Här presenterar vi ett bedömningsprotokoll av ett heterotopiskt implanterat hjärta efter normotermisk ex situ-konservering i råttmodellen.
Hjärttransplantation är den mest effektiva behandlingen för hjärtsvikt i slutstadiet. Trots förbättringarna i terapeutiska metoder och interventioner ökar antalet hjärtsviktspatienter som väntar på transplantation fortfarande. Den normotermiska ex situ-konserveringstekniken har etablerats som en jämförbar metod med den konventionella statiska kyllagringstekniken. Den största fördelen med denna teknik är att donatorhjärtan kan bevaras i upp till 12 timmar i ett fysiologiskt tillstånd. Dessutom möjliggör denna teknik återupplivning av donatorhjärtan efter cirkulationsdöd och tillämpar nödvändiga farmakologiska ingrepp för att förbättra givarfunktionen efter implantation. Många djurmodeller har etablerats för att förbättra normotermiska ex situ-konserveringstekniker och eliminera konserveringsrelaterade komplikationer. Även om stora djurmodeller är lätta att hantera jämfört med små djurmodeller är det dyrt och utmanande. Vi presenterar en råttmodell av normotermiskt ex situ-donatorhjärtbevarande följt av heterotopisk buktransplantation. Denna modell är relativt billig och kan åstadkommas av en enda experimenter.
Hjärttransplantation är fortfarande den enda livskraftiga behandlingen för eldfast hjärtsvikt 1,2,3,4. Trots en stadig ökning av antalet patienter i behov av hjärttransplantation har en proportionell ökning av tillgången på donerade organ inte observerats5. För att ta itu med denna fråga har nya metoder för att bevara donatorhjärtan utvecklats med målet att förbättra utmaningarna och öka tillgången på givare 6,7,8,9.
Normothermic ex situ hjärtperfusion (NESHP) med hjälp av organvårdssystem (OCS) maskiner har uppstått som en klinisk intervention 1,3. Denna teknik har ansetts vara ett lämpligt alternativ till konventionell statisk kyllagring (SCS) metod 2,9. NESHP minskar effektivt varaktigheten av kall ischemi, minskar metabolisk efterfrågan och underlättar optimal näringstillförsel och syresättning under transport av donatororgan10,11. Trots den tydliga potentialen hos denna metod för att förbättra bevarandet av donatororgan har dess kliniska tillämpning och ytterligare undersökningar begränsats av höga kostnader. Därför är prekliniska djurmodeller av NESHP avgörande för att identifiera viktiga tekniska utmaningar i samband med denna teknik12,13. Grisar och råttor är de djurmodeller som föredras för prekliniska studier på grund av deras ischemiska tolerans9. Även om svinmodellen är idealisk för grundforskning och translationell forskning, begränsas den av dess höga kostnader och det intensiva arbete som krävs för vård och underhåll. Däremot är råttmodeller billigare och lättare att hantera14.
I denna studie introducerar vi en förenklad råttmodell av NESHP, följt av heterotopisk hjärttransplantation, för att utvärdera effekten av konserveringstekniken på transplantattillstånd efter implantation. Denna modell är enkel, kostnadseffektiv och kan köras av en enda experimenter. Figur 1 visar schemat för proceduren.
Vårt fokus för att etablera denna modell var att replikera normotermisk mänsklig hjärttransplantation. Icke-utskjutande modeller är den vanligaste tekniken för att bevara donatorhjärtat i en ex situ-miljö 16. Medan utmatningsmodeller erbjuder många fördelar vid bedömning av hjärtfunktion under ex situ-perfusion 17, är de inte lämpliga för heterotopiska transplantationsmodeller. Vid heterotopisk transplantation måste det implanterade donator…
The authors have nothing to disclose.
Detta arbete stöddes av ett bidrag B2021-0991 från Chonnam National University Hospital Biomedical Research Institute och NRF-2020R1F1A1073921 från National Research Foundation of Korea
AES active evacuation system | Smiths medical | PC-6769-51A | Utilize CO2 and excess isoflurane |
Anesthesia machine | Smiths medical | PC-8801-01A | Mixes isoflurane and oxyegn and delivers to animal |
B20 patient monitor | GE medical systems | B20 | to observe mean aortic pressure and temperature |
Homeothermic Monitoring System | Harvard apparatus | 55-7020 | To monitor and maintain animal's temperature |
Micro-1 Rat oxygenator | Dongguan Kewei medical instruments | Micro-MO | For gas exchange in the langendorff circuit |
Micropuncture introducer Set | COOK medical | G48007 | for delivering cardioplegic solution to the arch through the abdominal aorta |
Microscope | Amscope | MU1403 | For zooming surgical field (Recipient) |
Surgical loupe | SurgiTel | L2S09 | For zooming surgical field (Donor) |
Syringe pump | AMP all | SP-8800 | To deliver cardioplegic solution |
Transonic flow sensor | Transonic | ME3PXL-M5 | Perfusion circuit flow sensor |
Transonic tubing flow module | Transonic | TS410 | flow acquiring system |
Watson – Marlow pumps | Harvard apparatus | 010.6131.DAO | Peristaltic pump used for recirculate perfusate |
WBC-1510A | JEIO TECH | E03056D | Heating bath |
Sprague-Dawley rats | Samtako Bio Korea Co., Ltd., Osan City Korea | ||
Medications | |||
BioHAnce Gel Eye Drops | SENTRIX Animal care | wet ointments for eye | |
Cefazolin | JW pharmaceutical | For prophilaxis | |
Custodiol | DR, FRANZ KOHLER CHEMIE GMBH | For heart harvesting | |
Diclofenac | Myungmoon Pharm. Co. Ltd | For pain control | |
Heparin | JW pharmaceutical | Anticoagulant | |
Insulin | JW pharmaceutical | hormon therapy | |
Saline | JW pharmaceutical | For hydration therapy |