Summary

Råttmodell av normothermisk ex-situ perfuserad heterotopisk hjärttransplantation

Published: April 21, 2023
doi:

Summary

Här presenterar vi ett bedömningsprotokoll av ett heterotopiskt implanterat hjärta efter normotermisk ex situ-konservering i råttmodellen.

Abstract

Hjärttransplantation är den mest effektiva behandlingen för hjärtsvikt i slutstadiet. Trots förbättringarna i terapeutiska metoder och interventioner ökar antalet hjärtsviktspatienter som väntar på transplantation fortfarande. Den normotermiska ex situ-konserveringstekniken har etablerats som en jämförbar metod med den konventionella statiska kyllagringstekniken. Den största fördelen med denna teknik är att donatorhjärtan kan bevaras i upp till 12 timmar i ett fysiologiskt tillstånd. Dessutom möjliggör denna teknik återupplivning av donatorhjärtan efter cirkulationsdöd och tillämpar nödvändiga farmakologiska ingrepp för att förbättra givarfunktionen efter implantation. Många djurmodeller har etablerats för att förbättra normotermiska ex situ-konserveringstekniker och eliminera konserveringsrelaterade komplikationer. Även om stora djurmodeller är lätta att hantera jämfört med små djurmodeller är det dyrt och utmanande. Vi presenterar en råttmodell av normotermiskt ex situ-donatorhjärtbevarande följt av heterotopisk buktransplantation. Denna modell är relativt billig och kan åstadkommas av en enda experimenter.

Introduction

Hjärttransplantation är fortfarande den enda livskraftiga behandlingen för eldfast hjärtsvikt 1,2,3,4. Trots en stadig ökning av antalet patienter i behov av hjärttransplantation har en proportionell ökning av tillgången på donerade organ inte observerats5. För att ta itu med denna fråga har nya metoder för att bevara donatorhjärtan utvecklats med målet att förbättra utmaningarna och öka tillgången på givare 6,7,8,9.

Normothermic ex situ hjärtperfusion (NESHP) med hjälp av organvårdssystem (OCS) maskiner har uppstått som en klinisk intervention 1,3. Denna teknik har ansetts vara ett lämpligt alternativ till konventionell statisk kyllagring (SCS) metod 2,9. NESHP minskar effektivt varaktigheten av kall ischemi, minskar metabolisk efterfrågan och underlättar optimal näringstillförsel och syresättning under transport av donatororgan10,11. Trots den tydliga potentialen hos denna metod för att förbättra bevarandet av donatororgan har dess kliniska tillämpning och ytterligare undersökningar begränsats av höga kostnader. Därför är prekliniska djurmodeller av NESHP avgörande för att identifiera viktiga tekniska utmaningar i samband med denna teknik12,13. Grisar och råttor är de djurmodeller som föredras för prekliniska studier på grund av deras ischemiska tolerans9. Även om svinmodellen är idealisk för grundforskning och translationell forskning, begränsas den av dess höga kostnader och det intensiva arbete som krävs för vård och underhåll. Däremot är råttmodeller billigare och lättare att hantera14.

I denna studie introducerar vi en förenklad råttmodell av NESHP, följt av heterotopisk hjärttransplantation, för att utvärdera effekten av konserveringstekniken på transplantattillstånd efter implantation. Denna modell är enkel, kostnadseffektiv och kan köras av en enda experimenter. Figur 1 visar schemat för proceduren.

Protocol

Den etiska kommittén för Laboratory Animal Research Center vid Chonnam National University Hospital (godkännande nr. CNU IACUC – H – 2022-36) godkände alla djurförsök. Hanråttor av typen Sprague-Dawley (350-450 g) som användes i denna studie fick vård i enlighet med riktlinjerna för vård och användning av försöksdjuren. Råttorna hölls i temperaturkontrollerade rum med en 12 timmars ljus-mörk cykel, med standardmat och vatten tillgängligt. 1. Förberedelse <…

Representative Results

Figur 1 illustrerar den experimentella designen som används i en smådjursmodell. Figur 2 visar den modifierade Langendorff-perfusionsapparaten, som inkluderar en liten djuroxygenator. Ordningen på anastomos för heterotopisk bukimplantation presenteras i figur 3. Figur 4 visar de parametrar som används för att bedöma hjärtats livskraft under ex situ-perfusion …

Discussion

Vårt fokus för att etablera denna modell var att replikera normotermisk mänsklig hjärttransplantation. Icke-utskjutande modeller är den vanligaste tekniken för att bevara donatorhjärtat i en ex situ-miljö 16. Medan utmatningsmodeller erbjuder många fördelar vid bedömning av hjärtfunktion under ex situ-perfusion 17, är de inte lämpliga för heterotopiska transplantationsmodeller. Vid heterotopisk transplantation måste det implanterade donator…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöddes av ett bidrag B2021-0991 från Chonnam National University Hospital Biomedical Research Institute och NRF-2020R1F1A1073921 från National Research Foundation of Korea

Materials

AES active evacuation system Smiths medical PC-6769-51A Utilize CO2 and excess isoflurane
Anesthesia machine Smiths medical PC-8801-01A Mixes isoflurane and oxyegn and delivers to animal
B20 patient monitor GE medical systems B20 to observe mean aortic pressure and temperature
Homeothermic Monitoring System Harvard apparatus 55-7020 To monitor and maintain animal's temperature
Micro-1 Rat oxygenator Dongguan Kewei medical instruments Micro-MO For gas exchange in the langendorff circuit
Micropuncture introducer Set COOK medical G48007 for delivering cardioplegic solution to the arch through the abdominal aorta
Microscope Amscope MU1403 For zooming surgical field (Recipient)
Surgical loupe SurgiTel L2S09 For zooming surgical field (Donor)
Syringe pump AMP all SP-8800 To deliver cardioplegic solution
Transonic flow sensor Transonic ME3PXL-M5 Perfusion circuit flow sensor
Transonic tubing flow module Transonic TS410 flow acquiring system
Watson – Marlow pumps Harvard apparatus 010.6131.DAO Peristaltic pump used for recirculate perfusate
WBC-1510A JEIO TECH E03056D Heating bath
Sprague-Dawley rats Samtako Bio Korea Co., Ltd., Osan City Korea
Medications
BioHAnce Gel Eye Drops SENTRIX Animal care wet ointments for eye
Cefazolin JW pharmaceutical For prophilaxis
Custodiol DR, FRANZ KOHLER CHEMIE GMBH For heart harvesting
Diclofenac Myungmoon Pharm. Co. Ltd For pain control
Heparin JW pharmaceutical Anticoagulant
Insulin JW pharmaceutical hormon therapy
Saline JW pharmaceutical For hydration therapy

Riferimenti

  1. Langmuur, S. J. J., et al. Normothermic ex-situ heart perfusion with the organ care system for cardiac transplantation: A meta-analysis. Transplantation. 106 (9), 1745-1753 (2022).
  2. Ardehali, A., et al. Ex-vivo perfusion of donor hearts for human heart transplantation (PROCEED II): a prospective, open-label, multicentre, randomized non-inferiority trial. Lancet. 385 (9987), 2577-2584 (2015).
  3. Dang Van, S., et al. Ex vivo perfusion of the donor heart: Preliminary experience in high-risk transplantations. Archives of Cardiovascular Diseases. 114 (11), 715-726 (2021).
  4. Zhou, P., et al. Donor heart preservation with hypoxic-conditioned medium-derived from bone marrow mesenchymal stem cells improves cardiac function in a heart transplantation model. Stem Cell Research and Therapy. 12 (1), 5f6 (2021).
  5. Messer, S., Large, S. Resuscitating heart transplantation: the donation after circulatory determined death donor.European. Journal of Cardio-Thoracic Surgery. 49 (1), 1-4 (2016).
  6. Trahanas, J. M., et al. Achieving 12 hour normothermic ex situ heart perfusion: an experience of 40 porcine hearts. ASAIO Journal. 62 (4), 470-476 (2016).
  7. Yang, Y., et al. Keeping donor hearts in completely beating status with normothermicblood perfusion for transplants. The Annals of Thoracic Surgery. 95 (6), 2028-2034 (2013).
  8. Van Caenegem, O., et al. Hypothermic continuous machine perfusion enables preservation of energy charge and functional recovery of heart grafts in an ex vivo model of donation following circulatory death. European Journal of Cardiothoracic Surgery. 49 (5), 1348-1353 (2016).
  9. Lu, J., et al. Normothermic ex vivo heart perfusion combined with melatonin enhances myocardial protection in rat donation after circulatory death hearts via inhibiting NLRP3 inflammasome-mediated pyroptosis. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 9, 733183 (2021).
  10. Pinnelas, R., Kobashigawa, J. A. Ex vivo normothermic perfusion in heart transplantation: a review of the TransMedics Organ Care System. Future Cardiology. 18 (1), 5-15 (2022).
  11. Fuchs, M., et al. Does the heart transplant have a future. European Journal of Cardiothoracic Surgery. 55, i38-i48 (2019).
  12. Pahuja, M., Case, B. C., Molina, E. J., Waksman, R. Overview of the FDA’s circulatory system devices panel virtual meeting on the TransMedics Organ Care System (OCS) Heart – portable extracorporeal heart perfusion and monitoring system. American Heart Journal. 247, 90-99 (2022).
  13. Jawitz, O. K., Devore, A. D., Patel, C. B., Bryner, B. S., Schroder, J. N. Expanding the donor pool: quantifying the potential impact of a portable organ-care system for expanded criteria heart donation. Journal of Cardiac Failure. 27 (12), 1462-1465 (2021).
  14. van Suylen, V., et al. Ex situ perfusion of hearts donated after euthanasia: a promising contribution to heart transplantation. Transplantation Direct. 7 (3), e676 (2021).
  15. Westhofen, S., et al. The heterotopic heart transplantation in mice as a small animal model to study mechanical unloading – Establishment of the procedure, perioperative management and postoperative scoring. PLoS One. 14 (4), e0214513 (2019).
  16. Qin, G., Jernryd, T., Sjoberg, S., Steen, S., Nilsson, J. Machine perfusion for human heart preservation: A systematic review. Transplant International. 35, 10258 (2022).
  17. Dang Van, S., Brunet, D., Akamkam, A., Decante, B., Guihaire, J. Functional assessment of the donor heart during ex situ perfusion: insights from pressure-volume loops and surface echocardiography. Journal of Visual Experiments. (188), e63945 (2022).
  18. Fu, X., Segiser, A., Carrel, T. P., Tevaearai Stahel, H. T., Most, H. Rat heterotopic heart transplantation model to investigate unloading-induced myocardial remodeling. Frontiers in Cardiovascular Medicine. 3, 34 (2016).
  19. Niimi, M. The technique for heterotopic cardiac transplantation in mice: experience of 3000 operations by one surgeon. The Journal of Heart and Lung Transplantation. 20 (10), 1123-1128 (2001).
  20. Qi, X., et al. The evaluation of constant coronary artery flow versus constant coronary perfusion pressure during normothermic ex-situ heart perfusion. The Journal of Heart and Lung Transplantation. 41 (12), 1738-1750 (2022).
  21. Okahara, S., et al. A novel blood viscosity estimation method based on pressure-flow characteristics of an oxygenator during cardiopulmonary bypass. Artificial Organs. 41 (3), 262-266 (2017).
  22. Quader, M., Torrado, J. F., Mangino, M. J., Toldo, S. Temperature and flow rate limit the optimal ex-vivo perfusion of the heart – an experimental study. Journal of Cardiothoracic Surgery. 15 (1), 180 (2020).
check_url/it/64954?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Kayumov, M., Jeong, I. S., Kim, D., Kwak, Y., Obiweluozor, F. O., Yoon, N., Kim, H. S., Cho, H. J. Rat Model of Normothermic Ex-Situ Perfused Heterotopic Heart Transplantation. J. Vis. Exp. (194), e64954, doi:10.3791/64954 (2023).

View Video