Summary

نموذج تضيق الصمام الأبهري للأرنب الناجم عن إصابة البالون المباشر

Published: March 31, 2023
doi:

Summary

هناك حاجة إلى نموذج حيواني مناسب لفهم الآليات المرضية الكامنة وراء تضيق الصمام الأبهري (AVS) وتقييم فعالية التدخلات العلاجية. يصف البروتوكول الحالي إجراء جديدا لتطوير نموذج أرنب AVS عن طريق إصابة بالون مباشرة في الجسم الحي.

Abstract

تظهر النماذج الحيوانية كأداة مهمة لفهم الآليات المرضية الكامنة وراء تضيق الصمام الأبهري (AVS) بسبب عدم الوصول إلى مصادر موثوقة للصمامات الأبهرية البشرية المريضة. من بين النماذج الحيوانية المختلفة ، تعد نماذج أرنب AVS واحدة من أكثر النماذج استخداما في الدراسات الحيوانية الكبيرة. ومع ذلك ، تتطلب نماذج أرنب AVS التقليدية فترة طويلة الأجل من المكملات الغذائية والتلاعب الجيني للحث على تضيق كبير في الصمام الأبهري ، مما يحد من استخدامها في الدراسات التجريبية. لمعالجة هذه القيود ، تم اقتراح نموذج أرنب AVS جديد ، حيث يحدث التضيق بسبب إصابة بالون مباشرة للصمام الأبهري. يصف البروتوكول الحالي تقنية ناجحة لتحفيز AVS في الأرانب البيضاء النيوزيلندية (NZW) ، مع إجراءات خطوة بخطوة للتحضير والإجراء الجراحي والرعاية بعد الجراحة. يقدم هذا النموذج البسيط والقابل للتكرار نهجا واعدا لدراسة بدء وتطور AVS ويوفر أداة قيمة للتحقيق في الآليات المرضية الأساسية للمرض.

Introduction

من المعترف به بشكل متزايد أن استخدام النماذج الحيوانية المناسبة يمكن أن يساهم في فهم أفضل للآليات المرضية الكامنة وراء تضيق الصمام الأبهري (AVS) بسبب عدم الوصول إلى مصادر موثوقة للصمامات الأبهرية البشرية المريضة المرتبطة بتطور تضيق الأبهر (AS). من بين النماذج الحيوانية المختلفة لدراسة AVS ، تعد الأرانب واحدة من أكثر نماذج AVS للحيوانات الكبيرة شيوعا ، ويتم تحفيز نموذج أرنب AVS إما من خلال مكملات الكوليسترول / فيتامين D2 أو التلاعب الجيني1،2،3،4.

على الرغم من أن نماذج AVS للأرانب قد قدمت نظرة ثاقبة مهمة حول تطوير وتطور AVS ، إلا أنه لا يزال من الصعب تحفيز AVS باستمرار وبشكل قابل للتكرار ، كما رأينا في تجاربنا الأولية.

بالإضافة إلى النماذج الحيوانية التي يسببها النظام الغذائي والحساسة وراثيا ، تم إنشاء نموذج جديد من AVS من خلال الإصابة الميكانيكية المباشرة في الفئران 5,6. ينجح نموذج الإصابة الميكانيكية في تحفيز تضيق الأبهر ويمثل نموذجا بسيطا وقابلا للتكرار AVS في الفئران البرية. على حد علمنا ، لم تكن هناك دراسات سابقة تدرس آثار الإصابة الميكانيكية على الصمام الأبهري في نماذج الأرانب. وبالتالي ، توفر هذه الدراسة إجراء جديدا لتحفيز AVS في ذكور الأرانب البيضاء النيوزيلندية من خلال إصابة بالون مباشرة للصمام الأبهري ، والتي يمكن أن تحاكي بدقة حالة تضيق الأبهر الصمامي. يتضمن هذا البروتوكول أوصافا خطوة بخطوة للتحضير والإجراء الجراحي والرعاية بعد الجراحة ، والتي تكون مفيدة لتحفيز نماذج أرنب AVS القابلة للتكرار.

Protocol

تمت الموافقة على جميع إجراءات البحوث الحيوانية وتنفيذها وفقا لقانون رعاية المختبر ، ودليل رعاية واستخدام المختبر ، والمبادئ التوجيهية والسياسات الخاصة بالتجارب على الحيوانات المقدمة من اللجنة المؤسسية لرعاية واستخدام الحيوان (IACUC) في كلية الطب بالجامعة الكاثوليكية الكورية (رقم الموافق…

Representative Results

نموذج AVS الأرنب الناجم عن إصابة الصمام الأبهريللحث على نموذج AVS للأرانب ، تم استخدام ذكور الأرانب النيوزيلندية التي تزن 3.5-4.0 كجم لهذه الدراسة. وفقا للإجراءات الجراحية الموضحة في الخطوة 2 (الشكل 2) ، تم إنشاء نموذج AVS عن طريق إصابة الصمام الأبهري ، مما أدى إلى تنكس ا…

Discussion

ويشيع استخدام نماذج AVS الحيوانية لدراسة الجوانب المرضية للمركبات الAVS، بما في ذلك بدء وتطور AVS. يقدم هذا البروتوكول نموذجا جديدا للمركبات الخارقة للدماغ الناجم عن إصابة بالون مباشرة للصمام الأبهري. في هذه الدراسة ، أظهر نموذج إصابة الصمام الأبهري سماكة كبيرة للوريقات وتكلسها. بالمقارنة م?…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

تم دعم هذا العمل من خلال منحة المؤسسة الوطنية للبحوث الكورية (NRF) بتمويل من الحكومة الكورية (رقم 2020R1A4A3079570) ، ووزارة التعليم (رقم 2021R1I1A1A01051425) ، وبرنامج تطوير التكنولوجيا الاستراتيجية الصناعية (رقم 20014873) بتمويل من وزارة التجارة والصناعة والطاقة ، جمهورية كوريا.

Materials

3-0 Silk suture AILEE SK312
4% paraformaldehyde(PFA) Intron IBS-BP031-2
Alizarin red Solution Millpore TMS-008-C
ASAHI SION BLUE  ASAHI Guide wire
Back Table Cover Yuhan kimberly 80101-30
Balloon In-deflation Device Demax Medical DID30s
Bionet Veterinary monitor BIONET BM3 VET
C-Arm SIEMENS Healthcare GmbH Cios alpha
Certified Rabbit Diet Purina 5322 4.7% Hydrogenated Coconut Oil, 0.5% Cholesterol, & 1% Molasse
Curadle Smart Incubator Autoelex CS-CV206 Intensive Care Unit (ICU)
Ergocalciferol Sigma-aldrich  E5750 Vitamin D2
Fechtner conjunctiva forceps titanium WORLD PRECISSION Instrument WP1820
Forceps HEBU HB203
Gentamicin Shin Poong
Glycopyrrolate  SamChunDang
Greenflex NS DAI HAN PHARM Normal saline 500 mL
Hematoxylin solution Sigma-aldrich  HT1079-1 SET
Heparin JW pharmaceutical 25,000 U
Infusion set for single use SWOON MEDICAL
Iodine Green pharmaceutical
Iodixanol GE Healthcare Visipaque Inflation solution (contrast agent)
IV catheter 22 G BD  382423
IV catheter 24 G BD 382412
Ketoprofen SamChunDang
Luer-Lok syringe 10 mL Becton Dickinson Medical
Luer-Lok syringe 3 mL Becton Dickinson Medical
Microscope OLYMPUS SZ61
Microtome ThermoFisher Scientific HM 325
MT stain kit Sigma-aldrich HT15-1kt
Needel holder Solco 009-1304
Needle Holder with Lock and Suture JEUNGDO BIO & PLANT H-1222-18
Paraffin LK LABKOREA H06-660-107
PBS Gibco 10010-023
Potassium chloride 40 Daihan Pharm KCl
Prelude Ideal Hydrophilic Sheath MERIT MEDICAL PID4F11018SS Sheath 4F
PTA Balloon Dilatation catheter Boston Scientific H749-3903280208-0 Balloon catheter 8.0 mm
Rompun Elanco Xylaxine
sterile Gauze DAE HAN Medical 10 cm x 20 cm 
Surgical Gloves Ansell Ansell
Surgical Gown Yuhan kimberly 90002-02
Surgical Scissors Nopa, Germany AC020/16
Surgical Tape 3M micopore 1530-1
Syringe 1 mL Shin Chang Medical
Syringe 10 mL Shin Chang Medical
Tissue cassette Scilav korea Cas3003
Transducer gel  SUNGHEUNG SH102
Tridol Yuhan Corp. Tramadol HCl
Ultrasound system Philps Affiniti 50
Von Kossa stain kit Abcam ab105689
Zoletil 50 Virbac korea Tiletamine & zolazepam

Riferimenti

  1. Aliev, G., Burnstock, G. Watanabe rabbits with heritable hypercholesterolaemia: A model of atherosclerosis. Histology and Histopathology. 13 (3), 797-817 (1998).
  2. Cimini, M., Boughner, D. R., Ronald, J. A., Aldington, L., Rogers, K. A. Development of aortic valve sclerosis in a rabbit model of atherosclerosis: An immunohistochemical and histological study. Journal of Heart Valve Disease. 14 (3), 365-375 (2005).
  3. Drolet, M. C., Couet, J., Arsenault, M. Development of aortic valve sclerosis or stenosis in rabbits: role of cholesterol and calcium. Journal of Heart Valve Disease. 17 (4), 381-387 (2008).
  4. Sider, K. L., Blaser, M. C., Simmons, C. A. Animal models of calcific aortic valve disease. International Journal of Inflammation. 2011, 364310 (2011).
  5. Honda, S., et al. A novel mouse model of aortic valve stenosis induced by direct wire injury. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 34 (2), 270-278 (2014).
  6. Niepmann, S. T., et al. Graded murine wire-induced aortic valve stenosis model mimics human functional and morphological disease phenotype. Clinical Research in Cardiology. 108 (8), 847-856 (2019).
  7. Robbins, N., Thompson, A., Mann, A., Blomkalns, A. L. Isolation and excision of murine aorta; A versatile technique in the study of cardiovascular disease. Journal of Visualized Experiments. (93), e52172 (2014).
  8. Wirrig, E. E., Gomez, M. V., Hinton, R. B., Yutzey, K. E. COX2 inhibition reduces aortic valve calcification in vivo. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 35 (4), 938-947 (2015).
  9. Jung, S. H., et al. Spatiotemporal dynamics of macrophage heterogeneity and a potential function of Trem2(hi) macrophages in infarcted hearts. Nature Communications. 13 (1), 4580 (2022).
  10. Freeman, R. V., Otto, C. M. Spectrum of calcific aortic valve disease: Pathogenesis, disease progression, and treatment strategies. Circulation. 111 (24), 3316-3326 (2005).
  11. Lindman, B. R., et al. Calcific aortic stenosis. Nature Reviews Disease Primers. 2, 16006 (2016).
  12. Cuniberti, L. A., et al. Development of mild aortic valve stenosis in a rabbit model of hypertension. Journal of the American College of Cardiology. 47 (11), 2303-2309 (2006).
  13. Marechaux, S., et al. Identification of tissue factor in experimental aortic valve sclerosis. Cardiovascular Pathology. 18 (2), 67-76 (2009).
  14. Hara, T., et al. Progression of calcific aortic valve sclerosis in WHHLMI rabbits. Atherosclerosis. 273, 8-14 (2018).
check_url/it/65078?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Kim, E., Park, E., Kim, J., Lee, E., Park, S., Kim, C. W., Choi, I. J., Oak, M., Chang, K. A Rabbit Aortic Valve Stenosis Model Induced by Direct Balloon Injury. J. Vis. Exp. (193), e65078, doi:10.3791/65078 (2023).

View Video