Summary

Studie av funksjonene og aktivitetene til Neuronal K-Cl Co-Transporter KCC2 ved bruk av Western Blotting

Published: December 09, 2022
doi:

Summary

Denne protokollen fremhever anvendelsen av vestlig blottingteknikk for å studere funksjonene og aktivitetene til neuronal K-Cl co-transporter KCC2. Protokollen beskriver undersøkelsen av KCC2 fosforylering på kinase reguleringssteder Thr906/1007 via western blotting. Også flere metoder for å bekrefte KCC2-aktivitet er kort fremhevet i denne teksten.

Abstract

Kaliumklorid-kotransportører 2 (KCC2) er medlem av løsemiddelbærerfamilien 12 (SLC12) av kationklorid-kotransportører (CCC), som utelukkende finnes i nevronet og er avgjørende for riktig funksjon av Cl-homeostase og følgelig funksjonell GABAergisk inhibering. Svikt i riktig regulering av KCC2 er skadelig og har vært assosiert med forekomsten av flere nevrologiske sykdommer, inkludert epilepsi. Det har vært betydelig fremgang med hensyn til å forstå mekanismene som er involvert i reguleringen av KCC2, akkreditert til utvikling av teknikker som gjør det mulig for forskere å studere dets funksjoner og aktiviteter; enten via direkte (vurdering av kinasereguleringssteder fosforylering) eller indirekte (observasjon og overvåking av GABA-aktivitet) undersøkelser. Her fremhever protokollen hvordan man undersøker KCC2-fosforylering på kinasereguleringssteder – Thr906 og Thr1007 – ved hjelp av vestlig blottingteknikk. Det finnes andre klassiske metoder som brukes til å måle KCC2-aktivitet direkte, for eksempel rubidiumion og thalliumionopptaksanalyse. Ytterligere teknikker som patch-klemme-elektrofysiologi brukes til å måle GABA-aktivitet; derfor indirekte reflekterer aktivert og/eller inaktivert KCC2 som informert av vurderingen av intracellulær kloridionhomeostase. Noen av disse tilleggsteknikkene vil bli kort omtalt i dette manuskriptet.

Introduction

Kaliumklorid-kotransportører 2 (KCC2) er medlem av løsemiddelbærerfamilien 12 (SLC12) av kationklorid-kotransportører (CCC), som utelukkende finnes i nevronet og er avgjørende for riktig funksjon av Cl-homeostase og følgelig funksjonell GABAergisk inhibering 1,2,3,4. Opprettholdelsen av lav intranevronal Cl-konsentrasjon ([Cl-]i) ved 4-6 mM av KCC2 muliggjør γ-aminosmørsyre (GABA)/glycin hyperpolarisering og synaptisk hemming i hjernen og ryggmargen5. Svikt i riktig regulering av KCC2 har vært assosiert med forekomsten av flere nevrologiske sykdommer, inkludert epilepsi4. Videre har redusert KCC2-mediert Cl-ekstrudering og nedsatt hyperpolariserende GABAA og / eller glycinreseptormediert strøm vært involvert i epilepsi, nevropatisk smerte og spastisitet 6,7. Neuronal KCC2 er negativt modulert via fosforylering av viktige regulatoriske rester innenfor sitt C-terminale intracellulære domene av med-no-lysin (WNK)-STE20/SPS1-relatert prolin/alaninrikt (SPAK)/Oksidativt stressresponsivt (OSR) kinasesignalkompleks1, som letter opprettholdelsen av depolarisert GABA-aktivitet i umodne nevroner 2,8,9 . WNK-SPAK/OSR1 fosforylerer treoninrester 906 og 1007 (Thr906/Thr1007) og nedregulerer deretter mRNA-genuttrykket til KCC2, noe som fører til en påfølgende forverring av dens fysiologiske funksjon 8,10. Enda viktigere er det imidlertid allerede et faktum at WNK-SPAK/OSR1-kinasekomplekset er kjent for å fosforylere og hemme KCC2-uttrykk 1,2,4,11,12, og at inhiberingen av kinasekompleksets signalveier til fosforylat Thr906/Thr1007 har vært knyttet til det økte uttrykket av KCC2 mRNA-genet13,14,15 . Det er viktig å merke seg at reguleringen av nevronal KCC2 og Na+-K+-2Cl kotransportører 1 (NKCC1) ekspresjon via proteinfosforylering virker samtidig og i omvendte mønstre 1,4,16.

Det har vært konsekvent og betydelig fremgang med hensyn til forståelsen av mekanismer involvert i reguleringen av KCC2, akkreditert til utvikling av teknikker som gjør det mulig for forskere å studere sine funksjoner og aktiviteter; enten via direkte (vurdering av kinasereguleringssteder fosforylering) eller indirekte (observasjon og overvåking av GABA-aktivitet) undersøkelser. Protokollen som presenteres her fremhever anvendelsen av vestlige blottingteknikker for å studere funksjonene og aktivitetene til neuronal K + -Cl co-transporter KCC2 ved å undersøke fosforyleringen av kotransportøren på kinasereguleringssteder Thr906/1007.

Western blot er en metode som brukes til å oppdage spesifikke proteiner av interesse fra en prøve av vev eller celle. Denne metoden separerer først proteinene etter størrelse gjennom elektroforese. Proteinene overføres deretter elektroforetisk til en solid støtte (vanligvis en membran) før målproteinet merkes ved hjelp av et spesifikt antistoff. Antistoffene er konjugert til forskjellige koder eller fluoroforkonjugerte antistoffer som oppdages ved hjelp av enten kolorimetriske, kjemiluminescens- eller fluorescensmetoder. Dette gjør det mulig å oppdage et bestemt målprotein fra en blanding av proteiner. Denne teknikken har blitt brukt til å karakterisere fosfospesifikke steder av KCC1 og har blitt brukt til å identifisere kinasehemmere som hemmer KCC3 Thr991 / Thr1048 fosforylering17. Ved å følge denne protokollen kan man spesifikt oppdage total og fosforylert KCC2 fra celle/vevslysater. I prinsippet er påvisning av proteinkonjugerte antistoffer ved hjelp av denne teknikken svært instrumentell, da det bidrar til å forbedre forståelsen av samarbeidsaktiviteter på fosfo-stedene til KCC2, som kaster lys over de molekylære mekanismene som er involvert i deres fysiologiske forskrifter. Den kvantitative analysen av det totale proteinuttrykket er representativt for funksjonen og aktiviteten til KCC2. Det finnes andre klassiske metoder som brukes til å måle KCC2-aktivitet direkte, for eksempel rubidiumion og thalliumionopptaksanalyse. Ytterligere teknikker som patch-klemme-elektrofysiologi brukes til å måle GABA-aktivitet; derfor indirekte reflekterer aktivert og/eller inaktivert KCC2 som informert av vurderingen av intracellulær kloridionhomeostase.

Protocol

MERK: Protokollen beskriver den vestlige blottingmetoden for å oppdage spesifikke proteiner av interesse. 1. Cellekultur og transfeksjon Varm alle reagensene i perlebadet (37 °C) før cellekulturprosedyren. Forbered kulturmedium, Dulbeccos Modified Eagle Medium (DMEM), supplert med 10% føtalt bovint serum, 1% hver av 2mM L-glutamin, 100x ikke-essensiell aminosyre, 100 mM natriumpyruvat og 100 enheter / ml penicillin-streptomycin. Tin stabilt transfisert …

Representative Results

Her undersøkte det representative resultatet presentert i figur 1 virkningen av staurosporin og NEM på WNK-SPAK/OSR1-mediert fosforylering av KCC2 og NKCC1 i HEK293-cellelinjer som stabilt uttrykker KCC2b (HEKrnKCC2b)18 ved hjelp av western blotting-teknikken. Omfattende detaljer om de representative resultatene er omtalt i Zhang et al.15. I likhet med NEM er staurosporin en bred kinasehemmer som kan øke KCC2-transportakt…

Discussion

Mange metoder har blitt brukt til å måle aktivitetene til SLC12 av CCC som uttrykkes i nevronene, inkludert KCC2. Mange av disse teknikkene har vist seg å øke vitenskapelig kunnskap om analysen av den funksjonelle relevansen til disse transportørene og deres strukturfunksjonsmønstre i forskjellige sykdomsrelaterte mutasjoner. Kritisk er det fordeler og forbehold ved de ulike metodene21. Protokollen forklart ovenfor skisserte imidlertid hvordan man vurderer KCC2-fosforylering på kinaseregule…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av The Royal Society UK (Grant no. IEC \ NSFC \ 201094), og et Commonwealth Ph.D. Scholarship.

Materials

40% acrylamide Sigma-Aldrich A2917 Used to make seperating and stacking gel for SDS-PAGE 
Ammonium Per Sulfate Sigma-Aldrich 248614 Used to make seperating and stacking gel for SDS-PAGE 
anti pSPAK Dundee University S670B Used as primary antibody for western blotting
anti-KCC2 Dundee University S700C Used as primary antibody for western blotting
anti-KCC2 pSer940 Thermo Fisher Scientific PA5-95678 Used as primary antibody for western blotting
anti-KCC2 pThr1007 Dundee University S961C Used as primary antibody for western blotting
anti-KCC2 pThr906 Dundee University S959C Used as primary antibody for western blotting
anti-mouse Cell Signalling technology 66002 Used as secondary antibody for western blotting
anti-NKCC1 Dundee University S841B Used as primary antibody for western blotting
anti-NKCC1 pThr203/207/212 Dundee University S763B Used as primary antibody for western blotting
anti-rabbit Cell Signalling technology C29F4 Used as secondary antibody for western blotting
anti-sheep abcam ab6900 Used as secondary antibody for western blotting
anti-SPAK Dundee University S669D Used as primary antibody for western blotting
anti-β-Tubulin III Sigma-Aldrich T8578 Used as primary antibody for western blotting
Benzamine Merck UK 135828 Used as component of lysis buffer
Beta-mercaptoethanol Sigma-Aldrich M3148 Used as component of loading buffer and lysis buffer
Bradford Coomasie Thermo Scientific 1856209 Used for lysate protein quantification
Casting apparatus Atto  WSE-1165W Used to run SDS-page electrophoresis
Centrifuge Eppendorf 5804 Used in lysate preparation
Centrifuge VWR MicroStar 17R Used for spinning samples
Dimethyl sulfoxide (DMSO) Sigma-Aldrich D2650-100ML Used for cell culture experiment
Dried Skimmed Milk Marvel N/A Used to make blocking buffer
Dulbecco's Modified Eagle's Medium – high glucose Sigma-Aldrich D6429 Used for cell culture
ECL reagent Perkin Elmer ORTT755/2655 Used to develop image for western blotting
EDTA Fisher Scientific D/0700/53 Used as component of lysis buffer
EGTA Sigma-Aldrich e4378 Used as component of lysis buffer
Electrophoresis Power Supply BioRad PowerPAC HC To supply power to run SDS-page electrophoresis
Ethanol ThermoFisher E/0650DF/17 Used for preparing sterilized equipments and environment
Fetal Bovine Serum -  heat inactivated Merck Life Sciences UK F9665 Used for cell culture
Fumehood Walker A7277 Used for cell culture
Gel Blotting – Whatman GE Healthcare  10426981 Used in western blotting to make transfer sandwich
Glycine Sigma-Aldrich 15527 Used to make buffers
GraphPad Prism Software GraphPad Software, Inc., USA Version 6.0 Used for plotting graphs and analysing data for  western blotting
HCl Acros Organics 10647282 Used to make seperating and stacking gel for SDS-PAGE 
Heating block Grant QBT1 Used to heat WB loading samples
HEK293 cells Merck UK 12022001-1VL Cell line for culture experiment
ImageJ Software Wayne Rasband and Contributors; NIH, USA  ImageJ 1.53e Used to measure band intensities from western blotting images
Imaging system BioRad ChemiDoc MP Used to take western blotting images
Incubator LEEC LEEC precision 190D Used for cell culture
Isopropanol Honeywell 24137 Used in casting gel for electrophoresis
L-glutamine solution Sigma-Aldrich G7513 Used for cell culture
Lithium dodecyl sulfate (LDS) Novex NP0008 Used as loading buffer for western blotting
MEM Non-essential amino acid  Merck Life Sciences UK M7145 Used for cell culture
Microcentrifuge Eppendorf 5418 Used for preparing lysates for WB
Microplate reader BioRad iMark Used for lysate protein concentration readout
Microsoft Powerpoint Microsoft, USA PowerPoint2016 Used to edit western blotting images
Molecular Weight Marker BioRad 1610373 Used for western blotting
N-ethylmaleimide Thermo Fisher Scientific 23030 Used for cell culture experiment
Nitrocellulose membrane Fisher Scientific 45004091 Used for western blotting
Penicillin-Streptomycin Gibco 15140122 Used for cell culture
pH Meter Mettler Toledo Seven compact s210 Used to monitor pH of buffer solutions
Phenylmethylsulfonylfluoride (PMSF) Sigma-Aldrich P7626 Used as component of lysis buffer
Phosphate Buffer Saline Sigma-Aldrich D8537 Used for cell culture
PKCδ pThr505 Cell Signalling technology 9374 Used as primary antibody for western blotting
Sepharose Protein G Generon PG50-00-0002 Used for immunoprecipitation
Sodium chloride Sigma-Aldrich S7653 Used as component of wash buffer
Sodium Chloride Sigma-Aldrich S7653 Used to prepare TBS-T buffer
Sodium Dodecyl Sulfate Sigma-Aldrich L5750 Used to make seperating and stacking gel for SDS-PAGE 
sodium orthovanadate Sigma-Aldrich S6508 Used as component of lysis buffer
Sodium Pyruvate Sigma-Aldrich S8636 Used for cell culture
sodium-β-glycerophosphate Merck UK G9422 Used as component of lysis buffer
Staurosporine (from Streptomyces sp.) Scientific Laboratory Supplies, UK S4400-1MG Used for cell culture experiment
Sucrose Scientifc Laboratory Supplies S0389 Used as component of lysis buffer
TEMED Sigma-Aldrich T7024 Used to make seperating and stacking gel for SDS-PAGE 
Transfer Chamber BioRad 1658005EDU Used in western blotting to transfer protein on membrane
Tris Sigma-Aldrich T6066 Used to make seperating and stacking gel for SDS-PAGE 
Triton-X100 Sigma-Aldrich T8787 Used as component of lysis buffer
Trypsin-EDTA Solution Merck Life Sciences UK T4049 Used for cell culture
Tween-20 Sigma-Aldrich P3179 Used as make TBS-T buffer
Vacuum pump Charles Austen Dymax 5 Used for cell culture
Vortex Scientific Industries K-550-GE Used in sample preparation
Vortex mixer Scientific Industries Ltd Vortex-Genie  K-550-GE Used of mixing resolved sample
Water bath Grant Instruments Ltd. (JB Academy) JBA5 Used to incubate solutions

Riferimenti

  1. de Los Heros, P., et al. The WNK-regulated SPAK/OSR1 kinases directly phosphorylate and inhibit the K+-Cl- co-transporters. Biochemical Journal. 458 (3), 559-573 (2014).
  2. Heubl, M., et al. GABAA receptor dependent synaptic inhibition rapidly tunes KCC2 activity via the Cl(-)-sensitive WNK1 kinase. Nature Communications. 8 (-), 1776 (2017).
  3. Schulte, J. T., Wierenga, C. J., Bruining, H. Chloride transporters and GABA polarity in developmental, neurological and psychiatric conditions. Neuroscience & Biobehavioral Reviews. 90, 260-271 (2018).
  4. Shekarabi, M., et al. WNK Kinase Signaling in Ion Homeostasis and Human Disease. Cell Metabolism. 25 (2), 285-299 (2017).
  5. Rivera, C., et al. The K+/Cl- co-transporter KCC2 renders GABA hyperpolarizing during neuronal maturation. Nature. 397 (6716), 251-255 (1999).
  6. Kahle, K. T., et al. Modulation of neuronal activity by phosphorylation of the K-Cl cotransporter KCC2. Trends in Neuroscience. 36 (12), 726-737 (2013).
  7. Andrews, K., Josiah, S. S., Zhang, J. The Therapeutic Potential of Neuronal K-Cl Co-Transporter KCC2 in Huntington’s Disease and Its Comorbidities. International Journal of Molecular Sciences. 21 (23), 9142 (2020).
  8. Friedel, P., et al. WNK1-regulated inhibitory phosphorylation of the KCC2 cotransporter maintains the depolarizing action of GABA in immature neurons. Science Signaling. 8 (383), 65 (2015).
  9. Watanabe, M., et al. Developmentally regulated KCC2 phosphorylation is essential for dynamic GABA-mediated inhibition and survival. Science Signaling. 12 (603), (2019).
  10. Rinehart, J., et al. Sites of regulated phosphorylation that control K-Cl cotransporter activity. Cell. 138 (3), 525-536 (2009).
  11. Lu, D. C. -. Y., et al. The role of WNK in modulation of KCl cotransport activity in red cells from normal individuals and patients with sickle cell anaemia. Pflügers Archiv-European Journal of Physiology. 471 (11-12), 1539-1549 (2019).
  12. Huang, H., et al. The WNK-SPAK/OSR1 Kinases and the Cation-Chloride Cotransporters as Therapeutic Targets for Neurological Diseases. Aging and Disease. 10 (3), 626-636 (2019).
  13. AlAmri, M. A., Kadri, H., Alderwick, L. J., Jeeves, M., Mehellou, Y. The Photosensitising Clinical Agent Verteporfin Is an Inhibitor of SPAK and OSR1 Kinases. Chembiochem. 19 (19), 2072-2080 (2018).
  14. Zhang, J., et al. Modulation of brain cation-Cl(-) cotransport via the SPAK kinase inhibitor ZT-1a. Nature Communications. 11 (1), 78 (2020).
  15. Zhang, J., et al. Staurosporine and NEM mainly impair WNK-SPAK/OSR1 mediated phosphorylation of KCC2 and NKCC1. PLoS One. 15 (5), 0232967 (2020).
  16. Alessi, D. R., et al. The WNK-SPAK/OSR1 pathway: master regulator of cation-chloride cotransporters. Science Signaling. 7 (334), 3 (2014).
  17. Zhang, J., et al. Functional kinomics establishes a critical node of volume-sensitive cation-Cl(-) cotransporter regulation in the mammalian brain. Scientific Reports. 6, 35986 (2016).
  18. Hartmann, A. M., et al. Opposite effect of membrane raft perturbation on transport activity of KCC2 and NKCC1. Journal of Neurochemistry. 111 (2), 321-331 (2009).
  19. Pisella, L. I., et al. Impaired regulation of KCC2 phosphorylation leads to neuronal network dysfunction and neurodevelopmental pathology. Science Signaling. 12 (603), (2019).
  20. Blaesse, P., et al. Oligomerization of KCC2 correlates with development of inhibitory neurotransmission. The Journal of Neuroscience. 26 (41), 10407-10419 (2006).
  21. Medina, I., Pisella, L. I. . Neuronal Chloride Transporters in Health and Disease. , 21-41 (2020).
  22. Thomas, P., Smart, T. G. HEK293 cell line: a vehicle for the expression of recombinant proteins. Journal of Pharmacological and Toxicological Methods. 51 (3), 187-200 (2005).
  23. Friedel, P., et al. A Novel View on the Role of Intracellular Tails in Surface Delivery of the Potassium-Chloride Cotransporter KCC2. eNeuro. 4 (4), (2017).
  24. Lee, Y. -. C., et al. Impact of detergents on membrane protein complex isolation. Journal of Proteome Research. 17 (1), 348-358 (2018).
  25. Vallée, B., Doudeau, M., Godin, F., Bénédetti, H. Characterization at the Molecular Level using Robust Biochemical Approaches of a New Kinase Protein. JoVE (Journal of Visualized Experiments). (148), e59820 (2019).
  26. Johansen, K., Svensson, L. . Molecular Diagnosis of Infectious Diseases. , 15-28 (1998).
  27. Mahmood, T., Yang, P. -. C. Western blot: technique, theory, and trouble shooting. North American Journal of Medical Sciences. 4 (9), 429 (2012).
  28. Klein, J. D., O’Neill, W. C. Volume-sensitive myosin phosphorylation in vascular endothelial cells: correlation with Na-K-2Cl cotransport. American Journal of Physiology-Cell Physiology. 269 (6), 1524-1531 (1995).
  29. Hannemann, A., Flatman, P. W. Phosphorylation and transport in the Na-K-2Cl cotransporters, NKCC1 and NKCC2A, compared in HEK-293 cells. PLoS One. 6 (3), 17992 (2011).
  30. Liu, J., Ma, X., Cooper, G. F., Lu, X. Explicit representation of protein activity states significantly improves causal discovery of protein phosphorylation networks. BMC Bioinformatics. 21 (13), 1-17 (2020).
  31. Terstappen, G. C. Nonradioactive rubidium ion efflux assay and its applications in drug discovery and development. Assay and Drug Development Technologies. 2 (5), 553-559 (2004).
  32. Carmosino, M., Rizzo, F., Torretta, S., Procino, G., Svelto, M. High-throughput fluorescent-based NKCC functional assay in adherent epithelial cells. BMC Cell Biology. 14 (1), 1-9 (2013).
  33. Adragna, N. C., et al. Regulated phosphorylation of the K-Cl cotransporter KCC3 is a molecular switch of intracellular potassium content and cell volume homeostasis. Frontiers in Cellular Neuroscience. 9, 255 (2015).
  34. Zhang, D., Gopalakrishnan, S. M., Freiberg, G., Surowy, C. S. A thallium transport FLIPR-based assay for the identification of KCC2-positive modulators. Journal of Biomolecular Screening. 15 (2), 177-184 (2010).
  35. Yu, H. B., Li, M., Wang, W. P., Wang, X. L. High throughput screening technologies for ion channels. Acta Pharmacologica Sinica. 37 (1), 34-43 (2016).
  36. Hill, C. L., Stephens, G. J. An Introduction to Patch Clamp Recording. Patch Clamp Electrophysiology. , 1-19 (2021).
  37. Conway, L. C., et al. N-Ethylmaleimide increases KCC2 cotransporter activity by modulating transporter phosphorylation. Journal of Biological Chemistry. 292 (52), 21253-21263 (2017).
  38. Heigele, S., Sultan, S., Toni, N., Bischofberger, J. Bidirectional GABAergic control of action potential firing in newborn hippocampal granule cells. Nature Neuroscience. 19 (2), 263-270 (2016).
  39. Moore, Y. E., Deeb, T. Z., Chadchankar, H., Brandon, N. J., Moss, S. J. Potentiating KCC2 activity is sufficient to limit the onset and severity of seizures. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 115 (40), 10166-10171 (2018).
  40. Kim, H. R., Rajagopal, L., Meltzer, H. Y., Martina, M. Depolarizing GABAA current in the prefrontal cortex is linked with cognitive impairment in a mouse model relevant for schizophrenia. Science Advances. 7 (14), 5032 (2021).
  41. Yelhekar, T. D., Druzin, M., Karlsson, U., Blomqvist, E., Johansson, S. How to properly measure a current-voltage relation?-interpolation vs. ramp methods applied to studies of GABAA receptors. Frontiers in Cellular Neuroscience. 10, 10 (2016).
  42. Ishibashi, H., Moorhouse, A. J., Nabekura, J. Perforated whole-cell patch-clamp technique: a user’s guide. Patch Clamp Techniques. , 71-83 (2012).
  43. Ebihara, S., Shirato, K., Harata, N., Akaike, N. Gramicidin-perforated patch recording: GABA response in mammalian neurones with intact intracellular chloride. The Journal of Physiology. 484 (1), 77-86 (1995).
  44. Kyrozis, A., Reichling, D. B. Perforated-patch recording with gramicidin avoids artifactual changes in intracellular chloride concentration. Journal of Neuroscience Methods. 57 (1), 27-35 (1995).
  45. Lamsa, K., Palva, J. M., Ruusuvuori, E., Kaila, K., Taira, T. Synaptic GABAA activation inhibits AMPA-kainate receptor-mediated bursting in the newborn (P0-P2) rat hippocampus. Journal of Neurophysiology. 83 (1), 359-366 (2000).
check_url/it/64179?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Josiah, S. S., Meor Azlan, N. F., Oguro-Ando, A., Zhang, J. Study of the Functions and Activities of Neuronal K-Cl Co-Transporter KCC2 Using Western Blotting. J. Vis. Exp. (190), e64179, doi:10.3791/64179 (2022).

View Video