Summary

Ex vivo Udvidelse og genetisk manipulation af hæmatopoietiske stamceller fra mus i polyvinylalkoholbaserede kulturer

Published: February 10, 2023
doi:

Summary

Præsenteret her er en protokol til initiering, vedligeholdelse og analyse af musehæmatopoietiske stamcellekulturer ved hjælp af ex vivo polyvinylalkoholbaseret ekspansion samt metoder til genetisk manipulation af dem ved lentiviral transduktion og elektroporation.

Abstract

Selvfornyende multipotente hæmatopoietiske stamceller (HSC’er) er en vigtig celletype på grund af deres evne til at understøtte hæmatopoiesis gennem hele livet og rekonstituere hele blodsystemet efter transplantation. HSC’er anvendes klinisk i stamcelletransplantationsterapier, som repræsenterer helbredende behandling for en række blodsygdomme. Der er stor interesse for både at forstå de mekanismer, der regulerer HSC-aktivitet og hæmatopoiese, og udvikle nye HSC-baserede terapier. Imidlertid har den stabile kultur og udvidelse af HSC’er ex vivo været en stor barriere for at studere disse stamceller i et medgørligt ex vivo-system. Vi har for nylig udviklet et polyvinylalkoholbaseret dyrkningssystem, der kan understøtte den langsigtede og storstilede udvidelse af transplanterelige HSC’er til mus og metoder til genetisk redigering af dem. Denne protokol beskriver metoder til dyrkning og genetisk manipulation af HSC’er til mus via elektroporation og lentiviral transduktion. Denne protokol forventes at være nyttig for en bred vifte af eksperimentelle hæmatologer, der er interesseret i HSC-biologi og hæmatopoiesis.

Introduction

Det hæmatopoietiske system understøtter en række vigtige processer hos pattedyr, fra iltforsyning til bekæmpelse af patogener, gennem specialiserede blod- og immuncelletyper. Kontinuerlig blodproduktion (hæmatopoiese) er nødvendig for at understøtte blodsystemets homeostase, som opretholdes af hæmatopoietiske stam- og stamceller (HSPC’er)1. Den mest primitive hæmatopoietiske celle er den hæmatopoietiske stamcelle (HSC), som har unikke kapaciteter til selvfornyelse og multilineagedifferentiering 2,3. Dette er en sjælden cellepopulation, der hovedsageligt findes i den voksne knoglemarv4, hvor de forekommer med en frekvens på kun ca. en hver 30.000 celler. HSC’er menes at understøtte livslang hæmatopoiesis og hjælpe med at genoprette hæmatopoiesis efter hæmatologisk stress. Denne kapacitet gør det også muligt for HSC’er stabilt at rekonstituere hele det hæmatopoietiske system efter transplantation til en bestrålet recipient5. Dette repræsenterer den funktionelle definition af en HSC og danner også det videnskabelige grundlag for HSC-transplantationsterapi, en helbredende behandling af en række blod- og immunsygdomme6. Af disse grunde er HSC’er et vigtigt fokus for eksperimentel hæmatologi.

På trods af et stort forskningsfokus har det fortsat været udfordrende at stabilt udvide HSC’er ex vivo7. Vi har for nylig udviklet det første langsigtede ex vivo-ekspansionskultursystem til HSC’er8 til mus. Tilgangen kan udvide transplanterelige HSC’er med 234-899 gange over en 4 ugers kultur. I sammenligning med alternative tilgange var den største ændring i protokollen fjernelsen af serumalbumin og dets erstatning med en syntetisk polymer. Polyvinylalkohol (PVA) blev identificeret som en optimal polymer til HSC-kulturer8 hos mus, som nu også er blevet brugt til dyrkning af andre hæmatopoietiske celletyper9. Imidlertid er en anden polymer kaldet Soluplus (en polyvinylcaprolactam-acetat-polyethylenglycolgraft-copolymer) også for nylig blevet identificeret, hvilket ser ud til at forbedre klonal HSC-ekspansion10. Før anvendelse af polymerer blev serumalbumin i form af føtalt bovint serum, bovin serumalbumin fraktion V eller rekombinant serumalbumin anvendt, men disse havde begrænset støtte til HSC-ekspansion og understøttede kun kortvarig (~ 1 uge) ex vivo-kultur 7. Det skal dog bemærkes, at HSC-kulturprotokoller, der bevarer HSC’er i hviletilstand, kan understøtte en længere ex vivo-kulturtid11,12.

I sammenligning med andre dyrkningsmetoder er en stor fordel ved PVA-baserede kulturer antallet af celler, der kan genereres, og hvor lang tid protokollen kan bruges til at spore HSC’er ex vivo. Dette overvinder flere barrierer inden for eksperimentel hæmatologi, såsom det lave antal HSC’er, der kan isoleres pr. mus (kun et par tusinde) og vanskeligheden ved at spore HSC’er over tid in vivo. Det er dog vigtigt at huske, at disse kulturer stimulerer HSC-spredning, mens in vivo HSC-puljen overvejende er hvilende ved en stabil tilstand13. Selvom kulturerne er selektive for HSC’er, akkumuleres yderligere celletyper med kulturerne over tid, og transplanterelige HSC’er repræsenterer kun ca. en ud af 34 celler efter 1 måned. Myeloide hæmatopoietiske stamceller synes at være den største forurenende celletype i disse HSC-kulturer8. Ikke desto mindre kan vi bruge disse kulturer til at berige HSC’er fra heterogene cellepopulationer (f.eks. c-Kit+ knoglemarv HSPC’er14). Det understøtter også transduktion eller elektroporation af HSC’er til genetisk manipulation14,15,16. For at hjælpe med at identificere HSC’er fra den heterogene dyrkede HSPC-population er CD201 (EPCR) for nylig blevet identificeret som en nyttig ex vivo HSC-markør10,17,18, med transplanterelige HSC’er begrænset til CD201+CD150+c-Kit+Sca1+Lineage-fraktionen.

Denne protokol beskriver metoder til at initiere, vedligeholde og vurdere PVA-baserede HSC-ekspansionskulturer med mus samt protokoller til genetisk manipulation inden for disse kulturer ved hjælp af elektroporation eller lentiviral vektortransduktion. Disse metoder forventes at være nyttige for en række eksperimentelle hæmatologer.

Protocol

Alle dyreforsøg, herunder avl og eutanasi, skal udføres inden for institutionelle og nationale retningslinjer. De nedenfor beskrevne forsøg blev godkendt af det britiske indenrigsministerium. Se materialetabellen for en liste over alle materialer, reagenser og udstyr, der anvendes i denne protokol. 1. Klargøring af stamopløsninger PVA-lageropløsningTag 50 ml vand af vævskulturkvalitet i en lille glasflaske (egnet til autoklavering). Va…

Representative Results

Til FACS-oprensning af HSC’er forventer vi, at inden for den c-Kit-berigede knoglemarv er ~0,2% af cellerne CD150+CD34-c-Kit+Sca1+Lineage-populationen for unge (8-12 uger gamle) C57BL/6-mus (figur 1). Det er dog sandsynligt, at transgene mus eller mus i forskellige aldre udviser forskellige HSC-frekvenser. Efter 4 ugers kultur forventer vi, at CD201+CD150+c-Kit+Sca1+Lineage-fraktionen</sup…

Discussion

Vi håber, at denne protokol giver en nyttig tilgang til at undersøge HSC-biologi, hæmatopoiesis og hæmatologi mere generelt. Siden den indledende udvikling af den PVA-baserede dyrkningsmetode til FACS-rensede HSC’er8 er metoden blevet udvidet. For eksempel har metoden vist sig at virke med c-Kit beriget med knoglemarv og med negative overfladeladede plader14. Dens kompatibilitet med transduktion og elektroporation er også blevet påvist14,15<sup…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker WIMM Flow Cytometry Core for flowcytometriadgang og WIMM Virus Screening Core for lentiviral vektorgenerering. Dette arbejde blev finansieret af Kay Kendall Leukæmi Fund og UK Medical Research Council.

Materials

Equipment
Dissection kit Fisher Scientific 12764416
Hemocytometer Appleton Woods Ltd HC002
P3 Primary Cell 4D-Nucleofector X Kit Lonza  V4XP-3024
Pestle and mortar Scientific Laboratory Supplies Limited X18000
QuadroMACS separator Miltenyi Biotec 130-090-976
Materials
5 mL syringe VWR International Ltd 720-2519
19 G needle VWR International Ltd 613-5394
50 μm cell strainer Sysmex 04-004-2317
70 μm cell strainer Corning 431751
Kimtech wipes VWR International Ltd 115-2075
LS MACS column Miltenyi Biotec 130-042-401
Reagents
Alt-R S.p. Cas9 Nuclease V3, 100 μg IDT  1081058
Animal free recombinant mouse stem cell factor  Peprotech AF-250-03
Animal free recombinant mouse thrombopoietin Peprotech AF-315-14
Anti-mouse CD117 APC (clone: 2B8) ThermoFisher 17-1171-83
Anti-mouse CD117 BV421 (clone: 2B8) Biolegend 105828
Anti-mouse CD127 APC/Cy7 (clone: A7R34) Biolegend 135040
Anti-mouse CD127 biotin (clone: A7R34) Biolegend 135006
Anti-mouse CD150 PE/Cy7 (clone: TC15-12F12.2) Biolegend 115914
Anti-mouse CD201 APC (clone: eBio1560) ThermoFisher 17-2012-82
Anti-mouse CD34 FITC (clone: RAM34) ThermoFisher 11-0341-85
Anti-mouse CD4 APC/Cy7 (clone: RM4-5) Biolegend 100526
Anti-mouse CD4 biotin (clone: RM4-5) Biolegend 100508
Anti-mouse CD45R APC/Cy7 (clone: RA3-6B2) Biolegend 103224
Anti-mouse CD45R biotin (clone: RA3-6B2) Biolegend 103204
Anti-mouse CD48 BV421 (clone: HM48-1) Biolegend 103428
Anti-mouse CD8 biotin (clone: 53-6.7) Biolegend 100704
Anti-mouse CD8a APC/Cy7 (clone: 53-6.7) Biolegend 100714
Anti-mouse Ly6G/Ly6C APC/Cy7 (clone: RB6-8C5) Biolegend 108424
Anti-mouse Ly6G/Ly6C biotin (clone: RB6-8C5) Biolegend 108404
Anti-mouse Sca1 PE (clone: D7) Biolegend 108108
Anti-mouse Ter119 APC/Cy7 (clone: TER-119) Biolegend 116223
Anti-mouse Ter119 biotin (clone: TER-119) Biolegend 116204
CellBIND plates, 24-well Corning 3337 negative surface charged
CellBIND plates, 96-well  Corning 3330 negative surface charged
Custom synthetic sgRNA  Synthego, Sigma Aldrich, IDT Custom order
Fetal bovine serum Merck Life Science UK Limited F7524-50ML
Fibronectin Coated plates, 96-well BD Biosciences 354409
Ham's F-12 Nutrient Mix Gibco 11765054
Insulin-Transferrin-Selenium-X (100x) Gibco 51500.056
Phosphate buffered saline Alfa Aesar J61196.AP
Polyvinyl alcohol Sigma Aldrich P8136
Propidium Iodide Enzo Life Sciences (UK) Ltd EXB-0018
Streptavidin APC/Cy7 Biolegend 405208
Türks’ solution Sigma Aldrich 109277
Virkon Mettler-Toledo Ltd 95015662

Riferimenti

  1. Laurenti, E., Göttgens, B. From haematopoietic stem cells to complex differentiation landscapes. Nature. 553 (7689), 418-426 (2018).
  2. Eaves, C. J. Hematopoietic stem cells: concepts, definitions, and the new reality. Blood. 125 (17), 2605-2613 (2015).
  3. Wilkinson, A. C., Igarashi, K. J., Nakauchi, H. Haematopoietic stem cell self-renewal in vivo and ex vivo. Nature Reviews Genetics. 21 (9), 541-554 (2020).
  4. Crane, G. M., Jeffery, E., Morrison, S. J. Adult haematopoietic stem cell niches. Nature Reviews Immunology. 17 (9), 573-590 (2017).
  5. Osawa, M., Hanada, K., Hamada, H., Nakauchi, H. Long-term lymphohematopoietic reconstitution by a single CD34-low/negative hematopoietic stem cell. Science. 273 (5272), 242-245 (1996).
  6. Granot, N., Storb, R. History of hematopoietic cell transplantation: challenges and progress. Haematologica. 105 (12), 2716-2729 (2020).
  7. Wilkinson, A. C., Nakauchi, H. Stabilizing hematopoietic stem cells in vitro. Current Opinion in Genetics & Development. 64, 1-5 (2020).
  8. Wilkinson, A. C., et al. Long-term ex vivo haematopoietic-stem-cell expansion allows nonconditioned transplantation. Nature. 571 (7763), 117-121 (2019).
  9. Nishimura, T., et al. Use of polyvinyl alcohol for chimeric antigen receptor T-cell expansion. Experimental Hematology. 80, 16-20 (2019).
  10. Becker, H. J., et al. A single cell cloning platform for gene edited functional murine hematopoietic stem cells. bioRxiv. , (2022).
  11. Kobayashi, H., et al. Environmental optimization enables maintenance of quiescent hematopoietic stem cells ex vivo. Cell Reports. 28 (1), 145-158 (2019).
  12. Kobayashi, H., Takubo, K. A culture method to maintain quiescent human hematopoietic stem cells. Journal of Visualized Experiments. (171), e61938 (2021).
  13. Aal Wilson, ., et al. Hematopoietic stem cells reversibly switch from dormancy to self-renewal during homeostasis and repair. Cell. 135 (6), 1118-1129 (2008).
  14. Ochi, K., Morita, M., Wilkinson, A. C., Iwama, A., Yamazaki, S. Non-conditioned bone marrow chimeric mouse generation using culture-based enrichment of hematopoietic stem and progenitor cells. Nature Communications. 12 (1), 3568 (2021).
  15. Wilkinson, A. C., et al. Cas9-AAV6 gene correction of beta-globin in autologous HSCs improves sickle cell disease erythropoiesis in mice. Nature Communications. 12 (1), 686 (2021).
  16. Haney, M. S., et al. Large-scale in vivo CRISPR screens identify SAGA complex members as a key regulators of HSC lineage commitment and aging. bioRxiv. , (2022).
  17. Che, J. L. C., et al. Identification and characterization of in vitro expanded hematopoietic stem cells. EMBO Reports. 23 (10), e55502 (2022).
  18. Zhang, Q., Konturek-Ciesla, A., Yuan, O., Bryder, D. Ex vivo expansion potential of murine hematopoietic stem cells: a rare property only partially predicted by phenotype. bioRxiv. , (2022).
  19. Schindele, P., Wolter, F., Puchta, H. CRISPR guide RNA design guidelines for efficient genome editing. Methods in Molecular Biology. 2166, 331-342 (2020).
  20. Hanna, R. E., Doench, J. G. Design and analysis of CRISPR-Cas experiments. Nat Biotechnol. 38 (7), 813-823 (2020).
  21. Wilkinson, A. C., Ishida, R., Nakauchi, H., Yamazaki, S. Long-term ex vivo expansion of mouse hematopoietic stem cells. Nature Protocols. 15 (2), 628-648 (2020).
  22. Ieyasu, A., et al. An all-recombinant protein-based culture system specifically identifies hematopoietic stem cell maintenance factors. Stem Cell Reports. 8 (3), 500-508 (2017).
check_url/it/64791?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Khoo, H. M., Meaker, G. A., Wilkinson, A. C. Ex Vivo Expansion and Genetic Manipulation of Mouse Hematopoietic Stem Cells in Polyvinyl Alcohol-Based Cultures. J. Vis. Exp. (192), e64791, doi:10.3791/64791 (2023).

View Video