassing van western blotting-techniek om de functies en activiteiten van neuronale K-Cl co-transporter KCC2 te bestuderen. Het protocol beschrijft het onderzoek naar KCC2-fosforylering op kinaseregelplaatsen Thr906/1007 via western blotting. Ook aanvullende methoden om KCC2-activiteit te bevestigen worden kort gemarkeerd in deze tekst.

Abstract

Kaliumchloride cotransporters 2 (KCC2) is een lid van de opgeloste dragerfamilie 12 (SLC12) van kation-chloride-cotransporters (CCC’s), uitsluitend aangetroffen in het neuron en is essentieel voor de goede werking van Cl-homeostase en bijgevolg functionele GABAerge remming. Falen in de juiste regulatie van KCC2 is schadelijk en is in verband gebracht met de prevalentie van verschillende neurologische ziekten, waaronder epilepsie. Er is aanzienlijke vooruitgang geboekt met betrekking tot het begrijpen van de mechanismen die betrokken zijn bij de regulering van KCC2, geaccrediteerd voor de ontwikkeling van technieken die onderzoekers in staat stellen de functies en activiteiten ervan te bestuderen; hetzij via direct (beoordelen van kinase regulerende sites fosforylering) of indirecte (observeren en monitoren van GABA-activiteit) onderzoeken. Hier benadrukt het protocol hoe KCC2-fosforylering op kinase-regulerende locaties – Thr906 en Thr1007 – kan worden onderzocht met behulp van western blotting-techniek. Er zijn andere klassieke methoden die worden gebruikt om KCC2-activiteit direct te meten, zoals rubidiumion en thalliumion opname assay. Verdere technieken zoals patch-clamp-elektrofysiologie worden gebruikt om GABA-activiteit te meten; dus indirect reflecterend op geactiveerd en/of geïnactiveerd KCC2 zoals gebaseerd op de beoordeling van intracellulaire chloride-ionhomeostase. Een paar van deze aanvullende technieken zullen in dit manuscript kort worden besproken.

Introduction

Kaliumchloride cotransporters 2 (KCC2) is een lid van de opgeloste dragerfamilie 12 (SLC12) van kationchloride-cotransporters (CCC’s), uitsluitend aangetroffen in het neuron en is essentieel voor de goede werking van Cl-homeostase en bijgevolg functionele GABAerge remming 1,2,3,4. Het behoud van een lage intraneuronale Cl-concentratie ([Cl]i) bij 4-6 mM door KCC2 vergemakkelijkt γ-aminoboterzuur (GABA)/glycine hyperpolarisatie en synaptische remming in de hersenen en het ruggenmerg5. Falen in de juiste regulatie van KCC2 is in verband gebracht met de prevalentie van verschillende neurologische ziekten, waaronder epilepsie4. Bovendien zijn verminderde KCC2-gemedieerde Cl extrusie en verminderde hyperpolariserende GABAA en/of glycine receptor-gemedieerde stromen betrokken bij epilepsie, neuropathische pijn en spasticiteit 6,7. Neuronale KCC2 wordt negatief gemoduleerd via fosforylering van belangrijke regulerende residuen binnen zijn C-terminale intracellulaire domein door het met-geen-lysine (WNK)-STE20/SPS1-gerelateerde proline/alanine-rijke (SPAK)/oxidatieve stress-responsieve (OSR) kinase signaleringscomplex1, wat het behoud van gedepolariseerde GABA-activiteit in onrijpe neuronenvergemakkelijkt 2,8,9 . De WNK-SPAK/OSR1 fosforyleert threonineresiduen 906 en 1007 (Thr906/Thr1007) en downreguleert vervolgens de mRNA-genexpressie van KCC2, wat leidt tot een daaruit voortvloeiende verslechtering van de fysiologische functie 8,10. Belangrijker is echter dat het al een feit is dat van het WNK-SPAK/OSR1-kinasecomplex bekend is dat het KCC2-expressie 1,2,4,11,12 fosforylaat en remt, en dat de remming van de kinasecomplexsignaleringsroutes naar fosforylaat Thr906/Thr1007 in verband is gebracht met de verhoogde expressie van het KCC2 mRNA-gen 13,14,15 . Het is belangrijk op te merken dat de regulatie van neuronale KCC2 en Na+-K+-2Cl cotransporters 1 (NKCC1) expressie via eiwitfosforylering gelijktijdig en in omgekeerde patronen werkt 1,4,16.

Er is consistente en aanzienlijke vooruitgang geboekt met betrekking tot het begrip van mechanismen die betrokken zijn bij de regulering van KCC2, geaccrediteerd voor de ontwikkeling van technieken die onderzoekers in staat stellen de functies en activiteiten ervan te bestuderen; hetzij via direct (beoordelen van kinase regulerende sites fosforylering) of indirecte (observeren en monitoren van GABA-activiteit) onderzoeken. Het hier gepresenteerde protocol benadrukt de toepassing van western blotting-technieken om de functies en activiteiten van neuronale K +-Cl co-transporter KCC2 te bestuderen door de fosforylering van de cotransporter op kinase-regelgevende locaties Thr906/1007 te onderzoeken.

Western blot is een methode die wordt gebruikt om specifieke eiwitten van belang te detecteren uit een monster van weefsel of cel. Deze methode scheidt de eiwitten eerst op grootte door middel van elektroforese. De eiwitten worden vervolgens elektroforetisch overgebracht naar een vaste ondersteuning (meestal een membraan) voordat het doeleiwit wordt gemarkeerd met behulp van een specifiek antilichaam. De antilichamen worden geconjugeerd aan verschillende tags of fluorofoor-geconjugeerde antilichamen die worden gedetecteerd met behulp van colorimetrische, chemiluminescentie of fluorescentiemethoden. Hierdoor kan een specifiek doeleiwit worden gedetecteerd uit een mengsel van eiwitten. Deze techniek is gebruikt om fosfospecifieke locaties van KCCCs1 te karakteriseren en is gebruikt om kinaseremmers te identificeren die KCC3 Thr991/Thr1048 fosforyleringremmen 17. Door dit protocol te volgen, kan men specifiek totaal en gefosforyleerd KCC2 detecteren uit cel/weefsellysaten. In principe is de detectie van eiwit-geconjugeerde antilichamen door deze techniek zeer instrumenteel omdat het helpt om het begrip van samenwerkingsactiviteiten op de fosfo-locaties van KCC2 te verbeteren, wat licht werpt op de moleculaire mechanismen die betrokken zijn bij hun fysiologische regulaties. De kwantitatieve analyse van de totale eiwitexpressie is representatief voor de functie en activiteit van KCC2. Er zijn andere klassieke methoden die worden gebruikt om KCC2-activiteit direct te meten, zoals rubidiumion en thalliumion opname assay. Verdere technieken zoals patch-clamp-elektrofysiologie worden gebruikt om GABA-activiteit te meten; dus indirect reflecterend op geactiveerd en/of geïnactiveerd KCC2 zoals gebaseerd op de beoordeling van intracellulaire chloride-ionhomeostase.

Protocol

OPMERKING: Het protocol beschrijft de western blotting-methode om specifieke eiwitten van belang te detecteren. 1. Celkweek en transfectie Verwarm alle reagentia in het kralenbad (37 °C) vóór de celkweekprocedure. Bereid kweekmedium, Dulbecco’s Modified Eagle Medium (DMEM), aangevuld met 10% foetaal runderserum, 1% elk van 2mM L-glutamine, 100x niet-essentieel aminozuur, 100 mM natriumpyruvaat en 100 eenheden / ml penicilline-streptomycine. Ontdooi stabi…

Representative Results

Hier onderzocht het representatieve resultaat in figuur 1 de impact van staurosporine en NEM op WNK-SPAK/OSR1 gemedieerde fosforylering van KCC2 en NKCC1 in HEK293-cellijnen die KCC2b (HEKrnKCC2b)18 stabiel tot expressie brengen met behulp van de western blotting-techniek. Uitgebreide details over de representatieve resultaten worden besproken in Zhang et al.15. Net als NEM is staurosporine een brede kinaseremmer die de KCC2…

Discussion

Veel methoden zijn gebruikt om de activiteiten van SLC12 van CCC’s te meten die tot expressie komen in de neuronen, waaronder KCC2. Veel van deze technieken hebben bewezen de wetenschappelijke kennis te vergroten over de analyse van de functionele relevantie van deze transporters en hun structuur-functiepatronen in verschillende ziektegerelateerde mutaties. Kritisch zijn er voordelen en kanttekeningen bij de verschillende methoden21. Het hierboven uitgelegde protocol schetste echter hoe KCC2-fosfo…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk werd ondersteund door The Royal Society UK (Grant no. IEC\NSFC\201094) en een Commonwealth Ph.D. Scholarship.

Materials

40% acrylamide Sigma-Aldrich A2917 Used to make seperating and stacking gel for SDS-PAGE 
Ammonium Per Sulfate Sigma-Aldrich 248614 Used to make seperating and stacking gel for SDS-PAGE 
anti pSPAK Dundee University S670B Used as primary antibody for western blotting
anti-KCC2 Dundee University S700C Used as primary antibody for western blotting
anti-KCC2 pSer940 Thermo Fisher Scientific PA5-95678 Used as primary antibody for western blotting
anti-KCC2 pThr1007 Dundee University S961C Used as primary antibody for western blotting
anti-KCC2 pThr906 Dundee University S959C Used as primary antibody for western blotting
anti-mouse Cell Signalling technology 66002 Used as secondary antibody for western blotting
anti-NKCC1 Dundee University S841B Used as primary antibody for western blotting
anti-NKCC1 pThr203/207/212 Dundee University S763B Used as primary antibody for western blotting
anti-rabbit Cell Signalling technology C29F4 Used as secondary antibody for western blotting
anti-sheep abcam ab6900 Used as secondary antibody for western blotting
anti-SPAK Dundee University S669D Used as primary antibody for western blotting
anti-β-Tubulin III Sigma-Aldrich T8578 Used as primary antibody for western blotting
Benzamine Merck UK 135828 Used as component of lysis buffer
Beta-mercaptoethanol Sigma-Aldrich M3148 Used as component of loading buffer and lysis buffer
Bradford Coomasie Thermo Scientific 1856209 Used for lysate protein quantification
Casting apparatus Atto  WSE-1165W Used to run SDS-page electrophoresis
Centrifuge Eppendorf 5804 Used in lysate preparation
Centrifuge VWR MicroStar 17R Used for spinning samples
Dimethyl sulfoxide (DMSO) Sigma-Aldrich D2650-100ML Used for cell culture experiment
Dried Skimmed Milk Marvel N/A Used to make blocking buffer
Dulbecco's Modified Eagle's Medium – high glucose Sigma-Aldrich D6429 Used for cell culture
ECL reagent Perkin Elmer ORTT755/2655 Used to develop image for western blotting
EDTA Fisher Scientific D/0700/53 Used as component of lysis buffer
EGTA Sigma-Aldrich e4378 Used as component of lysis buffer
Electrophoresis Power Supply BioRad PowerPAC HC To supply power to run SDS-page electrophoresis
Ethanol ThermoFisher E/0650DF/17 Used for preparing sterilized equipments and environment
Fetal Bovine Serum -  heat inactivated Merck Life Sciences UK F9665 Used for cell culture
Fumehood Walker A7277 Used for cell culture
Gel Blotting – Whatman GE Healthcare  10426981 Used in western blotting to make transfer sandwich
Glycine Sigma-Aldrich 15527 Used to make buffers
GraphPad Prism Software GraphPad Software, Inc., USA Version 6.0 Used for plotting graphs and analysing data for  western blotting
HCl Acros Organics 10647282 Used to make seperating and stacking gel for SDS-PAGE 
Heating block Grant QBT1 Used to heat WB loading samples
HEK293 cells Merck UK 12022001-1VL Cell line for culture experiment
ImageJ Software Wayne Rasband and Contributors; NIH, USA  ImageJ 1.53e Used to measure band intensities from western blotting images
Imaging system BioRad ChemiDoc MP Used to take western blotting images
Incubator LEEC LEEC precision 190D Used for cell culture
Isopropanol Honeywell 24137 Used in casting gel for electrophoresis
L-glutamine solution Sigma-Aldrich G7513 Used for cell culture
Lithium dodecyl sulfate (LDS) Novex NP0008 Used as loading buffer for western blotting
MEM Non-essential amino acid  Merck Life Sciences UK M7145 Used for cell culture
Microcentrifuge Eppendorf 5418 Used for preparing lysates for WB
Microplate reader BioRad iMark Used for lysate protein concentration readout
Microsoft Powerpoint Microsoft, USA PowerPoint2016 Used to edit western blotting images
Molecular Weight Marker BioRad 1610373 Used for western blotting
N-ethylmaleimide Thermo Fisher Scientific 23030 Used for cell culture experiment
Nitrocellulose membrane Fisher Scientific 45004091 Used for western blotting
Penicillin-Streptomycin Gibco 15140122 Used for cell culture
pH Meter Mettler Toledo Seven compact s210 Used to monitor pH of buffer solutions
Phenylmethylsulfonylfluoride (PMSF) Sigma-Aldrich P7626 Used as component of lysis buffer
Phosphate Buffer Saline Sigma-Aldrich D8537 Used for cell culture
PKCδ pThr505 Cell Signalling technology 9374 Used as primary antibody for western blotting
Sepharose Protein G Generon PG50-00-0002 Used for immunoprecipitation
Sodium chloride Sigma-Aldrich S7653 Used as component of wash buffer
Sodium Chloride Sigma-Aldrich S7653 Used to prepare TBS-T buffer
Sodium Dodecyl Sulfate Sigma-Aldrich L5750 Used to make seperating and stacking gel for SDS-PAGE 
sodium orthovanadate Sigma-Aldrich S6508 Used as component of lysis buffer
Sodium Pyruvate Sigma-Aldrich S8636 Used for cell culture
sodium-β-glycerophosphate Merck UK G9422 Used as component of lysis buffer
Staurosporine (from Streptomyces sp.) Scientific Laboratory Supplies, UK S4400-1MG Used for cell culture experiment
Sucrose Scientifc Laboratory Supplies S0389 Used as component of lysis buffer
TEMED Sigma-Aldrich T7024 Used to make seperating and stacking gel for SDS-PAGE 
Transfer Chamber BioRad 1658005EDU Used in western blotting to transfer protein on membrane
Tris Sigma-Aldrich T6066 Used to make seperating and stacking gel for SDS-PAGE 
Triton-X100 Sigma-Aldrich T8787 Used as component of lysis buffer
Trypsin-EDTA Solution Merck Life Sciences UK T4049 Used for cell culture
Tween-20 Sigma-Aldrich P3179 Used as make TBS-T buffer
Vacuum pump Charles Austen Dymax 5 Used for cell culture
Vortex Scientific Industries K-550-GE Used in sample preparation
Vortex mixer Scientific Industries Ltd Vortex-Genie  K-550-GE Used of mixing resolved sample
Water bath Grant Instruments Ltd. (JB Academy) JBA5 Used to incubate solutions

Riferimenti

  1. de Los Heros, P., et al. The WNK-regulated SPAK/OSR1 kinases directly phosphorylate and inhibit the K+-Cl- co-transporters. Biochemical Journal. 458 (3), 559-573 (2014).
  2. Heubl, M., et al. GABAA receptor dependent synaptic inhibition rapidly tunes KCC2 activity via the Cl(-)-sensitive WNK1 kinase. Nature Communications. 8 (-), 1776 (2017).
  3. Schulte, J. T., Wierenga, C. J., Bruining, H. Chloride transporters and GABA polarity in developmental, neurological and psychiatric conditions. Neuroscience & Biobehavioral Reviews. 90, 260-271 (2018).
  4. Shekarabi, M., et al. WNK Kinase Signaling in Ion Homeostasis and Human Disease. Cell Metabolism. 25 (2), 285-299 (2017).
  5. Rivera, C., et al. The K+/Cl- co-transporter KCC2 renders GABA hyperpolarizing during neuronal maturation. Nature. 397 (6716), 251-255 (1999).
  6. Kahle, K. T., et al. Modulation of neuronal activity by phosphorylation of the K-Cl cotransporter KCC2. Trends in Neuroscience. 36 (12), 726-737 (2013).
  7. Andrews, K., Josiah, S. S., Zhang, J. The Therapeutic Potential of Neuronal K-Cl Co-Transporter KCC2 in Huntington’s Disease and Its Comorbidities. International Journal of Molecular Sciences. 21 (23), 9142 (2020).
  8. Friedel, P., et al. WNK1-regulated inhibitory phosphorylation of the KCC2 cotransporter maintains the depolarizing action of GABA in immature neurons. Science Signaling. 8 (383), 65 (2015).
  9. Watanabe, M., et al. Developmentally regulated KCC2 phosphorylation is essential for dynamic GABA-mediated inhibition and survival. Science Signaling. 12 (603), (2019).
  10. Rinehart, J., et al. Sites of regulated phosphorylation that control K-Cl cotransporter activity. Cell. 138 (3), 525-536 (2009).
  11. Lu, D. C. -. Y., et al. The role of WNK in modulation of KCl cotransport activity in red cells from normal individuals and patients with sickle cell anaemia. Pflügers Archiv-European Journal of Physiology. 471 (11-12), 1539-1549 (2019).
  12. Huang, H., et al. The WNK-SPAK/OSR1 Kinases and the Cation-Chloride Cotransporters as Therapeutic Targets for Neurological Diseases. Aging and Disease. 10 (3), 626-636 (2019).
  13. AlAmri, M. A., Kadri, H., Alderwick, L. J., Jeeves, M., Mehellou, Y. The Photosensitising Clinical Agent Verteporfin Is an Inhibitor of SPAK and OSR1 Kinases. Chembiochem. 19 (19), 2072-2080 (2018).
  14. Zhang, J., et al. Modulation of brain cation-Cl(-) cotransport via the SPAK kinase inhibitor ZT-1a. Nature Communications. 11 (1), 78 (2020).
  15. Zhang, J., et al. Staurosporine and NEM mainly impair WNK-SPAK/OSR1 mediated phosphorylation of KCC2 and NKCC1. PLoS One. 15 (5), 0232967 (2020).
  16. Alessi, D. R., et al. The WNK-SPAK/OSR1 pathway: master regulator of cation-chloride cotransporters. Science Signaling. 7 (334), 3 (2014).
  17. Zhang, J., et al. Functional kinomics establishes a critical node of volume-sensitive cation-Cl(-) cotransporter regulation in the mammalian brain. Scientific Reports. 6, 35986 (2016).
  18. Hartmann, A. M., et al. Opposite effect of membrane raft perturbation on transport activity of KCC2 and NKCC1. Journal of Neurochemistry. 111 (2), 321-331 (2009).
  19. Pisella, L. I., et al. Impaired regulation of KCC2 phosphorylation leads to neuronal network dysfunction and neurodevelopmental pathology. Science Signaling. 12 (603), (2019).
  20. Blaesse, P., et al. Oligomerization of KCC2 correlates with development of inhibitory neurotransmission. The Journal of Neuroscience. 26 (41), 10407-10419 (2006).
  21. Medina, I., Pisella, L. I. . Neuronal Chloride Transporters in Health and Disease. , 21-41 (2020).
  22. Thomas, P., Smart, T. G. HEK293 cell line: a vehicle for the expression of recombinant proteins. Journal of Pharmacological and Toxicological Methods. 51 (3), 187-200 (2005).
  23. Friedel, P., et al. A Novel View on the Role of Intracellular Tails in Surface Delivery of the Potassium-Chloride Cotransporter KCC2. eNeuro. 4 (4), (2017).
  24. Lee, Y. -. C., et al. Impact of detergents on membrane protein complex isolation. Journal of Proteome Research. 17 (1), 348-358 (2018).
  25. Vallée, B., Doudeau, M., Godin, F., Bénédetti, H. Characterization at the Molecular Level using Robust Biochemical Approaches of a New Kinase Protein. JoVE (Journal of Visualized Experiments). (148), e59820 (2019).
  26. Johansen, K., Svensson, L. . Molecular Diagnosis of Infectious Diseases. , 15-28 (1998).
  27. Mahmood, T., Yang, P. -. C. Western blot: technique, theory, and trouble shooting. North American Journal of Medical Sciences. 4 (9), 429 (2012).
  28. Klein, J. D., O’Neill, W. C. Volume-sensitive myosin phosphorylation in vascular endothelial cells: correlation with Na-K-2Cl cotransport. American Journal of Physiology-Cell Physiology. 269 (6), 1524-1531 (1995).
  29. Hannemann, A., Flatman, P. W. Phosphorylation and transport in the Na-K-2Cl cotransporters, NKCC1 and NKCC2A, compared in HEK-293 cells. PLoS One. 6 (3), 17992 (2011).
  30. Liu, J., Ma, X., Cooper, G. F., Lu, X. Explicit representation of protein activity states significantly improves causal discovery of protein phosphorylation networks. BMC Bioinformatics. 21 (13), 1-17 (2020).
  31. Terstappen, G. C. Nonradioactive rubidium ion efflux assay and its applications in drug discovery and development. Assay and Drug Development Technologies. 2 (5), 553-559 (2004).
  32. Carmosino, M., Rizzo, F., Torretta, S., Procino, G., Svelto, M. High-throughput fluorescent-based NKCC functional assay in adherent epithelial cells. BMC Cell Biology. 14 (1), 1-9 (2013).
  33. Adragna, N. C., et al. Regulated phosphorylation of the K-Cl cotransporter KCC3 is a molecular switch of intracellular potassium content and cell volume homeostasis. Frontiers in Cellular Neuroscience. 9, 255 (2015).
  34. Zhang, D., Gopalakrishnan, S. M., Freiberg, G., Surowy, C. S. A thallium transport FLIPR-based assay for the identification of KCC2-positive modulators. Journal of Biomolecular Screening. 15 (2), 177-184 (2010).
  35. Yu, H. B., Li, M., Wang, W. P., Wang, X. L. High throughput screening technologies for ion channels. Acta Pharmacologica Sinica. 37 (1), 34-43 (2016).
  36. Hill, C. L., Stephens, G. J. An Introduction to Patch Clamp Recording. Patch Clamp Electrophysiology. , 1-19 (2021).
  37. Conway, L. C., et al. N-Ethylmaleimide increases KCC2 cotransporter activity by modulating transporter phosphorylation. Journal of Biological Chemistry. 292 (52), 21253-21263 (2017).
  38. Heigele, S., Sultan, S., Toni, N., Bischofberger, J. Bidirectional GABAergic control of action potential firing in newborn hippocampal granule cells. Nature Neuroscience. 19 (2), 263-270 (2016).
  39. Moore, Y. E., Deeb, T. Z., Chadchankar, H., Brandon, N. J., Moss, S. J. Potentiating KCC2 activity is sufficient to limit the onset and severity of seizures. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 115 (40), 10166-10171 (2018).
  40. Kim, H. R., Rajagopal, L., Meltzer, H. Y., Martina, M. Depolarizing GABAA current in the prefrontal cortex is linked with cognitive impairment in a mouse model relevant for schizophrenia. Science Advances. 7 (14), 5032 (2021).
  41. Yelhekar, T. D., Druzin, M., Karlsson, U., Blomqvist, E., Johansson, S. How to properly measure a current-voltage relation?-interpolation vs. ramp methods applied to studies of GABAA receptors. Frontiers in Cellular Neuroscience. 10, 10 (2016).
  42. Ishibashi, H., Moorhouse, A. J., Nabekura, J. Perforated whole-cell patch-clamp technique: a user’s guide. Patch Clamp Techniques. , 71-83 (2012).
  43. Ebihara, S., Shirato, K., Harata, N., Akaike, N. Gramicidin-perforated patch recording: GABA response in mammalian neurones with intact intracellular chloride. The Journal of Physiology. 484 (1), 77-86 (1995).
  44. Kyrozis, A., Reichling, D. B. Perforated-patch recording with gramicidin avoids artifactual changes in intracellular chloride concentration. Journal of Neuroscience Methods. 57 (1), 27-35 (1995).
  45. Lamsa, K., Palva, J. M., Ruusuvuori, E., Kaila, K., Taira, T. Synaptic GABAA activation inhibits AMPA-kainate receptor-mediated bursting in the newborn (P0-P2) rat hippocampus. Journal of Neurophysiology. 83 (1), 359-366 (2000).
check_url/it/64179?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Josiah, S. S., Meor Azlan, N. F., Oguro-Ando, A., Zhang, J. Study of the Functions and Activities of Neuronal K-Cl Co-Transporter KCC2 Using Western Blotting. J. Vis. Exp. (190), e64179, doi:10.3791/64179 (2022).

View Video