Summary

Investigando os Efeitos Protetores da Platicodina D na Doença Hepática Gordurosa Não Alcoólica em Modelo In Vitro Induzido por Ácido Palmítico

Published: December 02, 2022
doi:

Summary

Este protocolo investiga os efeitos protetores da platicodina-D na doença hepática gordurosa não alcoólica em modelo in vitro induzido por ácido palmítico.

Abstract

A ocorrência da doença hepática gordurosa não alcoólica (DHGNA) vem aumentando de forma alarmante em todo o mundo. Platycodon grandiflorum é amplamente utilizado como uma etnomedicina tradicional para o tratamento de várias doenças e é um alimento funcional típico que pode ser incorporado na dieta diária. Estudos têm sugerido que a platicodina D (PD), um dos principais ingredientes ativos do Platycodon grandiflorum, tem alta biodisponibilidade e atenua significativamente o progresso da DHGNA, mas o mecanismo subjacente a isso ainda não está claro. Este estudo tem como objetivo investigar in vitro o efeito terapêutico da DP contra a DHGNA. Células AML-12 foram pré-tratadas com ácido palmítico (PA) 300 μM por 24 h para modelo de DHGNA in vitro. Em seguida, as células foram tratadas com DP ou não receberam tratamento de DP por 24 horas. Os níveis de espécies reativas de oxigênio (EROs) foram analisados usando a coloração de 2′,7′-dicloro-diidrofluoresceína diacetato (DCFH-DA), e o potencial de membrana mitocondrial foi determinado pelo método de coloração JC-1. Além disso, os níveis de expressão proteica de LC3-II/LC3-I e p62/SQSTM1 nos lisados celulares foram analisados por western blotting. Descobriu-se que a DP diminuiu significativamente os níveis de ROS e potencial de membrana mitocondrial no grupo tratado com AP em comparação com o grupo controle. Enquanto isso, a DP aumentou os níveis de LC3-II/LC3-I e diminuiu os níveis de p62/SQSTM1 no grupo tratado com AP em comparação com o grupo controle. Os resultados indicaram que a DP melhorou a DHGNA in vitro , reduzindo o estresse oxidativo e estimulando a autofagia. Este modelo in vitro é uma ferramenta útil para estudar o papel da DP na DHGNA.

Introduction

Platycodon grandiflorus (PG), que é a raiz seca de Platycodon grandiflorus (Jacq.) A.DC., é usado na medicina tradicional chinesa (MTC). É produzido principalmente nas regiões nordeste, norte, leste, central e sudoeste da China1. Os componentes do PG incluem saponinas triterpenóides, polissacarídeos, flavonoides, polifenóis, polietilenoglicóis, óleos voláteis e minerais2. PG tem uma longa história de ser usado como um alimento e um fitoterápico na Ásia. Tradicionalmente, esta erva foi usada para fazer medicina contra doenças pulmonares. A farmacologia moderna também fornece evidências da eficácia do PG para o tratamento de outras doenças. Estudos têm demonstrado que o PG tem um efeito terapêutico em uma variedade de modelos de lesão hepática induzida por drogas. A suplementação dietética de extratos de PG ou platicodina pode amenizar a obesidade induzida por dieta hiperlipídica e suas doenças metabólicas relacionadas 3,4,5. Polissacarídeos de PG podem ser utilizados no tratamento da lesão hepática aguda causada por LPS/D-GalN em camundongos6. Além disso, as saponinas das raízes do PG melhoram a esteatohepatite não alcoólica induzida por dieta hiperlipética (EHNA)7. Além disso, a platicodina D (PD), um dos mais importantes componentes terapêuticos do PG, pode aumentar a expressão do receptor de lipoproteína de baixa densidade e a captação de lipoproteína de baixa densidade em células de carcinoma hepatocelular humano (HepG2)8. Além disso, a DP também pode induzir apoptose e inibir a adesão, migração e invasãoem células HepG29,10. Assim, neste estudo, células AML-12 de hepatoma de camundongo são utilizadas para a construção de modelos in vitro e para aprofundar o estudo dos efeitos farmacológicos e mecanismos subjacentes da DP nesse modelo.

O termo doença hepática gordurosa não alcoólica (DHGNA) refere-se a um grupo de doenças hepáticas que inclui esteatose simples, EHNA, cirrose e carcinomahepatocelular11. Embora a patogênese da DHGNA seja incompletamente compreendida, desde a teoria clássica dos “dois acertos” até a atual teoria dos “múltiplos acertos”, a resistência à insulina é considerada central na patogênese da DHGNA12,13,14. Estudos têm demonstrado que a resistência à insulina nos hepatócitos poderia levar ao aumento dos ácidos graxos livres, que formam triglicerídeos que se depositam no fígado e causam gordurinhas no fígado15,16. O acúmulo de gordura pode levar à lipotoxicidade, disfunção mitocondrial induzida por estresse oxidativo, estresse do retículo endoplasmático e liberação de citocinas inflamatórias, resultando na patogênese e progressão da DHGNA17,18. Além disso, a autofagia também desempenha um papel na patogênese da DHGNA, pois está envolvida na regulação da sensibilidade celular à insulina, do metabolismo lipídico celular, da lesão dos hepatócitos e da imunidade inata 19,20,21.

Uma variedade de modelos animais e modelos celulares tem sido estabelecida para fornecer uma base para explorar a patogênese e potenciais alvos terapêuticos da DHGNA22,23. No entanto, modelos animais isolados não conseguem mimetizar completamente todos os processos patológicos da DHGNA24. Diferenças individuais entre os animais levam a diferentes características patológicas. O uso de linhagens celulares hepáticas ou hepatócitos primários em estudos in vitro de DHGNA garante a máxima consistência nas condições experimentais. A desregulação do metabolismo lipídico hepático pode levar a níveis mais elevados de acúmulo de gotículas lipídicas de hepatócitos na DHGNA25. Ácidos graxos livres, como ácido oleico e óleo de palma, têm sido utilizados no modelo in vitro para mimetizar a DHGNA causada por uma dieta hiperlipídica26,27. A linhagem celular HepG2 do hepatoblastoma humano é frequentemente utilizada na construção de modelos de DHGNA in vitro, mas, como linhagem celular tumoral, o metabolismo das células HepG2 é significativamente diferente daquele das células hepáticas em condições fisiológicasnormais28. Portanto, o uso de hepatócitos primários ou hepatócitos primários de camundongos para construir o modelo de DHGNA in vitro para triagem de drogas é mais vantajoso do que o uso de linhagens de células tumorais. Comparando o exame sinérgico dos efeitos de drogas e alvos terapêuticos em modelos animais e modelos de hepatócitos in vitro, parece que o uso de hepatócitos de camundongo para construir o modelo in vitro de DHGNA tem melhor potencial de aplicação.

Os ácidos graxos livres que entram no fígado são oxidados para produzir energia ou armazenados como triglicerídeos. Significativamente, os ácidos graxos livres apresentam certa lipotoxicidade e podem induzir disfunção celular e apoptose12. O ácido palmítico (AP) é o ácido graxo saturado mais abundante no plasma humano29. Quando as células do tecido não adiposo são expostas a altas concentrações de AF por longo tempo, isso estimula a produção de espécies reativas de oxigênio (EROs) e causa estresse oxidativo, acúmulo de lipídios e até apoptose30. Portanto, muitos pesquisadores utilizam a AP como indutor para estimular as células hepáticas a produzirem ERO e, assim, construir o modelo de doença hepática gordurosa in vitro e avaliar os efeitos protetores de determinadas substâncias ativas sobre as células31,32,33,34. Este estudo apresenta um protocolo para investigar os efeitos protetores da DP em um modelo celular de DHGNA induzida por AF.

Protocol

As células AML-12 (uma linhagem normal de hepatócitos de camundongos) são usadas para os estudos baseados em células. As células são obtidas de uma fonte comercial (ver Tabela de Materiais). 1. Pré-tratamento das células AML-12 para modelagem da DHGNA in vitro Manter as células em meios de cultura celular normais (DMEM mais F12 de Ham’s [1:1] contendo 0,005 mg/mL de insulina, 5 ng/mL de selênio, 0,005 mg/mL de transferrina, 40 ng/…

Representative Results

ERO intracelular nas célulasCélulas AML-12 foram induzidas com 300 μM de PA por 24 h, e um modelo de célula NAFLD foi estabelecido. Posteriormente, as células foram tratadas com DP por 24 horas. As células foram marcadas com uma sonda fluorescente DCFH-DA, e a produção de ROS foi observada em microscópio de fluorescência. Os resultados da coloração DCFH-DA das ERO intracelulares nas células são mostrados na Figura 1. Os resultados mostraram que a DP pode re…

Discussion

Estudos têm destacado o fato de que a DHGNA é uma síndrome clinicopatológica, que varia de esteatose hepática a EHNA, que pode evoluir para cirrose e câncer hepático51. Uma dieta rica em gordura e um estilo de vida inativo são fatores de risco típicos para DHGNA. Tanto terapias não medicamentosas quanto terapias medicamentosas para o tratamento da DHGNA têm sido pesquisadas51,52,53. Entretanto,…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabalho é apoiado por subsídios da Comissão de Ciência e Tecnologia de Chongqing (cstc2020jxjl-jbky10002, jbky20200026, cstc2021jscx-dxwtBX0013 e jbky20210029) e da China Postdoctoral Science Foundation (No. 2021MD703919).

Materials

5% BSA Blocking Buffer Solarbio, Beijing, China SW3015
AML12 (alpha mouse liver 12) cell line Procell Life Science&Technology Co., Ltd, China AML12
Beyo ECL Plus Beyotime, Shanghai, China P0018S
Bio-safety cabinet Esco Micro Pte Ltd, Singapore AC2-5S1 A2 
cellSens Olympus, Tokyo, Japan 1.8
Culture CO2 Incubator Esco Micro Pte Ltd, Singapore CCL-170B-8
Dexamethasone Beyotime, Shanghai, China ST125
Dimethyl sulfoxide Solarbio, Beijing, China D8371
DMEM/F12 Hyclone, Logan, UT, USA SH30023.01
Foetal Bovine Serum Hyclone, Tauranga, New Zealand SH30406.05
Graphpad software GraphPad Software Inc., San Diego, CA, USA 8.0
HRP Goat Anti-Mouse IgG (H+L) ABclonal, Wuhan, China AS003
Hydrophobic PVDF Transfer Membrane Merck, Darmstadt, Germany IPFL00010
Insulin, Transferrin, Selenium Solution, 100× Beyotime, Shanghai, China C0341
MAP LC3β Antibody Santa Cruz Biotechnology (Shanghai) Co., Ltd SC-376404
Mitochondrial Membrane Potential Assay Kit with JC-1 Solarbio, Beijing, China M8650
Olympus Inverted Microscope IX53 Olympus, Tokyo, Japan IX53
Palmitic Acid Sigma, Germany P0500
Penicillin-Streptomycin Solution (100x) Hyclone, Logan, UT, USA SV30010
Phenylmethanesulfonyl fluoride Beyotime, Shanghai, China ST506
Phosphate Buffered Solution Hyclone, Logan, UT, USA BL302A
Platycodin D Chengdu Must Bio-Technology Co., Ltd, China CSA: 58479-68-8
Protease inhibitor cocktail for general use, 100x Beyotime, Shanghai, China P1005
Protein Marker Solarbio, Beijing, China PR1910
Reactive Oxygen Species Assay Kit Solarbio, Beijing, China CA1410
RIPA Lysis Buffer Beyotime, Shanghai, China P0013E
SDS-PAGE Gel Quick Preparation Kit Beyotime, Shanghai, China P0012AC
SDS-PAGE Sample Loading Buffer, 5x Beyotime, Shanghai, China P0015
Sigma Centrifuge Sigma, Germany 3K15
SQSTM1/p62 Antibody Santa Cruz Biotechnology (Shanghai) Co., Ltd SC-28359
Tecan Infinite 200 PRO   Tecan Austria GmbH, Austria 1510002987
WB Transfer Buffer,10x Solarbio, Beijing, China D1060
β-Actin Mouse mAb ABclonal, Wuhan, China AC004

Riferimenti

  1. Xunyan, X. Y., Fang, X. M. The effect of Platycodon grandiflorum and its historical change in the clinical application of Platycodonis radix. Zhonghua Yi Shi Za Shi. 51 (3), 167-176 (2021).
  2. Ma, X., et al. Platycodon grandiflorum extract: Chemical composition and whitening, antioxidant, and anti-inflammatory effects. RSC Advances. 11 (18), 10814-10826 (2021).
  3. Ke, W., et al. Dietary Platycodon grandiflorus attenuates hepatic insulin resistance and oxidative stress in high-fat-diet induced non-alcoholic fatty liver disease. Nutrients. 12 (2), 480 (2020).
  4. Kim, Y. J., et al. Platycodon grandiflorus root extract attenuates body fat mass, hepatic steatosis and insulin resistance through the interplay between the liver and adipose tissue. Nutrients. 8 (9), 532 (2016).
  5. Park, H. M., et al. Mass spectrometry-based metabolomic and lipidomic analyses of the effects of dietary Platycodon grandiflorum on liver and serum of obese mice under a high-fat diet. Nutrients. 9 (1), 71 (2017).
  6. Qi, C., et al. Platycodon grandiflorus polysaccharide with anti-apoptosis, anti-oxidant and anti-inflammatory activity against LPS/D-GalN induced acute liver injury in mice. Journal of Polymers and the Environment. 29 (12), 4088-4097 (2021).
  7. Choi, J. H., et al. Saponins from the roots of Platycodon grandiflorum ameliorate high fat diet-induced non-alcoholic steatohepatitis. Biomedicine & Pharmacotherapy. 86, 205-212 (2017).
  8. Choi, Y. J., et al. Platycodin D enhances LDLR expression and LDL uptake via down-regulation of IDOL mRNA in hepatic cells. Scientific Reports. 10, 19834 (2020).
  9. Li, T., et al. Platycodin D triggers autophagy through activation of extracellular signal-regulated kinase in hepatocellular carcinoma HepG2 cells. European Journal of Pharmacology. 749, 81-88 (2015).
  10. Lu, J. -. J., et al. Proteomic analysis of hepatocellular carcinoma HepG2 cells treated with platycodin D. Chinese Journal of Natural Medicines. 13 (9), 673-679 (2015).
  11. Neuschwander-Tetri, B. A. Therapeutic landscape for NAFLD in 2020. Gastroenterology. 158 (7), 1984-1998 (2020).
  12. Friedman, S. L., Neuschwander-Tetri, B. A., Rinella, M., Sanyal, A. J. Mechanisms of NAFLD development and therapeutic strategies. Nature Medicine. 24 (7), 908-922 (2018).
  13. Bessone, F., Razori, M. V., Roma, M. G. Molecular pathways of nonalcoholic fatty liver disease development and progression. Cellular and Molecular Life Sciences. 76 (1), 99-128 (2019).
  14. Buzzetti, E., Pinzani, M., Tsochatzis, E. A. The multiple-hit pathogenesis of non-alcoholic fatty liver disease (NAFLD). Metabolism. 65 (8), 1038-1048 (2016).
  15. Watt, M. J., Miotto, P. M., De Nardo, W., Montgomery, M. K. The liver as an endocrine organ-Linking NAFLD and insulin resistance. Endocrine Reviews. 40 (5), 1367-1393 (2019).
  16. Khan, R. S., Bril, F., Cusi, K., Newsome, P. N. Modulation of insulin resistance in nonalcoholic fatty liver disease. Hepatology. 70 (2), 711-724 (2019).
  17. Karkucinska-Wieckowska, A., et al. Mitochondria, oxidative stress and nonalcoholic fatty liver disease: A complex relationship. European Journal of Clinical Investigation. 52 (3), 13622 (2022).
  18. Tilg, H., Adolph, T. E., Dudek, M., Knolle, P. Non-alcoholic fatty liver disease: The interplay between metabolism, microbes and immunity. Nature Metabolism. 3 (12), 1596-1607 (2021).
  19. Qian, H., et al. Autophagy in liver diseases: A review. Molecular Aspects of Medicine. 82, 100973 (2021).
  20. Du, J., Ji, Y., Qiao, L., Liu, Y., Lin, J. Cellular endo-lysosomal dysfunction in the pathogenesis of non-alcoholic fatty liver disease. Liver International. 40 (2), 271-280 (2020).
  21. Allaire, M., Rautou, P. E., Codogno, P., Lotersztajn, S. Autophagy in liver diseases: Time for translation. Journal of Hepatology. 70 (5), 985-998 (2019).
  22. Kanuri, G., Bergheim, I. In vitro and in vivo models of non-alcoholic fatty liver disease (NAFLD). International Journal of Molecular Sciences. 14 (6), 11963-11980 (2013).
  23. Lau, J. K., Zhang, X., Yu, J. Animal models of non-alcoholic fatty liver disease: Current perspectives and recent advances. The Journal of Pathology. 241 (1), 36-44 (2017).
  24. Reimer, K. C., Wree, A., Roderburg, C., Tacke, F. New drugs for NAFLD: Lessons from basic models to the clinic. Hepatology International. 14 (1), 8-23 (2020).
  25. Carpino, G., et al. Increased liver localization of lipopolysaccharides in human and experimental NAFLD. Hepatology. 72 (2), 470-485 (2020).
  26. Vergani, L. Fatty acids and effects on in vitro and in vivo models of liver steatosis. Current Medicinal Chemistry. 26 (19), 3439-3456 (2019).
  27. Scorletti, E., Carr, R. M. A new perspective on NAFLD: Focusing on lipid droplets. Journal of Hepatology. 76 (4), 934-945 (2022).
  28. Green, C. J., Pramfalk, C., Morten, K. J., Hodson, L. From whole body to cellular models of hepatic triglyceride metabolism: Man has got to know his limitations. American Journal of Physiology-Endocrinology and Metabolism. 308 (1), 1-20 (2015).
  29. Gambino, R., et al. Different serum free fatty acid profiles in NAFLD subjects and healthy controls after oral fat load. International Journal of Molecular Sciences. 17 (4), 479 (2016).
  30. Marra, F., Svegliati-Baroni, G. Lipotoxicity and the gut-liver axis in NASH pathogenesis. Journal of Hepatology. 68 (2), 280-295 (2018).
  31. Zhang, J., Zhang, H., Deng, X., Zhang, Y., Xu, K. Baicalin protects AML-12 cells from lipotoxicity via the suppression of ER stress and TXNIP/NLRP3 inflammasome activation. Chemico-Biological Interactions. 278, 189-196 (2017).
  32. Liang, Y., et al. γ-Linolenic acid prevents lipid metabolism disorder in palmitic acid-treated alpha mouse liver-12 cells by balancing autophagy and apoptosis via the LKB1-AMPK-mTOR pathway. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 69 (29), 8257-8267 (2021).
  33. Peng, Z., et al. Nobiletin alleviates palmitic acid-induced NLRP3 inflammasome activation in a sirtuin 1dependent manner in AML12 cells. Molecular Medicine Reports. 18 (6), 5815-5822 (2018).
  34. Xu, T., et al. Ferulic acid alleviates lipotoxicity-induced hepatocellular death through the SIRT1-regulated autophagy pathway and independently of AMPK and Akt in AML-12 hepatocytes. Nutrition & Metabolism. 18 (1), 13 (2021).
  35. Aranda, A., et al. Dichloro-dihydro-fluorescein diacetate (DCFH-DA) assay: A quantitative method for oxidative stress assessment of nanoparticle-treated cells. Toxicology in Vitro. 27 (2), 954-963 (2013).
  36. Eruslanov, E., Kusmartsev, S. Identification of ROS using oxidized DCFDA and flow-cytometry. Methods in Molecular Biology. 594, 57-72 (2010).
  37. Bankhead, P. . Analyzing Fluorescence Microscopy Images with ImageJ. , (2014).
  38. Wiesmann, V., et al. Review of free software tools for image analysis of fluorescence cell micrographs. Journal of Microscopy. 257 (1), 39-53 (2015).
  39. Lugli, E., Troiano, L., Cossarizza, A. Polychromatic analysis of mitochondrial membrane potential using JC-1. Current Protocols in Cytometry. , (2007).
  40. Sivandzade, F., Bhalerao, A., Cucullo, L. Analysis of the mitochondrial membrane potential using the cationic JC-1 dye as a sensitive fluorescent probe. Bio-protocol. 9 (1), 3128 (2019).
  41. Chazotte, B. Labeling mitochondria with JC-1. Cold Spring Harbor Protocols. 2011 (9), (2011).
  42. Walker, J. M. The bicinchoninic acid (BCA) assay for protein quantitation. The Protein Protocols Handbook. , 11-15 (2009).
  43. Goldman, A., Ursitti, J. A., Mozdzanowski, J., Speicher, D. W. Electroblotting from polyacrylamide gels. Current Protocols in Protein Science. 82, 1-16 (2015).
  44. Mozdzanowski, J., Speicher, D. W. Proteins from polyacrylamide gels onto PVDF membranes. Current Research in Protein Chemistry. , 87 (2012).
  45. Taylor, S. C., Posch, A. The design of a quantitative western blot experiment. Biomed Research International. 2014, 361590 (2014).
  46. Motulsky, H. J. Graphpad Statistics Guide. Options for multiple t tests. Graphpad. , (2020).
  47. Poltorak, A. Cell death: All roads lead to mitochondria. Current Biology. 32 (16), 891-894 (2022).
  48. Dadsena, S., Jenner, A., García-Sáez, A. J. Mitochondrial outer membrane permeabilization at the single molecule level. Cellular and Molecular Life Sciences. 78 (8), 3777-3790 (2021).
  49. Green, D. R., Kroemer, G. The pathophysiology of mitochondrial cell death. Science. 305 (5684), 626-629 (2004).
  50. Lange, N. F., Radu, P., Dufour, J. F. Prevention of NAFLD-associated HCC: Role of lifestyle and chemoprevention. Journal of Hepatology. 75 (5), 1217-1227 (2021).
  51. Liu, X., Zhang, Y., Ma, C., Lin, J., Du, J. Alternate-day fasting alleviates high fat diet induced non-alcoholic fatty liver disease through controlling PPARalpha/Fgf21 signaling. Molecular Biology Reports. 49 (4), 3113-3122 (2022).
  52. Romero-Gomez, M., Zelber-Sagi, S., Trenell, M. Treatment of NAFLD with diet, physical activity and exercise. Journal of Hepatology. 67 (4), 829-846 (2017).
  53. Mizushima, N., Levine, B. Autophagy in human diseases. New England Journal of Medicine. 383 (16), 1564-1576 (2020).
  54. Cui, B., Yu, J. M. Autophagy: A new pathway for traditional Chinese medicine. Journal of Asian Natural Products Research. 20 (1), 14-26 (2018).
  55. Law, B. Y., et al. New potential pharmacological functions of Chinese herbal medicines via regulation of autophagy. Molecules. 21 (3), 359 (2016).
  56. Zhou, H., et al. Research progress in use of traditional Chinese medicine monomer for treatment of non-alcoholic fatty liver disease. European Journal of Pharmacology. 898, 173976 (2021).
  57. Zhang, L., Yao, Z., Ji, G. Herbal extracts and natural products in alleviating non-alcoholic fatty liver disease via activating autophagy. Frontiers in Pharmacology. 9, 1459 (2018).
  58. Zhang, X., et al. C-X-C motif chemokine 10 impairs autophagy and autolysosome formation in non-alcoholic steatohepatitis. Theranostics. 7 (11), 2822-2836 (2017).
  59. Li, C. X., et al. Allyl isothiocyanate ameliorates lipid accumulation and inflammation in nonalcoholic fatty liver disease via the Sirt1/AMPK and NF-kappaB signaling pathways. World Journal of Gastroenterology. 25 (34), 5120-5133 (2019).
  60. Li, S., et al. Sirtuin 3 acts as a negative regulator of autophagy dictating hepatocyte susceptibility to lipotoxicity. Hepatology. 66 (3), 936-952 (2017).
  61. Farrell, G. C., Teoh, N. C., McCuskey, R. S. Hepatic microcirculation in fatty liver disease. The Anatomical Record. 291 (6), 684-692 (2008).
  62. Milner, E., et al. Emerging three-dimensional hepatic models in relation to traditional two-dimensional in vitro assays for evaluating drug metabolism and hepatoxicity. Medicine in Drug Discovery. 8, 100060 (2020).
  63. Zhang, X., Jiang, T., Chen, D., Wang, Q., Zhang, L. W. Three-dimensional liver models: State of the art and their application for hepatotoxicity evaluation. Critical Reviews in Toxicology. 50 (4), 279-309 (2020).
  64. Bilson, J., Sethi, J. K., Byrne, C. D. Non-alcoholic fatty liver disease: A multi-system disease influenced by ageing and sex, and affected by adipose tissue and intestinal function. Proceedings of the Nutrition Society. 81 (2), 146-161 (2022).
check_url/it/64816?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Wen, X., Wang, J., Fan, J., Chu, R., Chen, Y., Xing, Y., Li, N., Wang, G. Investigating the Protective Effects of Platycodin D on Non-Alcoholic Fatty Liver Disease in a Palmitic Acid-Induced In Vitro Model. J. Vis. Exp. (190), e64816, doi:10.3791/64816 (2022).

View Video