Summary

Erytrocytt sedimenteringshastighet: En fysikkdrevet karakterisering i en medisinsk sammenheng

Published: March 24, 2023
doi:

Summary

Senkningsreaksjon (SR) er en fysisk parameter, ofte brukt i rutinemessige helsekontroller og medisinsk diagnose. En teoretisk modell som gjør det mulig å trekke ut fysisk meningsfulle parametere fra hele sedimentasjonskurven, basert på moderne kolloidal kunnskap, er nylig utviklet. Her presenterer vi en protokoll for automatisk å samle inn ESR over tid, og trekke ut parametrene til denne siste modellen fra denne automatiserte datainnsamlingen. Disse raffinerte parametrene vil sannsynligvis også forbedre det medisinske vitnesbyrdet.

Abstract

Erytrocytt (eller røde blodlegemer) sedimenteringshastighet (ESR) er en fysisk avledet parameter av blod som ofte brukes i rutinemessige helsekontroller og medisinsk diagnose. For eksempel, i tilfelle betennelse, observeres en høyere ESR på grunn av den tilknyttede økningen i fibrinogen og andre plasmaproteiner. Det ble antatt at denne økningen skyldtes dannelsen av større aggregater av røde blodlegemer (RBC) forårsaket av økningen i fibrinogen. Faktisk er fibrinogen en agentfremmende aggregering av RBC og i Stokes-regimet antas å bli observert i blodstørre aggregater sediment raskere. Imidlertid krever alle modeller av ESR-målinger basert på denne hypotesen ytterligere spesifikke fysiske forutsetninger, som ikke kreves i noe annet system. Dessuten har moderne studier innen kolloidale suspensjoner fastslått at attraktive partikler danner perkolerende aggregater (dvs. aggregater så brede som beholderen). Sedimenteringen av disse kolloidene følger da en såkalt “kolloidal gelkollaps”. Nylig har det vist seg at RBC faktisk følger samme oppførsel. Denne hypotesen gjør det også mulig å effektivt og analytisk modellere sedimentasjonskurven til RBC, hvorfra robuste og fysisk meningsfulle beskrivelser kan trekkes ut. Dette manuskriptet beskriver hvordan man utfører en slik analyse, og diskuterer fordelene med denne tilnærmingen.

Introduction

Erytrocytt sedimenteringshastigheten (ESR) er et medisinsk in vitro klinisk verktøy, formelt introdusert i bevisbasert medisin i løpet av det tjuende århundre 1,2,3,4. Det brukes for tiden over hele verden som en ikke-spesifikk inflammatorisk test, eller for å overvåke utviklingen av noen spesifikke forhold 5,6,7,8. Dette skyldes hovedsakelig en økning i fibrinogenkonsentrasjonen, men også i andre plasmakomponenter som IgM 1,9,10,11. I henhold til gjeldende Westergren-standardprotokoll rapporteres ESR-verdier som måling av det cellefrie plasmalaget på et gitt tidspunkt (30 min eller 1 time) etter å ha forlatt et vertikalt rør med en typisk størrelse på 20 cm vertikalt i hvile12. Denne målemetoden har imidlertid blitt kritisert siden kvalitativt forskjellige stadier i sedimenteringsprosessen er rapportert, inkludert en forsinkelse før maksimal sedimenteringshastighet13 er nådd. Denne forsinkelsen varer mer enn 1 time i omtrent halvparten av friske prøver14. Hastigheten i denne fasen adlyder en annen skalering enn i den andre, raskere fasen av sedimentasjonen15. Ved å begrense avlesningen til gjennomsnittlig sedimenteringshastighet i løpet av den første timen, sammenlignes deretter en annen blanding av forskjellige blodegenskaper mellom forskjellige individer.

Videre er det nylig påvist at de vanlige teoretiske betraktningene bak denne protokollen var feilaktige16,17,18. Ved fysiologisk hematokrit (over ca. 25%) sedimenterer ikke røde blodlegemer (RBC) som separate aggregater, men snarere som et kontinuerlig, såkalt perkolerende, nettverk av RBC 17,18, som adlyder et annet sett med fysiske ligninger enn den vanligvis nevnte Stokes sedimentasjon 16,17. Det er vist at det å vurdere en fysisk beskrivelse basert på tidsoppløste målinger av sedimentasjonen (helkurven) var mer robust i noen nye medisinske sammenhenger19,20. Videre kan disse målingene brukes til å kaste lys over de fysiske mekanismene som endrer ESR i patologier der celleformer endres19,20. I tillegg kan en langsom ESR ha en nyttig medisinsk tolkning, som angitt i målingene av en kohort av nevroacanthocytose syndrom pasienter19,20. Denne artikkelen gjennomgår hvordan du praktisk implementerer måling av fysisk meningsfulle parametere, basert på hele ESR-kinetikken. Mer nøyaktig trekker metoden som presenteres her maksimal sedimenteringshastighet Um, hvis verdi kan korrigeres for å vurdere effekten av hematokriten til giveren16,17. Denne parameteren er mer nøyaktig og dermed mer pålitelig enn den tradisjonelle målingen16,17,19,20.

I tillegg, i noen grunnleggende undersøkelser, i stedet for å overvåke betennelsestilstanden til en gitt pasient, er det interessant å utelukke effekten av hematokrit på ESR 21,22,23, eller å undersøke RBCs rolle i en modifisert ESR 19,20,24,25 mellom ulike givere. Det kan være nyttig å sammenligne prøver som ikke er direkte fulle blodprøver fra pasienter. Derfor kan resuspendering av RBC med en kontrollert hematokrit i det autologe plasmaet, eller i en plasmasubstituent, brukes som det første trinnet i ESR-måling. For eksempel gir oppløsninger av Dextran 70 kDa med en konsentrasjon på 55 mg/ml i fosfatbufret saltvann (PBS) et sedimenteringsområde innenfor kontrollområdet for friske celler19. Dette manuskriptet viser også hvordan slike trinn bør gjennomføres, og at den presenterte analysen også er relevant i disse tilfellene.

Protocol

Blodprøvetaking og eksperimenter ble godkjent av “Ärztekammer des Saarlandes”, etikkvotum 51/18, og utført etter informert samtykke i henhold til Helsinkideklarasjonen. Standardmålinger bør utføres med etylendiamintetraeddiksyre (EDTA)-antikoagulert blod (standard EDTA-konsentrasjon på 1,6 mg/ml blod, europeisk norm NF EN ISO 6710), i Westergren-rør. Volumet som kreves for å fylle Westergren-røret, avhenger av produsenten (da nedre deler noen ganger inneholder et bredere reservoar); Volumet skal være ca. 1 ml …

Representative Results

Et eksempel på en korrekt innhentet bildesekvens er gitt som tilleggsfilm 1 (MovieS1.avi). En rekke karakteristiske tilpasninger av modellen er vist for ulike forhold i figur 2. Fibrinogenkonsentrasjonen ble bestemt ut fra fibrinogenkonsentrasjonen i plasma Fib0, forutsatt at serumet ikke har noe fibrinogen i det hele tatt. Derfor Fib = C Fib0, hvor C er plasmavolumfraksjonen i plasma-serumblandingen. I tidligere s…

Discussion

For at den automatiserte protokollen skal fungere effektivt, er det viktig å ha en klar bakgrunn og riktig belysning. En mørk bakgrunn kan forhindre eksistensen av en effektiv binariseringsterskel. For prøver med noe hemolyse, som vanligvis oppstår (øker) over tid, er det viktig å først verifisere at den valgte binariseringsterskelen er relevant for både det første og endelige bildet.

Når det gjelder binariseringsprosessen av bildet, er valget av avkastning og binariseringsterskel de…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av forskningsenheten FOR 2688 – Wa1336/12 fra den tyske forskningsstiftelsen og av Marie Skłodowska-Curie-tilskuddsavtalen nr. 860436-EVIDENCE. TJ og CW anerkjenner finansiering fra fransk tysk universitet (DFH / UFA). AD anerkjenner finansiering av Young Investigator Grant av Saarland University.

Materials

Anticoagulant (EDTA or Heparin) tube (for blood sample) SARSTEDT 267001 or 265 Anticoagulated blood sample to characterize
Camera EOS M50 Canon Kit EF-M18-150 IS STM Any camera should work, provided that sector alimentation, connection to computer for automated shooting and adapted objective are available
Centrifuge HERMLE 302.00 V03 – Z 36 HK Requirements: at least 3000 x g ofr 7 min.
Micro-centrifuge MLW TH21 or any other way to determine the hematocrit
Micro-hematocrit capilaries Fisher scientific 11884040 or other capillaries/containers for hematocrit determination
Phosphate Buffered Saline (PBS) ThermoFisher 10010023 1x PBS, pH 7.4, 298 Osm
Pipettes (e.g. positive displacement pipette) Gilson FD10006 Pipette required to manipulate blood and/or packed cells.Other models are of course suitable, but be careful to treat blood and pakced cells as highly viscous fluids.
Wax sealing plate Hirschmann 9120101 Sealing wax for the micro-hematocrit capillaries
Westergren tubes Praxindo A9244560 Any other standard Wetsergren tube should work too
White background with illumination / / White sheet(s) of paper behind the samples, with usual room light is perfcetly sufficient.

Riferimenti

  1. Bedell, S. E., Bush, B. T. Erythrocyte sedimentation rate. From folklore to facts. The American Journal of Medicine. 78, 1001-1009 (1985).
  2. Grzybowski, A., Sak, J. Edmund Biernacki (1866-1911): Discoverer of the erythrocyte sedimentation rate. On the 100th anniversary of his death. Clinics in Dermatology. 29 (6), 697-703 (2011).
  3. Kushner, I., Mackiewicz, A. . The Acute Phase Response: An Overview. Acute Phase Proteins. , (1993).
  4. Tishkowski, K., Gupta, V. Erythrocyte Sedimentation Rate. StatPearls Publishing. , (2022).
  5. Menees, S. B., Powell, C., Kurlander, J., Goel, A., Chey, W. D. A meta-analysis of the utility of C-reactive protein, erythrocyte sedimentation rate, fecal calprotectin, and fecal lactoferrin to exclude inflammatory bowel disease in adults with IBS. The Americal Journal of Gastroenterology. 110 (3), 444-454 (2015).
  6. Brigden, M. L. Clinical utility of the erythrocyte sedimentation rate. Americal Family Physician. 60 (5), 1443-1450 (1999).
  7. Liu, S., et al. Preliminary case-control study to evaluate diagnostic values of C-reactive protein and erythrocyte sedimentation rate in differentiating active Crohn’s disease from intestinal lymphoma, intestinal tuberculosis and Behcet’s syndrome. The American Journal of the Medical Sciences. 346 (6), 467-472 (2013).
  8. Greidanus, N. V., et al. Use of erythrocyte sedimentation rate and C-reactive protein level to diagnose infection before revision total knee arthroplasty: A prospective evaluation. The Journal of Bone and Joint Surgery. 89 (7), 1409-1416 (2007).
  9. Flormann, D., Kuder, E., Lipp, P., Wagner, C., Kaestner, L. Is there a role of C-reactive protein in red blood cell aggregation. International Journal of Laboratory Hematology. 37 (4), 474-482 (2015).
  10. Brust, M., et al. The plasma protein fibrinogen stabilizes clusters of red blood cells in microcapillary flows. Scientific Reports. 4, 4348 (2014).
  11. Gray, S. J., Mitchell, E. B., Dick, G. F. Effect of purified protein fractions on sedimentation rate of erythrocytes. Proceedings of the Society for Experimental Biology and Medicine. 51 (3), 403-404 (1942).
  12. Kratz, A., et al. ICSH recommendations for modified and alternate methods measuring the erythrocyte sedimentation rate. International Journal of Laboratory Hematology. 39 (5), 448-457 (2017).
  13. Hung, W. T., Collings, A. F., Low, J. Erythrocyte sedimentation rate studies in whole human blood. Physics in Medicine and Biology. 39 (11), 1855-1873 (1994).
  14. Woodland, N. B., Cordatos, K., Hung, W. T., Reuben, A., Holley, L. Erythrocyte sedimentation in columns and the significance of ESR. Biorheology. 33 (6), 477-488 (1996).
  15. Holley, L., Woodland, N., Hung, W. T., Cordatos, K., Reuben, A. Influence of fibrinogen and haematocrit on erythrocyte sedimentation kinetics. Biorheology. 36 (4), 287-297 (1999).
  16. Dasanna, A. K., et al. Erythrocyte sedimentation: Effect of aggregation energy on gel structure during collapse. Physical Review. E. 105 (2-1), 024610 (2022).
  17. Darras, A., et al. Erythrocyte sedimentation: collapse of a high-volume-fraction soft-particle gel. Physical Review Letters. 128 (8), 088101 (2022).
  18. Darras, A., et al. Imaging erythrocyte sedimentation in whole blood. Frontiers in Physiology. 12, 729191 (2022).
  19. Darras, A., et al. Acanthocyte sedimentation rate as a diagnostic biomarker for neuroacanthocytosis syndromes: Experimental evidence and physical justification. Cells. 10 (4), 788 (2021).
  20. Rabe, A., et al. The erythrocyte sedimentation rate and its relation to cell shape and rigidity of red blood cells from chorea-acanthocytosis patients in an off-label treatment with dasatinib. Biomolecules. 11 (5), 727 (2021).
  21. Giavarina, D., Capuzzo, S., Pizzolato, U., Soffiati, G. Length of erythrocyte sedimentation rate (ESR) adjusted for the hematocrit: reference values for the TEST 1 method. Clinical Laboratory. 52 (5-6), 241-245 (2006).
  22. Bull, B. S. Is a standard ESR possible. Laboratory Medicine. 6 (11), 31-39 (1975).
  23. Bull, B. S., Brecher, G. An evaluation of the relative merits of the Wintrobe and Westergren sedimentation methods, including hematocrit correction. American Journal of Clinical Pathology. 62 (4), 502-510 (1974).
  24. Reinhart, W. H., Singh, A., Straub, P. W. Red blood cell aggregation and sedimentation: the role of the cell shape. British Journal of Haematology. 73 (4), 551-556 (1989).
  25. Jan, K., Usami, S., Smith, J. A. Influence of oxygen tension and hematocrit reading on ESRs of sickle cells: Role of RBC aggregation. Archives of Internal Medicine. 141 (13), 1815-1818 (1981).
  26. Issaq, H. J., Xiao, Z., Veenstra, T. D. Serum and plasma proteomics. Chemical Reviews. 107 (8), 3601-3620 (2007).
  27. Yu, Z., et al. Differences between human plasma and serum metabolite profiles. PLoS One. 6 (7), 21230 (2011).
  28. . Proper Pipetting Techniques – DE Available from: https://www.thermofisher.com/de/de/home/life-science/lab-plasticware-supplies/lab-plasticware-supplies-learning-center/lab-plasticware-supplies-resource-library/fundamentals-of-pipetting/proper-pipetting-techniques.html (2023)
  29. Otsu, N. A threshold selection method from gray-level histograms. IEEE Transaction on Systems, Man, and Cybernetics. 9 (1), 62-66 (1979).
  30. Solomon, C., et al. A comparison of fibrinogen measurement methods with fibrin clot elasticity assessed by thromboelastometry, before and after administration of fibrinogen concentrate in cardiac surgery patients. Transfusion. 51 (8), 1695-1706 (2011).
  31. Norouzi, N., Bhakta, H. C., Grover, W. H. Sorting cells by their density. PLoS One. 12 (7), 0180520 (2017).
  32. Trudnowski, R. J., Rico, R. C. Specific gravity of blood and plasma at 4 and 37 degrees C. Clinical Chemistry. 20 (5), 615-616 (1974).
  33. Késmárky, G., Kenyeres, P., Rábai, M., Tóth, K. Plasma viscosity: A forgotten variable. Clinical Hemorheology and Microcirculation. 39 (1-4), 243-246 (2008).
  34. Teece, L. J., et al. Gels under stress: The origins of delayed collapse. Colloids and Surfaces A: Physicochemical and Engineering Aspects. 458, 126-133 (2014).
  35. Lindström, S. B., Kodger, T. E., Sprakel, J., Weitz, D. A. Structures, stresses, and fluctuations in the delayed failure of colloidal gels. Soft Matter. 8 (13), 3657-3664 (2012).
  36. Bartlett, P., Teece, L. J., Faers, M. A. Sudden collapse of a colloidal gel. Physical Review. E, Statistical, Nonlinear, and Soft Matter Physics. 85, 021404 (2012).
check_url/it/64502?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Darras, A., John, T., Wagner, C., Kaestner, L. Erythrocyte Sedimentation Rate: A Physics-Driven Characterization in a Medical Context. J. Vis. Exp. (193), e64502, doi:10.3791/64502 (2023).

View Video