في هذا البروتوكول ، نصف الإجراءات الفنية لتوليد فئران بالضربة القاضية خاصة بالأنسجة الدهنية البنية (BAT) تستفيد من نظام Cre-LoxP و CRISPR-Cas9 والفيروس المرتبط بالغدي (AAV) أحادي التوجيه (sgRNA). تشمل الخطوات الموصوفة تصميم sgRNAs ، وإعداد جزيئات AAV-sgRNA ، والحقن الدقيق ل AAV في فصوص BAT.
الأنسجة الدهنية البنية (BAT) هي مستودع دهني متخصص في تبديد الطاقة يمكن أن يكون أيضا بمثابة عضو الغدد الصماء عن طريق إفراز الجزيئات النشطة بيولوجيا. يعد إنشاء فئران بالضربة القاضية الخاصة ب BAT أحد أكثر الأساليب شيوعا لفهم مساهمة الجين ذي الأهمية في تنظيم الطاقة بوساطة BAT. كانت استراتيجية استهداف الجينات التقليدية التي تستخدم نظام Cre-LoxP هي النهج الرئيسي لتوليد فئران بالضربة القاضية خاصة بالأنسجة. ومع ذلك ، فإن هذا النهج يستغرق وقتا طويلا ومملة. هنا ، نصف بروتوكولا للضربة القاضية السريعة والفعالة لجين مهم في BAT باستخدام نظام Cre-LoxP و CRISPR-Cas9 والفيروس المرتبط بالغدي (AAV) أحادي التوجيه (sgRNA). يقع BAT بين الكتفين في الطبقة العميقة بين العضلات. وبالتالي ، يجب الكشف عن أفضل التقنيات المتاحة من أجل حقن AAV بدقة ومباشرة في BAT داخل المجال البصري. المعالجة الجراحية المناسبة أمر بالغ الأهمية لمنع تلف الأعصاب والأوعية الودية، مثل وريد سولتزر الذي يتصل بالخفافيش المضادة للضرب. لتقليل تلف الأنسجة ، هناك حاجة ماسة لفهم الموقع التشريحي ثلاثي الأبعاد ل BAT والمهارات الجراحية المطلوبة في الخطوات الفنية. يسلط هذا البروتوكول الضوء على الإجراءات الفنية الرئيسية ، بما في ذلك تصميم sgRNAs التي تستهدف الجين محل الاهتمام ، وإعداد جزيئات AAV-sgRNA ، وجراحة الحقن المجهري المباشر ل AAV في كل من فصوص BAT لتوليد الفئران بالضربة القاضية الخاصة ب BAT ، والتي يمكن تطبيقها على نطاق واسع لدراسة الوظائف البيولوجية للجينات في BAT.
تتزايد السمنة بمعدل كبير في جميع أنحاء العالم ، مما يؤدي إلى مجموعة واسعة من الأمراض الأيضية1،2،3. الأنسجة الدهنية هي مفتاح هذه الأمراض. النوعان المتميزان وظيفيا من الأنسجة الدهنية الموجودة هما الأنسجة الدهنية البيضاء (WAT) ، التي تخزن السعرات الحرارية الزائدة ، والأنسجة الدهنية البنية (BAT) والدهون ذات الصلة باللون البيج / البرايت ، والتي تبدد الطاقة من أجل توليد الحرارة. في حين تم الاعتراف BAT لوظيفتها في تبديد الطاقة ، إلا أن لها أيضا وظائف الغدد الصماء عن طريق إنتاج جزيئات نشطة بيولوجيا تنظم عملية التمثيل الغذائي في الأعضاء البعيدة 4,5. أظهرت العديد من الدراسات التي أجريت على القوارض أن زيادة كمية أو نشاط الدهون البنية أو البيج يؤدي إلى زيادة إنفاق الطاقة وتحسين حساسية الأنسولين. في البشر ، الأشخاص الذين يعانون من BAT يمكن اكتشافها لديهم معدل انتشار أقل بكثير من أمراض القلبوالأوعية الدموية 6. وبالتالي ، فإن BAT يحمل إمكانات علاجية ممتازة للعقابيل الأيضية المرتبطة بالسمنة7،8،9.
للتحقيق في علم وظائف الأعضاء والفيزيولوجيا المرضية لتطور BAT ووظيفتها ولتوضيح الآليات الجزيئية المشاركة في هذه العمليات ، فإن نموذج الماوس المعدل وراثيا الخاص ب BAT هو طريقة الاختيار10. نظام إعادة التركيب Cre-LoxP هو الوسيلة الأكثر استخداما لإنتاج فئران خروج المغلوب الشرطية عن طريق تحرير جينوم الفأر. وقد مكن هذا النظام من تعديل (الإفراط في التعبير أو الضربة القاضية) للجينات ذات الأهمية بطريقة خاصة بالأنسجة / الخلايا11. يمكن استخدامه أيضا لتسمية نوع معين من الخلايا عن طريق التعبير عن جين مراسل فلوري انتقائي.
في الآونة الأخيرة ، تم تطوير نهج نظام Cre-LoxP بشكل أكبر من خلال الجمع بين تقنية CRISPR-Cas9 ونظام الحمض النووي الريبي أحادي التوجيه (sgRNA) المرتبط بالفيروس الغدي (AAV)12. نظام CRISPR-Cas9 هو أداة محددة وفعالة لتحرير الجينات لتعديل أو تنظيم أو استهداف مناطق دقيقة من الجينوم13. يسمح تحرير الجينوم القائم على CRISPR-Cas9 بالتلاعب الجيني السريع للمواقع الجينومية لأنه لا يتطلب إعادة التركيب المتماثل مع ناقل استهداف الجينات. تمكن تقنيات Cre-LoxP و CRISPR-Cas9 و AAV-sgRNA المشتركة الباحثين من فهم وظائف الجينات بشكل أكثر دقة من خلال السماح بالتحقيق في دور الجينات ذات الأهمية في الأوقات المرغوبة في الأنسجة / الخلايا. بالإضافة إلى ذلك ، تقلل هذه التقنيات مجتمعة من الوقت والجهد اللازمين لتوليد الفئران المعدلة وراثيا وتسمح بالتحكم الزمني في نشاط CRISPR-Cas9 لتحرير الجينوم المستحث في الفئران إذا تم استخدام خط Cre المستحث14.
نواقل AAV آمنة وفعالة في أنظمة توصيل الجينات في الجسم الحي. ومع ذلك ، فإن AAVs التي تستهدف الأنسجة الدهنية قد تخلفت عن التطبيقات في الأنسجة الأخرى ، مثل الدماغ والقلب والكبد والعضلات15. نظرا لكفاءة النقل المنخفضة نسبيا والانتحاء مع نواقل النمط المصلي التي تحدث بشكل طبيعي ، لا يزال توصيل الجينات الموجهة ب AAV إلى الأنسجة الدهنية يمثل تحديا15. على مدى السنوات ال 5 الماضية ، نجحنا نحن وآخرون في إنشاء طرق فعالة وطفيفة التوغل لتوصيل الجينات الموجهة ب AAV إلى الأنسجة الدهنية وإنشاء نماذج فأر تسمح لنا بفهم الجينات المشاركة في تنظيم وظيفة BAT16،17،18،19. على سبيل المثال ، باستخدام AAV8 لتوصيل sgRNA الذي يستهدف Alox12 ، والذي يشفر 12-lipoxygenase (12-LOX) ، إلى BAT للفئران Ucp1-Cre / Cas9 ، اكتشفنا أن BAT المنشط ينتج مستقلبات 12-LOX ، وهي حمض 12-hydroxy-eicosapentaenoic (12-HEPE) و 13R ، 14S-dihydroxy docosahexaenoic acid (maresin 2) ، لتنظيم استقلاب الجلوكوز وحل الالتهابات المرتبطة بالسمنة ، على التوالي16 ، 17. هنا ، نقدم بروتوكولا خطوة بخطوة بشأن الإجراءات الفنية ، لا سيما جراحة الحقن المجهري المباشر ل AAV-sgRNA في فصوص BAT ، لتوليد فئران خروج المغلوب الخاصة ب BAT باستخدام نظام Cre-LoxP و CRISPR-Cas9 و AAV-sgRNA المدمج.
لا تحتوي الطرق المنشورة الحالية لتوصيل الجينات بوساطة AAV إلى BAT بين الكتفين على صور ومقاطع فيديو مفصلة تصف التقنيات الجراحية ونهج الحقن المباشر ل AAV في BAT. في معظم الطرق المنشورة33,34 ، يتم حقن AAV في الأنسجة الدهنية المحيطة ب BAT بين الكتفين بدلا من BAT نفسها. وبالت?…
The authors have nothing to disclose.
تم دعم هذا العمل جزئيا من خلال منح المعاهد الوطنية الأمريكية للصحة (NIH) R01DK122808 و R01DK102898 و R01DK132469 (إلى Y.-H.T.) ، وكذلك P30DK036836 (إلى مركز أبحاث السكري التابع لمركز جوسلين للسكري). تم دعم T. T. من قبل زمالة SUNSTAR البحثية (منحة Hiroo Kaneda ، مؤسسة Sunstar ، اليابان) ومنحة جمعية القلب الأمريكية 903968. تم دعم Y. Z. من قبل زمالة Charles A. King Trust. نشكر شون د. كوداني على تفضله بتدقيق المخطوطة.
Chemicals, Peptides and Recombinant Proteins | |||
OPTI-MEM serum-free medium | Invitrogen | 31985 | |
Polybrene Infection / Transfection Reagent | Sigma | TR-1003-G | |
TransIT-LT1 Transfection Reagent | Mirus | MIR 2300 | |
Recombinant DNA | |||
lentiCRISPR v2 vector | Addgene | 52961 | |
pAAV-U6-BbsI-gRNA-CB-EmGFP | Addgene | 89060 | |
pMD2.G envelope plasmid | Addgene | 12259 | |
psPAX2 packaging plasmid | Addgene | 12260 | |
Experimental Models: Cell Lines | |||
HEK-293 cells | ATCC | CRL-1573 | |
WT-1 cells | Developed in Tseng lab | PMID: 14966273 | |
Experimental Models: Organisms/Strains | |||
Cas9 knockin mice | Jackson Laboratories | 24857 | |
Ucp1-CRE mice | Jackson Laboratories | 24670 | |
Others | |||
Banamine | Patterson | 07-859-1323 | |
Hamilton syringe | Hamilton | Model 710 RN Syringe | |
Hydrogen peroxide solution | Fisher Scientific | H325-500 | |
Needle | Hamilton | 32 gauge, small hub RN needle, needle point style 2 | |
Suture 5-0 Unify PCL25 P-3 Undyed 18 inch Monofilament 12/Bx | Henry Schein | 1273504 | |
Suture 5-0 Unify Silk P-3 Black 18 inch 12/Bx | Henry Schein | 1294522 |