Questo protocollo descrive le metodologie per stabilire organoidi epiteliali endometriali di topo per l’espressione genica e le analisi istologiche.
Il tessuto endometriale riveste la cavità interna dell’utero ed è sotto il controllo ciclico di estrogeni e progesterone. È un tessuto composto da epitelio luminale e ghiandolare, un compartimento stromale, una rete vascolare e una popolazione di cellule immunitarie complesse. I modelli murini sono stati un potente strumento per studiare l’endometrio, rivelando meccanismi critici che controllano l’impianto, la placentazione e il cancro. Il recente sviluppo di colture organoidi endometriali 3D presenta un modello all’avanguardia per sezionare le vie di segnalazione che sono alla base della biologia endometriale. Stabilire organoidi endometriali da modelli murini geneticamente modificati, analizzare i loro trascrittomi e visualizzare la loro morfologia a una risoluzione a singola cellula sono strumenti cruciali per lo studio delle malattie dell’endometrio. Questo articolo delinea i metodi per stabilire colture 3D di epitelio endometriale da topi e descrive tecniche per quantificare l’espressione genica e analizzare l’istologia degli organoidi. L’obiettivo è quello di fornire una risorsa che possa essere utilizzata per stabilire, coltivare e studiare l’espressione genica e le caratteristiche morfologiche degli organoidi epiteliali endometriali.
L’endometrio – il tessuto mucoso del rivestimento interno della cavità uterina – è un tessuto unico e altamente dinamico che svolge ruoli critici nella salute riproduttiva di una donna. Durante la vita riproduttiva, l’endometrio ha il potenziale per subire centinaia di cicli di proliferazione, differenziazione e rottura, coordinati dall’azione concertata degli ormoni ovarici – estrogeni e progesterone. Studi su topi geneticamente modificati hanno scoperto meccanismi biologici di base alla base della risposta endometriale agli ormoni e del controllo dell’impianto dell’embrione, della decidualizzazione delle cellule stromali e della gravidanza1. Gli studi in vitro, tuttavia, sono stati limitati a causa delle difficoltà nel mantenere tessuti endometriali primari di topo non trasformati nelle colture cellulari 2D tradizionali 2,3. I recenti progressi nella coltura dei tessuti endometriali come sistemi di organi 3D, o organoidi, rappresentano una nuova opportunità per studiare i percorsi biologici che controllano la rigenerazione e la differenziazione delle cellule endometriali. I sistemi organoidi endometriali di topo e umano sono stati sviluppati da epitelio endometriale puro incapsulato in varie matrici4,5, mentre l’endometrio umano è stato coltivato come co-colture epiteliali/stromali prive di scaffold 6,7 e, più recentemente, come assembloidi epiteliali/stromali incapsulati in collagene8 . La crescita e il potenziale rigenerativo delle colture organoidi epiteliali è supportato da un cocktail definito di fattori di crescita e inibitori di piccole molecole che sono stati empiricamente determinati per massimizzare la crescita e la rigenerazione degli organoidi 4,5,9. Inoltre, la capacità di congelare e scongelare gli organoidi endometriali consente la banca a lungo termine di organoidi endometriali da topi e umani per studi futuri.
Topi geneticamente modificati hanno rivelato le complesse vie di segnalazione che controllano la gravidanza precoce e la decidualizzazione e sono stati utilizzati come modelli di perdita di gravidanza, cancro dell’endometrio ed endometriosi. Questi studi genetici sono stati ampiamente raggiunti con la delezione cellulo-specifica di alleli affiancati da loxP (“floxed”) utilizzando cre ricombinasi che sono specificamente attive nei tessuti riproduttivi femminili. Questi modelli murini includono il recettore del progesterone-cre10, ampiamente utilizzato, che ha una forte attività ricombinasi nei tessuti epiteliali e stromali endometriali, la lattoferrina i-cre, che induce la ricombinazione epiteliale endometriale nei topi adulti11, o Wnt7a-cre, che innesca la delezione epiteliale-specifica nei tessuti di derivazione mülleriana12 . La coltura di tessuti endometriali da modelli murini geneticamente modificati come organoidi 3D ha fornito un’eccellente opportunità per studiare la biologia endometriale e facilitare l’identificazione dei fattori di crescita e delle vie di segnalazione che controllano il rinnovamento e la differenziazione delle cellule endometriali13,14. I metodi per l’isolamento e la coltura del tessuto endometriale del topo sono descritti in letteratura e riportano l’uso di varie strategie enzimatiche per l’isolamento dell’epitelio uterino per la successiva coltura di organoidi epiteliali endometriali4. Mentre la letteratura precedente fornisce un quadro critico per i protocolli di coltura organoide epiteliale endometriale 4,5,6, questo articolo fornisce un metodo chiaro e completo per generare, mantenere, elaborare e analizzare questi organoidi. La standardizzazione di queste tecniche è importante per accelerare i progressi nel campo della biologia riproduttiva femminile. Qui, riportiamo una metodologia dettagliata per la purificazione enzimatica e meccanica del tessuto epiteliale endometriale di topo per la successiva coltura di organoidi endometriali in un’impalcatura a matrice di gel. Descriviamo anche le metodologie per le analisi istologiche e molecolari a valle degli organoidi epiteliali endometriali di topo incapsulati in gel con matrice di remu.
Qui, descriviamo i metodi per generare organoidi epiteliali endometriali dall’endometrio del topo e i protocolli utilizzati abitualmente per la loro analisi a valle. Gli organoidi endometriali sono un potente strumento per studiare i meccanismi che controllano le malattie correlate all’endometrio, come l’endometriosi, il cancro dell’endometrio e il fallimento dell’impianto. Studi di riferimento pubblicati nel 2017 hanno riportato le condizioni per la coltura a lungo termine e colture rinnovabili di organoidi endometriali…
The authors have nothing to disclose.
Ringraziamo la Dott.ssa Stephanie Pangas e il Dr. Martin M. Matzuk (M.M.M.) per la lettura critica e la redazione del nostro manoscritto. Gli studi sono stati sostenuti da Eunice Kennedy Shriver National Institute of Child Health and Human Development grants R00-HD096057 (D.M.), R01-HD105800 (D.M.), R01-HD032067 (M.M.M.) e R01-HD110038 (M.M.M.), e da NCI- P30 Cancer Center Support Grant (NCI-CA125123). Diana Monsivais, Ph.D. ha ricevuto un Next Gen Pregnancy Award dal Burroughs Wellcome Fund.
Organoid Media Formulation | |||
Name | Company | Catalog Number | Final concentration |
Corning Matrigel Growth Factor Reduced (GFR) Basement Membrane Matrix, *LDEV-free | Corning | 354230 | 100% |
Trypsin from Bovine Pancreas | Sigma Aldrich | T1426-1G | 1% |
Advanced DMEM/F12 | Life Technologies | 12634010 | 1X |
N2 supplement | Life Technologies | 17502048 | 1X |
B-27™ Supplement (50X), minus vitamin A | Life Technologies | 12587010 | 1X |
Primocin | Invivogen | ant-pm-1 | 100 µg/mL |
N-Acetyl-L-cysteine | Sigma Aldrich | A9165-5G | 1.25 mM |
L-glutamine | Life Technologies | 25030024 | 2 mM |
Nicotinamide | Sigma Aldrich | N0636-100G | 10 nM |
ALK-4, -5, -7 inhibitor, A83-01 | Tocris | 2939 | 500 nM |
Recombinant human EGF | Peprotech | AF-100-15 | 50 ng/mL |
Recombinant human Noggin | Peprotech | 120-10C | 100 ng/mL |
Recombinant human Rspondin-1 | Peprotech | 120-38 | 500 ng/mL |
Recombinant human FGF-10 | Peprotech | 100-26 | 100 ng/mL |
Recombinant human HGF | Peprotech | 100-39 | 50 ng/mL |
WNT3a | R&D systems | 5036-WN | 200 ng/mL |
Other supplies and reagents | |||
Name | Company | Catalog Number | Final concentration |
Collagenase from Clostridium histolyticum | Sigma Aldrich | C0130-1G | 5 mg/mL |
Deoxyribonuclease I from bovine pancreas | Sigma Aldrich | DN25-100MG | 2 mg/mL |
DPBS, no calcium, no magnesium | ThermoFisher | 14190-250 | 1X |
HBSS, no calcium, no magnesium | ThermoFisher | 14170112 | 1X |
Falcon Polystyrene Microplates (24-Well) | Fisher Scientific | #08-772-51 | |
Falcon Polystyrene Microplates (12-Well) | Fisher Scientific | #0877229 | |
Falcon Cell Strainers, 40 µm | Fisher Scientific | #08-771-1 | |
Direct-zol RNA MiniPrep (50 µg) | Genesee Scientific | 11-331 | |
Trizol reagent | Invitrogen | 15596026 | |
DMEM/F-12, HEPES, no phenol red | ThermoFisher | 11039021 | |
Fetal Bovine Serum, Charcoal stripped | Sigma Aldrich | F6765-500ML | 2% |
Estratiol (E2) | Sigma Aldrich | E1024-1G | 10 nM |
Formaldehyde 16% in aqueous solution, EM Grade | VWR | 15710 | 4% |
Epredia Cassette 1 Slotted Tissue Cassettes | Fisher Scientific | 1000961 | |
Epredia Stainless-Steel Embedding Base Molds | Fisher Scientific | 64-010-15 | |
Ethanol, 200 proof (100%) | Fisher Scientific | 22-032-601 | |
Histoclear | Fisher Scientific | 50-899-90147 | |
Permount Mounting Medium | Fisher Scientific | 50-277-97 | |
Epredia Nylon Biopsy Bags | Fisher Scientific | 6774010 | |
HistoGel Specimen Processing Gel | VWR | 83009-992 | |
Hematoxylin solution Premium | VWR | 95057-844 | |
Eosin Y (yellowish) solution Premium | VWR | 95057-848 | |
TBS Buffer, 20X, pH 7.4 | GenDEPORT | T8054 | 1X |
TBST (10X), pH 7.4 | GenDEPORT | T8056 | 1X |
Citric acid | Sigma Aldrich | C0759-1KG | |
Sodium citrate tribasic dihydrate | Sigma Aldrich | S4641-500G | |
Tween20 | Fisher Scientific | BP337-500 | |
Bovine Serum Albumin (BSA) | Sigma Aldrich | A2153-100G | 3% |
DAPI Solution (1 mg/mL) | ThermoFisher | 62248 | 1:1000 dilution |
VECTASHIELD Antifade Mounting Medium | Vector Labs | H-1000-10 | |
Clear Nail Polish | Fisher Scientific | NC1849418 | |
Fisherbrand Superfrost Plus Microscope Slides | Fisher Scientific | 22037246 | |
VWR Micro Cover Glasses | VWR | 48393-106 | |
SuperScript VILO Master Mix | ThermoFisher | 11755050 | |
SYBR Green PCR Master Mix | ThermoFisher | 4364346 | |
Krt8 Antibody (TROMA-I) | DSHB | TROMA-I | 1:50 dilution |
Vimentin Antobody | Cell Signaling | 5741S | 1:200 dilution |
Donkey anti-Rat IgG (H+L) Highly Cross-Adsorbed Secondary Antibody, Alexa Fluor 594 |
ThermoFisher | A-21209 | 1:250 dilution |
Donkey anti-Rabbin IgG (H+L) Highly Cross-Adsorbed Secondary Antibody, Alexa Fluor 488 |
ThermoFisher | A-21206 | 1:250 dilution |
ZEISS Stemi 508 Stereo Microscope | ZEISS | ||
ZEISS Axio Vert.A1 Inverted Routine Microscope with digital camera | ZEISS | ||
Primer Sequence | Forward (5'-3') | Reverse (5'-3') | _ |
Lipocalin 2 (Lcn2) | GCAGGTGGTACGTTGTGGG | CTCTTGTAGCTCATAGATGGTGC | |
Lactoferrin (Ltf) | TGAGGCCCTTGGACTCTGT | ACCCACTTTTCTCATCTCGTTC | |
Progesterone (Pgr) | CCCACAGGAGTTTGTCAAGCTC | TAACTTCAGACATCATTTCCGG | |
Glyceraldehyde 3 phosphate dehydrogenase (Gapdh) | CAATGTGTCCGTCGTGGATCT | GCCTGCTTCACCACCTTCTT |