Summary

Automatisering av mikronukleusanalysen ved hjelp av bildestrømningscytometri og kunstig intelligens

Published: January 27, 2023
doi:

Summary

Mikronukleusanalysen (MN) er en veletablert test for å kvantifisere DNA-skade. Å score analysen ved hjelp av konvensjonelle teknikker som manuell mikroskopi eller funksjonsbasert bildeanalyse er imidlertid arbeidskrevende og utfordrende. Denne artikkelen beskriver metodikken for å utvikle en kunstig intelligensmodell for å skåre MN-analysen ved hjelp av avbildningsflowcytometridata.

Abstract

Mikronukleusanalysen (MN) brukes over hele verden av reguleringsorganer for å evaluere kjemikalier for genetisk toksisitet. Analysen kan utføres på to måter: ved å score MN i en gang delt, cytokinesisblokkerte binukleerte celler eller fullt delte mononukleerte celler. Historisk sett har lysmikroskopi vært gullstandardmetoden for å score analysen, men den er arbeidskrevende og subjektiv. Flowcytometri har blitt brukt de siste årene for å skåre analysen, men er begrenset av manglende evne til visuelt å bekrefte viktige aspekter ved cellulære bilder. Imaging flow cytometry (IFC) kombinerer bildeopptak med høy gjennomstrømning og automatisert bildeanalyse, og har blitt brukt til raskt å skaffe bilder av og score alle viktige hendelser i MN-analysen. Nylig har det blitt demonstrert at kunstig intelligens (AI) metoder basert på konvolusjonelle nevrale nettverk kan brukes til å score MN-analysedata innhentet av IFC. Denne rapporten beskriver alle trinnene for å bruke AI-programvare til å opprette en dyplæringsmodell for å score alle viktige hendelser og bruke denne modellen til å automatisk score tilleggsdata. Resultatene fra AI-dyplæringsmodellen kan sammenlignes godt med manuell mikroskopi, og muliggjør derfor helautomatisk skåring av MN-analysen ved å kombinere IFC og AI.

Introduction

Mikronukleusanalysen (MN) er grunnleggende i genetisk toksikologi for å evaluere DNA-skade i utviklingen av kosmetikk, legemidler og kjemikalier til menneskelig bruk 1,2,3,4. Mikrokjerner er dannet av hele kromosomer eller kromosomfragmenter som ikke innlemmes i kjernen etter deling og kondenserer til små, sirkulære legemer atskilt fra kjernen. Dermed kan MN brukes som et endepunkt for å kvantifisere DNA-skade i gentoksisitetstesting1.

Den foretrukne metoden for å kvantifisere MN er innenfor en gang delte binucleated celler (BNCs) ved å blokkere deling ved hjelp av Cytochalasin-B (Cyt-B). I denne versjonen av analysen vurderes cytotoksisitet også ved å skåre mononukleerte (MONO) og polynukleerte (POLY) celler. Analysen kan også utføres ved å score MN i ikke-blokkerte MONO-celler, som er raskere og lettere å score, med cytotoksisitet som vurderes ved bruk av celletall før og etter eksponering for å vurdere spredning 5,6.

Fysisk skåring av analysen har historisk blitt utført ved manuell mikroskopi, da dette muliggjør visuell bekreftelse av alle viktige hendelser. Manuell mikroskopi er imidlertid utfordrende og subjektivt1. Dermed har automatiserte teknikker blitt utviklet, inkludert mikroskoplysbildeskanning og flowcytometri, hver med sine egne fordeler og begrensninger. Mens lysbildeskanningsmetoder gjør det mulig å visualisere viktige hendelser, må lysbilder opprettes med optimal celletetthet, noe som kan være vanskelig å oppnå. I tillegg mangler denne teknikken ofte cytoplasmatisk visualisering, noe som kan kompromittere poengsummen til MONO- og POLY-celler 7,8. Mens flowcytometri gir høy gjennomstrømningsdatafangst, må cellene lyseres, og dermed ikke tillate bruk av Cyt-B-formen av analysen. I tillegg, som en ikke-avbildningsteknikk, gir konvensjonell flowcytometri ikke visuell validering av viktige hendelser 9,10.

Derfor har bildeblødningscytometri (IFC) blitt undersøkt for å utføre MN-analysen. ImageStreamX Mk II kombinerer hastigheten og den statistiske robustheten til konvensjonell flowcytometri med de høyoppløselige bildeegenskapene til mikroskopi i ett enkelt system11. Det har vist seg at ved å bruke IFC kan høyoppløselige bilder av alle viktige hendelser tas og automatisk scores ved hjelp av funksjonsbaserte12,13 eller kunstig intelligens (AI) teknikker14,15. Ved å bruke IFC til å utføre MN-analysen, er automatisk scoring av mange flere celler sammenlignet med mikroskopi på kortere tid oppnåelig.

Dette arbeidet avviker fra en tidligere beskrevet arbeidsflyt for bildeanalyse16 og diskuterer alle trinnene som kreves for å utvikle og trene en Random Forest (RF) og/eller konvolusjonell nevral nettverksmodell (CNN) ved hjelp av Amnis AI-programvaren (heretter referert til som “AI-programvare”). Alle nødvendige trinn er beskrevet, inkludert utfylling av sannhetsdata ved hjelp av AI-assisterte merkingsverktøy, tolkning av modellopplæringsresultater og anvendelse av modellen for å klassifisere tilleggsdata, som tillater beregning av gentoksisitet og cytotoksisitet15.

Protocol

1. Datainnsamling ved hjelp av avbildningsflowcytometri MERK: Se Rodrigues et al.16 med følgende modifikasjoner, og merk at oppkjøpsregionene som bruker IFC kanskje må endres for optimal bildeopptak: For ikke-Cyt-B-metoden, utfør en celletelling ved hjelp av en kommersielt tilgjengelig celleteller i henhold til produsentens instruksjoner (se materialfortegnelse) på hver kultur umiddelbart før dyrkning og umiddelbart ette…

Representative Results

Figur 1 viser arbeidsflyten for bruk av AI-programvaren til å lage en modell for MN-analysen. Brukeren laster de ønskede .daf-filene inn i AI-programvaren, og tilordner deretter objekter til enhetssannhetsmodellklassene ved hjelp av AI-assistert klynge (figur 2) og forutsi (figur 3) merkingsalgoritmer. Når alle bakkesannhetsmodellklasser er fylt med tilstrekkelige objekter, kan modellen trenes ved hjelp av RF- eller CNN-algoritme…

Discussion

Arbeidet som presenteres her beskriver bruken av dype læringsalgoritmer for å automatisere scoringen av MN-analysen. Flere nyere publikasjoner har vist at intuitive, interaktive verktøy gjør det mulig å lage dype læringsmodeller for å analysere bildedata uten behov for dyptgående beregningskunnskap18,19. Protokollen beskrevet i dette arbeidet ved hjelp av en brukergrensesnittdrevet programvarepakke er designet for å fungere godt med svært store datafile…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ingen.

Materials

15 mL centrifuge tube Falcon 352096
Cleanser – Coulter Clenz  Beckman Coulter 8546931 Fill container with 200 mL of Cleanser.  https://www.beckmancoulter.com/wsrportal/page/itemDetails?itemNumber=8546931#2/10//0/25/
1/0/asc/2/8546931///0/1//0/
Colchicine MilliporeSigma 64-86-8
Corning bottle-top vacuum filter  MilliporeSigma CLS430769 0.22 µm filter, 500 mL bottle
Cytochalasin B MilliporeSigma 14930-96-2 5 mg bottle
Debubbler – 70% Isopropanol MilliporeSigma 1.3704 Fill container with 200 mL of Debubbler.  http://www.emdmillipore.com/US/en/product/2-Propanol-70%25-%28V%2FV%29-0.1-%C2%B5m-filtred,MDA_CHEM-137040?ReferrerURL=https%3A%2F%2Fwww.google.com%2F
Dimethyl Sulfoxide (DMSO) MilliporeSigma 67-68-5
Dulbecco's Phosphate Buffered Saline 1X EMD Millipore BSS-1006-B PBS Ca++MG++ Free 
Fetal Bovine Serum HyClone SH30071.03
Formaldehyde, 10%, methanol free, Ultra Pure Polysciences, Inc. 04018 This is what is used for the 4% and 1% Formalin. CAUTION: Formalin/Formaldehyde toxic by inhalation and if swallowed.  Irritating to the eyes, respiratory systems and skin.  May cause sensitization by inhalation or skin contact. Risk of serious damage to eyes.  Potential cancer hazard.  http://www.polysciences.com/default/catalog-products/life-sciences/histology-microscopy/fixatives/formaldehydes/formaldehyde-10-methanol-free-pure/
Guava Muse Cell Analyzer Luminex 0500-3115 A standard configuration Guava Muse Cell Analyzer was used.
Hoechst 33342 Thermo Fisher H3570 10 mg/mL solution
Mannitol MilliporeSigma 69-65-8
MEM Non-Essential Amino Acids 100X HyClone SH30238.01
MIFC – ImageStreamX Mark II Luminex, a DiaSorin company 100220 A 2 camera ImageStreamX Mark II eqiped with the 405 nm, 488 nm, and 642 nm lasers was used.
MIFC analysis software – IDEAS Luminex, a DiaSorin company 100220 "Image analysis sofware"
The companion software to the MIFC (ImageStreamX MKII)
MIFC software – INSPIRE Luminex, a DiaSorin company 100220 "Image acquisition software"
This is the software that runs the MIFC (ImageStreamX MKII)
Amnis AI software Luminex, a DiaSorin company 100221 "AI software"
This is the software that permits the creation of artificial intelligence models to analyze data
Mitomycin C MilliporeSigma 50-07-7
NEAA Mixture 100x Lonza BioWhittaker 13-114E
Penicllin/Streptomycin/Glutamine solution 100X Gibco 15070063
Potassium Chloride (KCl) MilliporeSigma P9541
Rinse – Ultrapure water or deionized water NA NA Use any ultrapure water or deionized water.  Fill container with 900 mL of Rinse.
RNase MilliporeSigma 9001-99-4
RPMI-1640 Medium 1x HyClone SH30027.01
Sheath – PBS MilliporeSigma BSS-1006-B This is the same as Dulbecco's Phosphate Buffered Saline 1x  Ca++MG++ free.  Fill container with 900 mL of Sheath.
Sterile water HyClone SH30529.01
Sterilizer – 0.4%–0.7% Hypochlorite VWR JT9416-1 This is assentually 10% Clorox bleach that can be made by deluting Clorox bleach with water.  Fill container with 200 mL of Sterilzer.
T25 flask Falcon 353109
T75 flask Falcon 353136
TK6 cells MilliporeSigma 95111735

Riferimenti

  1. Fenech, M., et al. HUMN project initiative and review of validation, quality control and prospects for further development of automated micronucleus assays using image cytometry systems. International Journal of Hygiene and Environmental Health. 216 (5), 541-552 (2013).
  2. OECD. Test No. 487: In Vitro Mammalian Cell Micronucleus Test. Section 4. OECD Guidelines for the Testing of Chemicals. , (2016).
  3. Fenech, M. The in vitro micronucleus technique. Mutation Research/Fundamental and Molecular Mechanisms of Mutagenesis. 455 (1), 81-95 (2000).
  4. Bonassi, S., et al. An increased micronucleus frequency in peripheral blood lymphocytes predicts the risk of cancer in humans. Carcinogenesis. 28 (3), 625-631 (2007).
  5. Fenech, M. Cytokinesis-block micronucleus cytome assay. Nature Protocols. 2 (5), 1084-1104 (2007).
  6. Fenech, M. Commentary on the SFTG international collaborative study on the in vitro micronucleus test: To Cyt-B or not to Cyt-B. Mutation Research/Fundamental and Molecular Mechanisms of Mutagenesis. 607 (1), 9-12 (2006).
  7. Seager, A. L., et al. Recommendations, evaluation and validation of a semi-automated, fluorescent-based scoring protocol for micronucleus testing in human cells. Mutagenesis. 29 (3), 155-164 (2014).
  8. Rossnerova, A., Spatova, M., Schunck, C., Sram, R. J. Automated scoring of lymphocyte micronuclei by the MetaSystems Metafer image cytometry system and its application in studies of human mutagen sensitivity and biodosimetry of genotoxin exposure. Mutagenesis. 26 (1), 169-175 (2011).
  9. Bryce, S. M., Bemis, J. C., Avlasevich, S. L., Dertinger, S. D. In vitro micronucleus assay scored by flow cytometry provides a comprehensive evaluation of cytogenetic damage and cytotoxicity. Mutation Research/Genetic Toxicology and Environmental Mutagenesis. 630 (1), 78-91 (2007).
  10. Avlasevich, S. L., Bryce, S. M., Cairns, S. E., Dertinger, S. D. In vitro micronucleus scoring by flow cytometry: Differential staining of micronuclei versus apoptotic and necrotic chromatin enhances assay reliability. Environmental and Molecular Mutagenesis. 47 (1), 56-66 (2006).
  11. Basiji, D. A. Principles of Amnis imaging flow cytometry. Methods in Molecular Biology. 1389, 13-21 (2016).
  12. Rodrigues, M. A. Automation of the in vitro micronucleus assay using the Imagestream® imaging flow cytometer. Cytometry Part A. 93 (7), 706-726 (2018).
  13. Verma, J. R., et al. Investigating FlowSight® imaging flow cytometry as a platform to assess chemically induced micronuclei using human lymphoblastoid cells in vitro. Mutagenesis. 33 (4), 283-289 (2018).
  14. Wills, J. W., et al. Inter-laboratory automation of the in vitro micronucleus assay using imaging flow cytometry and deep learning. Archives of Toxicology. 95 (9), 3101-3115 (2021).
  15. Rodrigues, M. A., et al. The in vitro micronucleus assay using imaging flow cytometry and deep learning. Npj Systems Biology and Applications. 7 (1), 20 (2021).
  16. Rodrigues, M. A. An automated method to perform the in vitro micronucleus assay using multispectral imaging flow cytometry. Journal of Visualized Experiments. (147), e59324 (2019).
  17. Lovell, D. P., et al. Analysis of negative historical control group data from the in vitro micronucleus assay using TK6 cells. Mutation Research/Genetic Toxicology and Environmental Mutagenesis. 825, 40-50 (2018).
  18. Berg, S., et al. ilastik: interactive machine learning for (bio)image analysis. Nature Methods. 16 (12), 1226-1232 (2019).
  19. Hennig, H., et al. An open-source solution for advanced imaging flow cytometry data analysis using machine learning. Methods. 112, 201-210 (2017).
check_url/it/64549?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Rodrigues, M. A., Gracia García Mendoza, M., Kong, R., Sutton, A., Pugsley, H. R., Li, Y., Hall, B. E., Fogg, D., Ohl, L., Venkatachalam, V. Automation of the Micronucleus Assay Using Imaging Flow Cytometry and Artificial Intelligence. J. Vis. Exp. (191), e64549, doi:10.3791/64549 (2023).

View Video