Summary

Ex Vivo Expansion och genetisk manipulation av mushematopoetiska stamceller i polyvinylalkoholbaserade kulturer

Published: February 10, 2023
doi:

Summary

Här presenteras ett protokoll för att initiera, underhålla och analysera hematopoetiska stamcellskulturer hos möss med användning av ex vivo polyvinylalkoholbaserad expansion, samt metoder för att genetiskt manipulera dem genom lentiviral transduktion och elektroporering.

Abstract

Självförnyande multipotenta hematopoetiska stamceller (HSC) är en viktig celltyp på grund av deras förmåga att stödja hematopoes under hela livet och rekonstituera hela blodsystemet efter transplantation. HSC används kliniskt i stamcellstransplantationsterapier, som representerar botande behandling för en rad blodsjukdomar. Det finns ett stort intresse för att både förstå mekanismerna som reglerar HSC-aktivitet och hematopoes och utveckla nya HSC-baserade terapier. Den stabila odlingen och expansionen av HSCs ex vivo har dock varit ett stort hinder för att studera dessa stamceller i ett lätthanterligt ex vivo-system. Vi utvecklade nyligen ett polyvinylalkoholbaserat odlingssystem som kan stödja långsiktig och storskalig expansion av transplanterbara mus-HSC och metoder för att genetiskt redigera dem. Detta protokoll beskriver metoder för att odla och genetiskt manipulera HSC hos möss via elektroporering och lentiviral transduktion. Detta protokoll förväntas vara användbart för ett brett spektrum av experimentella hematologer intresserade av HSC-biologi och hematopoies.

Introduction

Det hematopoietiska systemet stöder en rad viktiga processer hos däggdjur, från syretillförsel till bekämpning av patogener, genom specialiserade blod- och immuncelltyper. Kontinuerlig blodproduktion (hematopoies) krävs för att stödja blodsystemets homeostas, som upprätthålls av hematopoetiska stam- och stamceller (HSPC)1. Den mest primitiva hematopoetiska cellen är den hematopoetiska stamcellen (HSC), som har unik kapacitet för självförnyelse och multilineagedifferentiering 2,3. Detta är en sällsynt cellpopulation, som främst finns i den vuxna benmärgen4, där de förekommer med en frekvens av bara ungefär en var 30 000 celler. HSC tros stödja livslång hematopoes och hjälpa till att återupprätta hematopoies efter hematologisk stress. Dessa kapaciteter gör det också möjligt för HSC att stabilt rekonstituera hela det hematopoetiska systemet efter transplantation till en bestrålad mottagare5. Detta representerar den funktionella definitionen av en HSC och utgör också den vetenskapliga grunden för HSC-transplantationsterapi, en botande behandling för en rad blod- och immunsjukdomar6. Av dessa skäl är HSC ett stort fokus för experimentell hematologi.

Trots ett stort forskningsfokus har det varit utmanande att stabilt utöka HSC ex vivo7. Vi utvecklade nyligen det första långsiktiga ex vivo-expansionsodlingssystemet för mus HSC8. Tillvägagångssättet kan expandera transplanterbara HSC med 234-899 gånger över en 4 veckors kultur. I jämförelse med alternativa tillvägagångssätt var den största förändringen i protokollet avlägsnandet av serumalbumin och dess ersättning med en syntetisk polymer. Polyvinylalkohol (PVA) identifierades som en optimal polymer för mössens HSC-kulturer8, som nu också har använts för att odla andra hematopoetiska celltyper9. Emellertid har en annan polymer som heter Soluplus (en polyvinylkaprolaktamacetat-polyetylenglykolgraftsampolymer) också nyligen identifierats, vilket verkar förbättra klonal HSC-expansion10. Före användning av polymerer användes serumalbumin i form av fetalt bovint serum, bovint serumalbuminfraktion V eller rekombinant serumalbumin, men dessa hade begränsat stöd för HSC-expansion och stödde endast kortvarig (~ 1 vecka) ex vivo-kultur 7. Det bör dock noteras att HSC-odlingsprotokoll som håller HSC i vilande tillstånd kan stödja en längre ex vivo-odlingstid 11,12.

I jämförelse med andra odlingsmetoder är en stor fördel med PVA-baserade kulturer antalet celler som kan genereras och hur lång tid protokollet kan användas för att spåra HSC ex vivo. Detta övervinner flera hinder inom experimentell hematologi, såsom det låga antalet HSC som kan isoleras per mus (bara några tusen) och svårigheten att spåra HSC över tid in vivo. Det är dock viktigt att komma ihåg att dessa kulturer stimulerar HSC-proliferation, medan in vivo HSC-poolen huvudsakligen är vilande vid ett stabilt tillstånd13. Dessutom, även om kulturerna är selektiva för HSC, ackumuleras ytterligare celltyper med kulturerna över tiden, och transplanterbara HSC representerar endast ungefär en av 34 celler efter 1 månad. Myeloida hematopoetiska stamceller verkar vara den huvudsakliga förorenande celltypen i dessa HSC-kulturer8. Ändå kan vi använda dessa kulturer för att berika HSC från heterogena cellpopulationer (t.ex. c-Kit + benmärgs HSPC14). Det stöder också transduktion eller elektroporering av HSC för genetisk manipulation14,15,16. För att hjälpa till att identifiera HSC från den heterogena odlade HSPC-populationen har CD201 (EPCR) nyligen identifierats som en användbar ex vivo HSC-markör 10,17,18, med transplanterbara HSC begränsade till CD201 + CD150 + c-Kit + Sca1 + Lineage-fraktionen.

Detta protokoll beskriver metoder för att initiera, underhålla och utvärdera PVA-baserade mus HSC-expansionskulturer, samt protokoll för genetisk manipulation inom dessa kulturer med hjälp av elektroporering eller lentiviral vektortransduktion. Dessa metoder förväntas vara användbara för en rad experimentella hematologer.

Protocol

Alla djurförsök, inklusive avel och avlivning, måste utföras inom institutionella och nationella riktlinjer. Experimenten som beskrivs nedan godkändes av det brittiska inrikesdepartementet. Se materialförteckningen för en lista över alla material, reagenser och utrustning som används i detta protokoll. 1. Förbereda stamlösningar PVA-stamlösningTa 50 ml vävnadsodlingskvalitetsvatten i en liten glasflaska (lämplig för autoklaveri…

Representative Results

För FACS-rening av HSC förväntar vi oss att inom den c-Kit-anrikade benmärgen är ~ 0,2% av cellerna CD150 + CD34-c-Kit + Sca1 + Lineage- population för unga (8-12 veckor gamla) C57BL / 6-möss (figur 1). Det är dock troligt att transgena möss eller möss i olika åldrar uppvisar olika HSC-frekvenser. Efter 4 veckors kultur förväntar vi oss att CD201 + CD150 + c-Kit + Sca1 + Lineage- f…

Discussion

Vi hoppas att detta protokoll ger ett användbart tillvägagångssätt för att undersöka HSC-biologi, hematopoes och hematologi mer allmänt. Sedan den initiala utvecklingen av den PVA-baserade odlingsmetoden för FACS-renade HSCs8 har metoden utvidgats. Till exempel har metoden visat sig fungera med c-Kit berikad med benmärg och med negativa ytladdade plattor14. Dess kompatibilitet med transduktion och elektroporering har också visats14,15<…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi tackar WIMM Flow Cytometry Core för åtkomst till flödescytometri och WIMM Virus Screening Core för lentiviral vektorgenerering. Detta arbete finansierades av Kay Kendall Leukaemia Fund och UK Medical Research Council.

Materials

Equipment
Dissection kit Fisher Scientific 12764416
Hemocytometer Appleton Woods Ltd HC002
P3 Primary Cell 4D-Nucleofector X Kit Lonza  V4XP-3024
Pestle and mortar Scientific Laboratory Supplies Limited X18000
QuadroMACS separator Miltenyi Biotec 130-090-976
Materials
5 mL syringe VWR International Ltd 720-2519
19 G needle VWR International Ltd 613-5394
50 μm cell strainer Sysmex 04-004-2317
70 μm cell strainer Corning 431751
Kimtech wipes VWR International Ltd 115-2075
LS MACS column Miltenyi Biotec 130-042-401
Reagents
Alt-R S.p. Cas9 Nuclease V3, 100 μg IDT  1081058
Animal free recombinant mouse stem cell factor  Peprotech AF-250-03
Animal free recombinant mouse thrombopoietin Peprotech AF-315-14
Anti-mouse CD117 APC (clone: 2B8) ThermoFisher 17-1171-83
Anti-mouse CD117 BV421 (clone: 2B8) Biolegend 105828
Anti-mouse CD127 APC/Cy7 (clone: A7R34) Biolegend 135040
Anti-mouse CD127 biotin (clone: A7R34) Biolegend 135006
Anti-mouse CD150 PE/Cy7 (clone: TC15-12F12.2) Biolegend 115914
Anti-mouse CD201 APC (clone: eBio1560) ThermoFisher 17-2012-82
Anti-mouse CD34 FITC (clone: RAM34) ThermoFisher 11-0341-85
Anti-mouse CD4 APC/Cy7 (clone: RM4-5) Biolegend 100526
Anti-mouse CD4 biotin (clone: RM4-5) Biolegend 100508
Anti-mouse CD45R APC/Cy7 (clone: RA3-6B2) Biolegend 103224
Anti-mouse CD45R biotin (clone: RA3-6B2) Biolegend 103204
Anti-mouse CD48 BV421 (clone: HM48-1) Biolegend 103428
Anti-mouse CD8 biotin (clone: 53-6.7) Biolegend 100704
Anti-mouse CD8a APC/Cy7 (clone: 53-6.7) Biolegend 100714
Anti-mouse Ly6G/Ly6C APC/Cy7 (clone: RB6-8C5) Biolegend 108424
Anti-mouse Ly6G/Ly6C biotin (clone: RB6-8C5) Biolegend 108404
Anti-mouse Sca1 PE (clone: D7) Biolegend 108108
Anti-mouse Ter119 APC/Cy7 (clone: TER-119) Biolegend 116223
Anti-mouse Ter119 biotin (clone: TER-119) Biolegend 116204
CellBIND plates, 24-well Corning 3337 negative surface charged
CellBIND plates, 96-well  Corning 3330 negative surface charged
Custom synthetic sgRNA  Synthego, Sigma Aldrich, IDT Custom order
Fetal bovine serum Merck Life Science UK Limited F7524-50ML
Fibronectin Coated plates, 96-well BD Biosciences 354409
Ham's F-12 Nutrient Mix Gibco 11765054
Insulin-Transferrin-Selenium-X (100x) Gibco 51500.056
Phosphate buffered saline Alfa Aesar J61196.AP
Polyvinyl alcohol Sigma Aldrich P8136
Propidium Iodide Enzo Life Sciences (UK) Ltd EXB-0018
Streptavidin APC/Cy7 Biolegend 405208
Türks’ solution Sigma Aldrich 109277
Virkon Mettler-Toledo Ltd 95015662

Riferimenti

  1. Laurenti, E., Göttgens, B. From haematopoietic stem cells to complex differentiation landscapes. Nature. 553 (7689), 418-426 (2018).
  2. Eaves, C. J. Hematopoietic stem cells: concepts, definitions, and the new reality. Blood. 125 (17), 2605-2613 (2015).
  3. Wilkinson, A. C., Igarashi, K. J., Nakauchi, H. Haematopoietic stem cell self-renewal in vivo and ex vivo. Nature Reviews Genetics. 21 (9), 541-554 (2020).
  4. Crane, G. M., Jeffery, E., Morrison, S. J. Adult haematopoietic stem cell niches. Nature Reviews Immunology. 17 (9), 573-590 (2017).
  5. Osawa, M., Hanada, K., Hamada, H., Nakauchi, H. Long-term lymphohematopoietic reconstitution by a single CD34-low/negative hematopoietic stem cell. Science. 273 (5272), 242-245 (1996).
  6. Granot, N., Storb, R. History of hematopoietic cell transplantation: challenges and progress. Haematologica. 105 (12), 2716-2729 (2020).
  7. Wilkinson, A. C., Nakauchi, H. Stabilizing hematopoietic stem cells in vitro. Current Opinion in Genetics & Development. 64, 1-5 (2020).
  8. Wilkinson, A. C., et al. Long-term ex vivo haematopoietic-stem-cell expansion allows nonconditioned transplantation. Nature. 571 (7763), 117-121 (2019).
  9. Nishimura, T., et al. Use of polyvinyl alcohol for chimeric antigen receptor T-cell expansion. Experimental Hematology. 80, 16-20 (2019).
  10. Becker, H. J., et al. A single cell cloning platform for gene edited functional murine hematopoietic stem cells. bioRxiv. , (2022).
  11. Kobayashi, H., et al. Environmental optimization enables maintenance of quiescent hematopoietic stem cells ex vivo. Cell Reports. 28 (1), 145-158 (2019).
  12. Kobayashi, H., Takubo, K. A culture method to maintain quiescent human hematopoietic stem cells. Journal of Visualized Experiments. (171), e61938 (2021).
  13. Aal Wilson, ., et al. Hematopoietic stem cells reversibly switch from dormancy to self-renewal during homeostasis and repair. Cell. 135 (6), 1118-1129 (2008).
  14. Ochi, K., Morita, M., Wilkinson, A. C., Iwama, A., Yamazaki, S. Non-conditioned bone marrow chimeric mouse generation using culture-based enrichment of hematopoietic stem and progenitor cells. Nature Communications. 12 (1), 3568 (2021).
  15. Wilkinson, A. C., et al. Cas9-AAV6 gene correction of beta-globin in autologous HSCs improves sickle cell disease erythropoiesis in mice. Nature Communications. 12 (1), 686 (2021).
  16. Haney, M. S., et al. Large-scale in vivo CRISPR screens identify SAGA complex members as a key regulators of HSC lineage commitment and aging. bioRxiv. , (2022).
  17. Che, J. L. C., et al. Identification and characterization of in vitro expanded hematopoietic stem cells. EMBO Reports. 23 (10), e55502 (2022).
  18. Zhang, Q., Konturek-Ciesla, A., Yuan, O., Bryder, D. Ex vivo expansion potential of murine hematopoietic stem cells: a rare property only partially predicted by phenotype. bioRxiv. , (2022).
  19. Schindele, P., Wolter, F., Puchta, H. CRISPR guide RNA design guidelines for efficient genome editing. Methods in Molecular Biology. 2166, 331-342 (2020).
  20. Hanna, R. E., Doench, J. G. Design and analysis of CRISPR-Cas experiments. Nat Biotechnol. 38 (7), 813-823 (2020).
  21. Wilkinson, A. C., Ishida, R., Nakauchi, H., Yamazaki, S. Long-term ex vivo expansion of mouse hematopoietic stem cells. Nature Protocols. 15 (2), 628-648 (2020).
  22. Ieyasu, A., et al. An all-recombinant protein-based culture system specifically identifies hematopoietic stem cell maintenance factors. Stem Cell Reports. 8 (3), 500-508 (2017).
check_url/it/64791?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Khoo, H. M., Meaker, G. A., Wilkinson, A. C. Ex Vivo Expansion and Genetic Manipulation of Mouse Hematopoietic Stem Cells in Polyvinyl Alcohol-Based Cultures. J. Vis. Exp. (192), e64791, doi:10.3791/64791 (2023).

View Video