Summary

Meting van de samendrukbaarheid van cel en kern op basis van Acoustofluidic Microdevice

Published: July 14, 2022
doi:

Summary

Hier wordt een protocol gepresenteerd om een snel en niet-destructief systeem te bouwen voor het meten van cel- of kerncompressie op basis van acoustofluidic microdevice. Veranderingen in mechanische eigenschappen van tumorcellen na epitheliaal-mesenchymale overgang of ioniserende straling werden onderzocht, wat het toepassingsperspectief van deze methode in wetenschappelijk onderzoek en klinische praktijk aantoont.

Abstract

Celmechanica speelt een belangrijke rol bij tumormetastase, kwaadaardige transformatie van cellen en radiosensitiviteit. Tijdens deze processen is het bestuderen van de mechanische eigenschappen van de cellen vaak een uitdaging. Conventionele meetmethoden op basis van contact, zoals compressie of stretching, kunnen celbeschadiging veroorzaken, wat de meetnauwkeurigheid en de daaropvolgende celcultuur beïnvloedt. Metingen in hechtende toestand kunnen ook de nauwkeurigheid beïnvloeden, vooral na bestraling, omdat ioniserende straling cellen zal afvlakken en de hechting zal verbeteren. Hier is een celmechanisch meetsysteem ontwikkeld op basis van een acoustofluidische methode. De samendrukbaarheid van de cel kan worden verkregen door het bewegingstraject van de cel te registreren onder invloed van de akoestische kracht, die snelle en niet-destructieve metingen in zwevende toestand kan realiseren. Dit artikel rapporteert in detail de protocollen voor chipontwerp, monstervoorbereiding, trajectregistratie, parameterextractie en -analyse. De samendrukbaarheid van verschillende soorten tumorcellen werd gemeten op basis van deze methode. Meting van de samendrukbaarheid van de kern werd ook bereikt door de resonantiefrequentie van het piëzo-elektrische keramiek en de breedte van het microkanaal aan te passen. In combinatie met de moleculaire niveauverificatie van immunofluorescentie-experimenten werd de celcompressie-voor en na geneesmiddel-geïnduceerde epitheliale naar mesenchymale overgang (EMT) vergeleken. Verder werd de verandering van de samendrukbaarheid van cellen na röntgenbestraling met verschillende doses onthuld. De celmechanica meetmethode die in dit artikel wordt voorgesteld, is universeel en flexibel en heeft brede toepassingsperspectieven in wetenschappelijk onderzoek en de klinische praktijk.

Introduction

Celmechanische eigenschappen spelen een belangrijke rol bij tumormetastase, kwaadaardige transformatie van cellen en radiogevoeligheid 1,2. Om een diepgaand inzicht te krijgen in de rol van celmechanische eigenschappen in het bovenstaande proces, is nauwkeurige meting van cellulaire mechanica van cruciaal belang en mag de meting geen schade aan de cellen veroorzaken voor daaropvolgende cultuur en analyse. Het meetproces moet zo snel mogelijk verlopen, anders kan de levensvatbaarheid van cellen worden aangetast als cellen voor een lange tijd uit de kweekomgeving worden verwijderd.

Bestaande celmechanica meetmethoden hebben te maken met enkele beperkingen. Sommige methoden, zoals magnetische draaiende cytometrie, magnetisch pincet en deeltjesvolgende microrheologie, veroorzaken celschade door de introductie van deeltjes in cellen 3,4,5. Methoden die meten door contact met cellen, zoals atoomkrachtmicroscoop (AFM), micropipette-aspiratie, microvernauwing en parallelplaattechniek, zijn ook gevoelig voor celbeschadiging en de doorvoer is moeilijk te verhogenmet 6,7,8. Bovendien zal ioniserende straling cellen afvlakken en hun hechting verhogen9; het is daarom noodzakelijk om de hele celmechanica in suspensie te meten.

Als antwoord op de bovenstaande uitdagingen is een celmechanisch meetsysteem ontwikkeld op basis van acoustofluidische methode10,11,12,13,14. De kanaalbreedte is afgestemd op de akoestische halve golflengte, waardoor een staande golfknoop ontstaat op de middellijn van het microkanaal. Onder invloed van akoestische stralingskracht kunnen de cellen of standaardparels naar de akoestische drukknoop bewegen. Omdat de fysische eigenschappen van de standaard kralen (grootte, dichtheid en samendrukbaarheid) bekend zijn, kan de akoestische energiedichtheid worden bepaald. Vervolgens kan de samendrukbaarheid van de cel worden verkregen door de bewegingstrajecten van cellen in het akoestische veld te registreren. Niet-destructieve high-throughput meting van cellen in suspensietoestand kan worden bereikt. Dit artikel introduceert het ontwerp van de microfluïdische chip, de oprichting van het systeem en de meetstappen. Meting van verschillende soorten tumorcellen is uitgevoerd om de nauwkeurigheid van de methode te verifiëren. Het toepassingsgebied van deze methode was uitgebreid tot subcellulaire structuren (zoals kern) door de resonantiefrequentie van het piëzo-elektrische keramiek en de breedte van het microkanaal aan te passen. Daarnaast werden de veranderingen in celcompressie na geneesmiddel-geïnduceerde EMT of röntgenbestraling met verschillende doses onderzocht. De resultaten tonen de brede toepasbaarheid van deze methode als een krachtig hulpmiddel voor het bestuderen van de correlatie tussen biochemische veranderingen en cellulaire mechanische eigenschappen.

Protocol

1. Vervaardiging en assemblage van het acoustofluidische microdevice Fabricage van de microfluïdische chip.Ontwerp een eenkanaalschip met slechts één in- en uitlaat, zoals weergegeven in figuur 1. Houd voor meetcellen de rechthoekige doorsnede van het microkanaal op 740 μm breed en 100 μm diep. Voor het meten van de celkern wijzigt u de breedte en diepte van het microkanaal in respectievelijk 250 μm en 100 μm. Bereid het microkanaal op sil…

Representative Results

Hier presenteerde het werk een protocol voor de bouw van een snel en niet-destructief celdrukbaarheidsmeetsysteem op basis van acoustofluidisch microdevice en demonstreerde het de voordelen ervan voor het meten van cel en kern onder verschillende situaties. Figuur 1 toont het schema van het microfluïdische kanaal. De componenten en assemblage van het acoustofluidische microdevice zijn weergegeven in figuur 2. Figuur 3 toont de opst…

Discussion

Veelgebruikte celmechanica meetmethoden zijn AFM, micropipette aspiratie, microfluïdica methoden, parallel-plaat techniek, optische pincet, optische brancard en akoestische methoden20. Microfluïdische methoden kunnen werken met drie benaderingen: micro-vernauwing, extensieve stroming en afschuifstroom. Onder hen zijn optische brancards, optische pincetten, akoestische methoden, extensieve stroming en afschuifstroombenaderingen contactloze metingen. In tegenstelling tot contactmetingen kunnen con…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Deze studie werd ondersteund door de National Natural Science Foundation of China (Grant-nummers 12075330 en U1932165) en de Natural Science Foundation van de provincie Guangdong, China (Grant-nummer 2020A1515010270).

Materials

0.25% trypsin(1x) GIBCO 15050-065
502 glue Evo-bond cyanoacrylate glue
A549 ATCC CCL-185 lung adenocarcinoma
Cytonucleoprotein and cytoplasmic protein extraction kit Beyotime P0027 Contains cytoplasmic protein extraction reagents A and B
Dulbecco’s modified Eagle medium (DMEM)  corning 10-013-CVRC
Fetal Bovine Srum(FBS) AUSGENEX FBS500-S
HCT116 ATCC CCL247 colorectal carcinoma
Heat-resistant glass Pyrex
Leibovitz’s L-15 medium  GIBCO 11415-064
MCF-7 ATCC HTB-22  breast Adenocarcinoma
MDA-MB-231 ATCC HTB-26  breast Adenocarcinoma
Minimum Essential Medium (MEM) corning 10-010-CV
Penicillin-Streptomycin GIBCO 15140-122
Phosphate buffer corning 21-040-cvc
PMSF Beyotime ST506 100mM
Polybead Polystyrene Red Dyed Microsphere  polysciences 15714 The diameter of microshpere is 6.00µm
propidium iodide(PI) Sigma-Aldrich P4170
SYLGARD 184Silicone ELASTOMER Dow-Corning 1673921 Contains prepolymers and curing agents
Trypan Blue Beyotime C0011

Riferimenti

  1. Wirtz, D., Konstantopoulos, K., Searson, P. C. The physics of cancer: the role of physical interactions and mechanical forces in metastasis. Nature Reviews. Cancer. 11 (7), 512-522 (2011).
  2. Frame, F. M., et al. HDAC inhibitor confers radiosensitivity to prostate stem-like cells. British Journal of Cancer. 109 (12), 3023-3033 (2013).
  3. Tseng, Y., Kole, T. P., Wirtz, D. Micromechanical mapping of live cells by multiple-particle-tracking microrheology. Biophysical Journal. 83 (6), 3162-3176 (2002).
  4. Möller, W., Brown, D. M., Kreyling, W. G., Stone, V. Ultrafine particles cause cytoskeletal dysfunctions in macrophages: role of intracellular calcium. Particle and Fibre Toxicology. 2, 7 (2005).
  5. Wang, X., et al. A three-dimensional magnetic tweezer system for intraembryonic navigation and measurement. IEEE Transactions on Robotics. 34 (1), 240-247 (2018).
  6. Machida, S., et al. Direct manipulation of intracellular stress fibres using a hook-shaped AFM probe. Nanotechnology. 21 (38), 385102 (2010).
  7. Bufi, N., et al. Human primary immune cells exhibit distinct mechanical properties that are modified by inflammation. Biophysical Journal. 108 (9), 2181-2190 (2015).
  8. Hogan, B., Babataheri, A., Hwang, Y., Barakat, A. I., Husson, J. Characterizing cell adhesion by using micropipette aspiration. Biophysical Journal. 109 (2), 209-219 (2015).
  9. Jung, J. -. W., et al. Ionising radiation induces changes associated with epithelial-mesenchymal transdifferentiation and increased cell motility of A549 lung epithelial cells. European Journal of Cancer. 43 (7), 1214-1224 (2007).
  10. Hartono, D., et al. On-chip measurements of cell compressibility via acoustic radiation. Lab-on-a-Chip. 11 (23), 4072-4080 (2011).
  11. Sitters, G., et al. Acoustic force spectroscopy. Nature Methods. 12 (1), 47-50 (2015).
  12. Augustsson, P., Karlsen, J. T., Su, H. -. W., Bruus, H., Voldman, J. Iso-acoustic focusing of cells for size-insensitive acousto-mechanical phenotyping. Nature Communications. 7 (1), 11556 (2016).
  13. Cushing, K. W., et al. Ultrasound characterization of microbead and cell suspensions by speed of sound measurements of neutrally buoyant samples. Analytical Chemistry. 89 (17), 8917-8923 (2017).
  14. Riaud, A., Wang, W., Thai, A. L. P., Taly, V. Mechanical characterization of cells and microspheres sorted by acoustophoresis with in-line resistive pulse sensing. Physical Review Applied. 13 (3), 034058 (2020).
  15. Petersson, F., Aberg, L., Swärd-Nilsson, A. -. M., Free Laurell, T. flow acoustophoresis: microfluidic-based mode of particle and cell separation. Analytical Chemistry. 79 (14), 5117-5123 (2007).
  16. Griwatz, C., Brandt, B., Assmann, G., Zänker, K. S. An immunological enrichment method for epithelial cells from peripheral blood. Journal of Immunological Methods. 183 (2), 251-265 (1995).
  17. Katholnig, K., Poglitsch, M., Hengstschläger, M., Weichhart, T. Lysis gradient centrifugation: a flexible method for the isolation of nuclei from primary cells. Methods in Molecular Biology. 1228, 15-23 (2015).
  18. Fu, Q., Zhang, Y., Huang, T., Liang, Y., Liu, Y. Measurement of cell compressibility changes during epithelial-mesenchymal transition based on acoustofluidic microdevice. Biomicrofluidics. 15 (6), 064101 (2021).
  19. Zhang, Y., et al. Ionizing radiation-induced DNA damage responses affect cell compressibility. Biochemical and Biophysical Research Communications. 603, 116-122 (2022).
  20. Hao, Y., et al. Mechanical properties of single cells: Measurement methods and applications. Biotechnology Advances. 45, 107648 (2020).
  21. Yousafzai, M., et al. Effect of neighboring cells on cell stiffness measured by optical tweezers indentation. Journal of Biomedical Optics. 21 (5), 057004 (2016).
  22. Wei, M. -. T., et al. A comparative study of living cell micromechanical properties by oscillatory optical tweezers. Optics Express. 16 (12), 8594-8603 (2008).
  23. Khan, Z. S., Vanapalli, S. A. Probing the mechanical properties of brain cancer cells using a microfluidic cell squeezer device. Biomicrofluidics. 7 (1), 011806 (2013).
  24. Hirawa, S., Masudo, T., Okada, T. Acoustic recognition of counterions in ion-exchange resins. Analytical Chemistry. 79 (7), 3003-3007 (2007).
  25. Joosse, S. A., Gorges, T. M., Biology Pantel, K. detection, and clinical implications of circulating tumor cells. EMBO Molecular Medicine. 7 (1), 1-11 (2015).
  26. Martin, O. A., Anderson, R. L., Narayan, K., MacManus, M. P. Does the mobilization of circulating tumour cells during cancer therapy cause metastasis. Nature Reviews Clinical Oncology. 14 (1), 32-44 (2017).
check_url/it/64225?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Fu, Q., Zhang, Y., Huang, T., Liu, Y. Measurement of the Compressibility of Cell and Nucleus Based on Acoustofluidic Microdevice. J. Vis. Exp. (185), e64225, doi:10.3791/64225 (2022).

View Video