Summary

Transdermal måling av glomerulær filtreringshastighet i mekanisk ventilerte smågriser

Published: September 13, 2022
doi:

Summary

Glomerulær filtreringshastighet (GFR) er den ideelle markøren for å vurdere nyrefunksjonen. Imidlertid er standard målemetode ved bruk av inulininjeksjon med seriell blod- og urinanalyse upraktisk. Denne artikkelen beskriver en praktisk metode for å måle GFR transdermalt hos gris.

Abstract

Transdermal måling av glomerulær filtreringshastighet (GFR) har blitt brukt til å evaluere nyrefunksjonen hos bevisste dyr. Denne teknikken er godt etablert hos gnagere for å studere akutt nyreskade og kronisk nyresykdom. GFR-måling ved bruk av det transdermale systemet er imidlertid ikke validert hos griser, en art med et lignende nyresystem som mennesker. Vi undersøkte derfor effekten av sepsis på transdermal GFR hos anesteserte og mekanisk ventilerte nyfødte griser. Polymikrobiell sepsis ble indusert ved cekal ligering og punktering (CLP). Det transdermale GFR-målesystemet bestående av en miniatyrisert fluorescenssensor ble festet til grisens barberte hud for å bestemme clearance av fluorescein-isotiocyanat (FITC) konjugert sinistrin, en intravenøst injisert GFR-sporstoff. Våre resultater viser at ved 12 timer etter CLP økte serumkreatinin med en reduksjon i GFR. Denne studien viser for første gang nytten av den transdermale GFR-tilnærmingen for å bestemme nyrefunksjonen hos mekanisk ventilerte, nyfødte griser.

Introduction

En praktisk og kvantitativ evaluering av nyrefunksjonen er måling av glomerulær filtrasjonshastighet (GFR), som forteller hvor godt nyrene filtrerer blod basert på clearanceprinsippet1. En tidligere metode for måling av GFR innebærer intravenøs injeksjon av eksogene forbindelser som inulin eller sinistrin, og utfører serielle målinger av plasma / urinnivåer for å oppdage deres clearance 2,3. Denne metoden er tungvint, og krever seriell innsamling av plasma- og urinprøver4. Et alternativ er måling av endogene metabolske sluttprodukter som kreatinin. Dette er imidlertid tidkrevende og til tider unøyaktig, da det ikke bare filtreres av glomerulus, men også utskilles av tubuli 5,6. Videre påvirkes kreatininnivået av kjønn, alder, kosthold og muskelmasse 7,8,9.

Et mer presist, minimalt invasivt og mye brukt mål på GFR er bruken av transdermale GFR-skjermer, som måler sanntids GFR hos dyr 4,10. Sinistrin, en høyoppløselig og fritt filtrert eksogen nyremarkør, er merket med fluorescein-isotiocyanat (FITC). Denne konjugerte forbindelsen injiseres intravenøst, og nyrefunksjonen i sanntid kan vurderes uten å samle blod- og urinprøver11. Bruken av transdermal GFR-måling er validert hos gnagere 12, hunder13 og katter14, men ikke hos svin.

Svin arter deler flere anatomiske og fysiologiske egenskaper med mennesker, noe som gjør dem ideelle dyr for å studere ulike menneskelige sykdommer15. Bruken av griser i translasjonell biomedisinsk forskning har blitt stadig mer populær og foretrukket over gnagermodeller fordi den etterligner menneskelig fysiologi og patofysiologi16. Neonatale griser er av interesse for å forstå mekanismene for sykdommer som er unike for pediatriske pasienter17. Videre setter den nylige fremgangen i gris til menneskelig organtransplantasjon en trang til å utvide diagnostiske verktøy for prekliniske og kliniske studier 18,19,20,21. Dette papiret gir for første gang en veiledning for bruk av transdermal enhet for måling av GFR hos nyfødte griser.

Protocol

Prosedyrene er skrevet i henhold til nasjonale standarder for pleie og bruk av laboratoriedyr og ble godkjent av Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) ved University of Tennessee Health Science Center (UTHSC). MERK: Grisene i forsøksgruppen blir utsatt for cekalligering og punktering, mens humbuggruppen bare gjennomgår åpning av magen uten cekalligering eller punktering. Grisene i begge gruppene holdes under anestesi i 12 timer etter prosedyren for å gi nok tid til sepsis og …

Representative Results

I dette avsnittet presenterer vi for første gang representative data fra bruk av transdermal GFR hos nyfødte griser. Vi brukte en cecal ligation og punktering modell som tidligere har vist seg å redusere nyrefunksjonen28. Følgelig antok vi at hos våre CLP-griser skulle det være et akutt fall i GFR som tilsvarer AKI, og dette bør oppdages på det transdermale GFR-apparatet som økt clearancetid (t1/2), og dermed validere bruken hos griser. Syv hanngrisunger ble inkludert, tre humb…

Discussion

Dette papiret beskriver praktiske trinn for å bestemme nyrefunksjonen hos griser ved hjelp av de miniatyriserte transdermale GFR-skjermene og FITC-sinistrin i en mekanisk ventilert, bedøvet neonatal grismodell. Tidligere papirer har etablert eksperimentelle transdermale GFR-protokoller hos gnagere 11,12,14, men det finnes ingen protokoller hos griser.

Nylig har det vært en stasjon for å utforske …

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne studien ble støttet av National Institutes of Health tilskudd R01 DK120595 og R01 DK127625 tildelt Dr. Adebiyi. Innholdet i denne artikkelen er utelukkende forfatternes ansvar og representerer ikke nødvendigvis de offisielle synspunktene til National Institutes of Health. Takk til Dr. Daniel Schock-Kusch, site director hos MediBeacon GmbH, for hans råd.

Materials

Alpha – Chloralose Sigma-Aldrich C0128-25G Used for maintanining anesthesia
Black braided silk  3-0 Surgical Specialties SP117 Silk tie for blood vessel traction and ligation
Centrifugation machine AccuSpin 8C Fischer Scientific 75-008-821 Used to extract plasma from whole blood sample
Endotracheal Tube 3.0 uncuffed Progressive Medical International 1109021995 Inserted through tracheostomy
FITC-Sinistrin 1.0 g MediBeacon Inc. FTCF S001 Store at room temp and protect from light
GEM Premier 3000 Blood gas analyzer Instrumentation Laboratory 5700 For bedside blood gas analysis
Heating Pad medium size 20 in x 29 in Adroit Medical Systems V029 Connects to heat therapy pump
HTP-Heat Therapy Pump Adroit Medical Systems HTP Allows you to set temperature as needed.
IDEXX Catalyst One IDEXX Laboratories 89-92525-00 Plasma creatinine analysis
Invasive blood pressure catheter 3.5Fr Millar SPR-524 Inserted in femoral artery
IV adminstration set with flow regulator True Care TCRTCBINF033G Used to connect IV fluid bag to vein catheter
Ketamine Covetrus 68317 Used for induction of Anesthesia
MediBeacon analysis software version 3.0 MediBeacon Inc. N/A Software program used for analysing data to obtain sinistrin clearance half life and curve
Millex-GV Syringe Filter Unit 0.22 µm Millipore Sigma SLGVR33RS Syringe filter for chloralose injection
Neonate/Infant Ventilator Sechrist Millennium 20409 Connected to air supply to provide ventilation through endotracheal tube
Phenobarbital Sodium + Phenytoin Sodium (Euthasol) Covetrus 72934 Used for euthanasia
Ringer Lactate 500 mL bag Baxter 2B2323Q Maintanence fluid infusion
Sterile Gloves Henry Schein 104-5920 Used by operator during surgery
Sterile Gown Halyard Health 95021 Used by operator during surgery
Steril Towel Medline 42131704 Used as drape to maintaine sterile field when operating
Suture 3-0 silk reverse cutting needle Ethicon NC1842168 Used for suturing abdominal wall layers
Transdermal Mini GFR Monitor MediBeacon Inc. TDM004 Battery and USB connector included in package
Transdermal monitor adhesive patch MediBeacon Inc. PTC-SM001 Doubl sided adhesive patch for GFR probe
Umbilical Tape 1/8 in x 20 yds Fisher Scientific NC9303017 To secure endotracheal tube
Venous Catheter size PE/5 Micro medical tubing BB31695 For femoral vein cannulation
Xylazine Covetrus 61035 Used for induction of anesthesia

Riferimenti

  1. Pasala, S., Carmody, J. B. How to use… serum creatinine, cystatin C and GFR. Archives of Disease in Childhood Education and Practice Edition. 102 (1), 37-43 (2017).
  2. Smith, H. W. . The Kidney: Structure and Function in Health and Disease. , (1951).
  3. Gutman, Y., Gottschalk, C. W., Lassiter, W. E. Micropuncture study of inulin absorption in the rat kidney. Science. 147 (3659), 753-754 (1965).
  4. Ellery, S. J., Cai, X., Walker, D. D., Dickinson, H., Kett, M. M. Transcutaneous measurement of glomerular filtration rate in small rodents: through the skin for the win. Nephrology. 20 (3), 117-123 (2015).
  5. Eisner, C., et al. Major contribution of tubular secretion to creatinine clearance in mice. Kidney International. 77 (6), 519-526 (2010).
  6. Wendt, M., Waldmann, K. H., Bickhardt, K. Comparative studies of the clearance of inulin and creatinine in swine. Zentralblatt fur Veterinarmedizin. Reihe A. 37 (10), 752-759 (1990).
  7. Schwartz, G. J., Brion, L. P., Spitzer, A. The use of plasma creatinine concentration for estimating glomerular filtration rate in infants, children, and adolescents. Pediatric Clinics of North America. 34 (3), 571-590 (1987).
  8. Boer, D. P., de Rijke, Y. B., Hop, W. C., Cransberg, K., Dorresteijn, E. M. Reference values for serum creatinine in children younger than 1 year of age. Pediatric Nephrology. 25 (10), 2107-2113 (2010).
  9. Guignard, J. P., Drukker, A. Why do newborn infants have a high plasma creatinine. Pediatrics. 103 (4), 49 (1999).
  10. Friedemann, J., Schock-Kusch, D., Shulhevich, Y. Transcutaneous measurement of glomerular filtration rate in conscious laboratory animals: state of the art and future perspectives. Reporters, Markers, Dyes, Nanoparticles, and Molecular Probes for Biomedical Applications IX. 10079, 63-71 (2017).
  11. Herrera Pérez, Z., Weinfurter, S., Gretz, N. Transcutaneous assessment of renal function in conscious rodents. Journal of Visualized Experiments. (109), e53767 (2016).
  12. Scarfe, L., et al. Transdermal measurement of glomerular filtration rate in mice. Journal of Visualized Experiments. (140), e58520 (2018).
  13. Mondritzki, T., et al. Transcutaneous glomerular filtration rate measurement in a canine animal model of chronic kidney disease. Journal of Pharmacological and Toxicological Methods. 90, 7-12 (2018).
  14. Steinbach, S., et al. A pilot study to assess the feasibility of transcutaneous glomerular filtration rate measurement using fluorescence-labelled sinistrin in dogs and cats. PLoS One. 9 (11), 111734 (2014).
  15. Almond, G. W. Research applications using pigs. The Veterinary Clinics of North America Food Animal Practice. 12 (3), 707-716 (1996).
  16. Bassols, A., et al. The pig as an animal model for human pathologies: A proteomics perspective. Proteomics Clinical Applications. 8 (9-10), 715-731 (2014).
  17. Ayuso, M., Irwin, R., Walsh, C., Van Cruchten, S., Van Ginneken, C. Low birth weight female piglets show altered intestinal development, gene expression, and epigenetic changes at key developmental loci. FASEB Journal. 35 (4), 21522 (2021).
  18. Pierson, R. N. Progress toward pig-to-human xenotransplantation. The New England Journal of Medicine. 386 (20), 1871-1873 (2022).
  19. Montgomery, R. A., et al. Results of two cases of pig-to-human kidney xenotransplantation. The New England Journal of Medicine. 386 (20), 1889-1898 (2022).
  20. Reardon, S. First pig kidneys transplanted into people: what scientists think. Nature. 605 (7911), 597-598 (2022).
  21. Lu, T., Yang, B., Wang, R., Qin, C. Xenotransplantation: current status in preclinical research. Frontiers in Immunology. 10, 3060 (2019).
  22. Pattison, R. J., English, P. R., MacPherson, O., Roden, J. A., Birnie, M. Hypothermia and its attempted control in newborn piglets. Proceedings of the British Society of Animal Production. 1990, 81 (1972).
  23. Tucker, B. S., Petrovski, K. R., Kirkwood, R. N. Neonatal piglet temperature changes: effect of intraperitoneal warm saline injection. Animals. 12 (10), 1312 (2022).
  24. Alcalá Rueda, I., et al. A live porcine model for surgical training in tracheostomy, neck dissection, and total laryngectomy. European Archives of Oto-Rhino-Laryngology. 278 (8), 3081-3090 (2021).
  25. Swindle, M. M., Smith, A. C. . Swine in the Laboratory: Surgery, Anesthesia, Imaging, and Experimental Techniques, Third Edition. , (2016).
  26. Steinbacher, R., von Ritgen, S., Moens, Y. P. Laryngeal perforation during a standard intubation procedure in a pig. Laboratory Animals. 46 (3), 261-263 (2012).
  27. Ettrup, K. S., et al. Basic surgical techniques in the Göttingen minipig: intubation, bladder catheterization, femoral vessel catheterization, and transcardial perfusion. Journal of Visualized Experiments. (52), e2652 (2011).
  28. Soni, H., Adebiyi, A. Early septic insult in neonatal pigs increases serum and urinary soluble Fas ligand and decreases kidney function without inducing significant renal apoptosis. Renal Failure. 39 (1), 83-91 (2017).
  29. Bütz, D. E., Morello, S. L., Sand, J., Holland, G. N., Cook, M. E. The expired breath carbon delta value is a marker for the onset of sepsis in a swine model. Journal of Analytical Atomic Spectrometry. 29 (4), 606-613 (2014).
  30. Turner, A. S., McIlwraith, C. W. . Techniques in Large Animal Surgery. , (1989).
  31. Steinbach, S., et al. A pilot study to assess the feasibility of transcutaneous glomerular filtration rate measurement using fluorescence-labelled sinistrin in dogs and cats. PLoS One. 9 (11), 111734 (2014).
  32. Mondritzki, T., et al. Transcutaneous glomerular filtration rate measurement in a canine animal model of chronic kidney disease. Journal of Pharmacological and Toxicological Methods. 90, 7-12 (2018).
  33. Schock-Kusch, D., et al. Transcutaneous measurement of glomerular filtration rate using FITC-sinistrin in rats. Nephrology Dialysis Transplantation. 24 (10), 2997-3001 (2009).
  34. Peters, A. M. Expressing glomerular filtration rate in terms of extracellular fluid volume. Nephrology Dialysis Transplantation. 7 (3), 205-210 (1992).
  35. Groth, S., Christensen, A. B., Nielsen, H. CdTe-detector registration of 99mTc-DTPA clearance. European Journal of Nuclear Medicine. 8 (6), 242-244 (1983).
  36. Guyton, A. C., Hall, J. E. The body fluid compartments: extracellular and intracellular fluids; interstitial fluid and edema. Textbook of Medical Physiology. 9, 306-308 (2000).
  37. Luis-Lima, S., et al. Iohexol plasma clearance simplified by dried blood spot testing. Nephrology, Dialysis, Transplantation. 33 (9), 1597-1603 (2018).
  38. Kobayashi, E., Hishikawa, S., Teratani, T., Lefor, A. T. The pig as a model for translational research: overview of porcine animal models at Jichi Medical University. Transplantation Research. 1 (1), 8 (2012).
  39. Swindle, M. M., et al. Swine as models in biomedical research and toxicology testing. Veterinary Pathology. 49 (2), 344-356 (2012).
  40. Ibrahim, Z., et al. Selected physiologic compatibilities and incompatibilities between human and porcine organ systems. Xenotransplantation. 13 (6), 488-499 (2006).
  41. Judge, E. P., et al. Anatomy and bronchoscopy of the porcine lung. A model for translational respiratory medicine. American Journal of Respiratory Cell and Molecular Biology. 51 (3), 334-343 (2014).
  42. Stevens, L. A., Levey, A. S. Measured GFR as a confirmatory test for estimated GFR. Journal of the American Society of Nephrology. 20 (11), 2305-2313 (2009).
  43. Bankir, L., Yang, B. New insights into urea and glucose handling by the kidney, and the urine concentrating mechanism. Kidney International. 81 (12), 1179-1198 (2012).
  44. Ruiz, S., et al. Sepsis modeling in mice: ligation length is a major severity factor in cecal ligation and puncture. Intensive Care Medicine Experimental. 4 (1), 22 (2016).
  45. Schock-Kusch, D., et al. Transcutaneous assessment of renal function in conscious rats with a device for measuring FITC-sinistrin disappearance curves. Kidney International. 79 (11), 1254-1258 (2011).
  46. Frennby, B., Sterner, G. Contrast media as markers of GFR. European Radiology. 12 (2), 475484 (2002).
  47. Burchardi, H., Kaczmarczyk, G. The effect of anaesthesia on renal function. European Journal of Anaesthesiology. 11 (3), 163-168 (1994).
  48. Fusellier, M., et al. Influence of three anesthetic protocols on glomerular filtration rate in dogs. American Journal of Veterinary Research. 68 (8), 807811 (2007).
  49. Arant, B. S. Functional immaturity of the newborn kidney-paradox or prostaglandin. Homeostasis, Nephrotoxicity, and Renal Anomalies in the Newborn. , 271-278 (1986).
  50. Gattineni, J., Baum, M. Developmental changes in renal tubular transport-an overview. Pediatric Nephrology. 30 (12), 2085-2098 (2015).
  51. Gu, X., Yang, B. Methods for assessment of the glomerular filtration rate in laboratory animals. Kidney Diseases. , 1-11 (2022).
  52. Mullins, T. P., Tan, W. S., Carter, D. A., Gallo, L. A. Validation of non-invasive transcutaneous measurement for glomerular filtration rate in lean and obese C57BL/6J mice. Nephrology. 25 (7), 575-581 (2020).
check_url/it/64413?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Fanous, M. S., Afolabi, J. M., Michael, O. S., Falayi, O. O., Iwhiwhu, S. A., Adebiyi, A. Transdermal Measurement of Glomerular Filtration Rate in Mechanically Ventilated Piglets. J. Vis. Exp. (187), e64413, doi:10.3791/64413 (2022).

View Video