기기 엔지니어링을 통한 다운스트림 병원균 검출을 위한 Citrus Budwood 가공 자동화
Summary
우리는 체관부가 풍부한 나무 껍질 감귤류 새싹 조직을 신속하게 처리하는 도구를 설계, 제작 및 검증했습니다. 현재 방법에 비해 버드우드 조직 추출기(BTE)는 시료 처리량을 늘리고 필요한 인건비 및 장비 비용을 절감했습니다.
Abstract
바이러스, 바이로이드 및 박테리아와 같은 감귤류의 이식편 전염성, 체관 제한 병원체는 전 세계적으로 치명적인 전염병과 심각한 경제적 손실을 초래합니다. 예를 들어, 감귤류 트리스테자 바이러스는 전 세계적으로 1억 그루 이상의 감귤 나무를 죽인 반면, “칸디다투스 리베리박터 아시아티쿠스“는 플로리다에 90억 달러의 비용을 초래했습니다. 나무 번식을 위해 병원균 테스트를 거친 감귤류 새싹을 사용하는 것이 이러한 병원균 관리의 핵심입니다. 캘리포니아 대학교 리버사이드의 감귤 클론 보호 프로그램(CCPP)은 중합효소연쇄반응(PCR) 분석을 사용하여 매년 감귤류 새싹나무에서 수천 개의 샘플을 테스트하여 캘리포니아의 감귤류를 보호하고 국립 청정 식물 네트워크에 청정 번식 장치를 제공합니다. 감귤류 바이러스와 바이로이드의 고처리량 분자 검출에서 심각한 병목 현상은 식물 조직 처리 단계입니다.
적절한 조직 준비는 고품질 핵산의 추출과 PCR 분석의 다운스트림 사용에 매우 중요합니다. 핵산 분해를 방지하기 위해 저온에서 식물 조직 절단, 계량, 동결 건조, 분쇄 및 원심분리는 시간과 노동 집약적이며 고가의 특수 실험실 장비가 필요합니다. 이 논문은 감귤류 새싹나무에서 체관부가 풍부한 껍질 조직을 신속하게 처리하도록 설계된 특수 기구인 버드우드 조직 추출기(BTE)의 검증을 제시합니다. BTE는 현재 방법에 비해 시료 처리량을 100% 증가시킵니다. 또한 노동력과 장비 비용을 절감합니다. 이 연구에서, BTE 샘플은 CCPP의 핸드 베핑 프로토콜 (77.84 ng / μL)과 비슷한 DNA 수율 (80.25 ng / μL)을 가졌다. 이 기기와 신속한 식물 조직 처리 프로토콜은 캘리포니아의 여러 감귤 진단 실험실 및 프로그램에 도움이 될 수 있으며 전 세계의 다른 목본 다년생 작물에 대한 조직 처리를 위한 모델 시스템이 될 수 있습니다.
Introduction
바이로이드, 바이러스 및 박테리아와 같은 감귤류의 이식편 전염성 체관 제한 병원체는 전 세계 모든 감귤 생산 지역에서 치명적인 전염병과 심각한 경제적 손실을 초래했습니다. 감귤류 바이로이드는 삼엽충, 삼엽충 잡종, 만다린, 클레멘타인 및 귤과 같은 경제적으로 중요한 감귤류 유형에서 유발하는 엑소코르티스 및 악액질 질환때문에 생산 인자를 제한하고 있다 1,2,3. 캘리포니아에서 이러한 바이로이드에 민감한 감귤류 유형은 껍질을 벗기기 쉽고, 세분화되고, 씨가 없는 과일에 대한 소비자의 선호도 변화 추세에 따라 성장하고 수익성 있는 “이지필러” 시장의 기반이 됩니다 4,5,6. 따라서 감귤류 바이로이드는 캘리포니아 식품 농업부(CDFA)의 “감귤류 묘목 해충 청결 프로그램-상원 법안 140″에 따라 규제되며 CDFA의 식물 해충 진단 부서의 실험실은 매년 수천 건의 감귤류 바이로이드 테스트를 수행합니다 7,8,9,10 . 감귤류 트리스테자 바이러스(CTV)는 1930년대전 세계적으로 전염병이 시작된 이래로 1억 그루 이상의 감귤 나무의 죽음을 초래했습니다 3,9,10,11. 캘리포니아에서는 줄기 구멍과 삼엽충 파괴 저항성 바이러스 분리가 36억 달러 규모의 캘리포니아 감귤 산업에 심각한 위협이 되고 있습니다12,13,14. 결과적으로 CDFA는 CTV를 규제 된 클래스 A 식물 해충으로 분류하고 CCTEA (Central California Tristeza Eradication Agency)의 실험실은 매년 광범위한 현장 조사와 수천 건의 바이러스 테스트를 수행합니다15,16. 박테리아 “Candidatus Liberibacter asiaticus“(CLas)와 황룡빙(HLB) 질병은 감귤 면적의 40% 감소, 감귤 운영의 57% 감소, 거의 8,000개의 일자리 손실의 결과로 플로리다에 거의 90억 달러의 경제적 피해를 입힌 것으로 추정됩니다17,18. 캘리포니아에서는 HLB로 인해 감귤 재배 면적이 20% 감소하면 8,200개 이상의 일자리가 손실되고 주 국내총생산(GDP)이 50억 달러 이상 감소할 것으로 예측되었습니다. 따라서 감귤류 해충 및 질병 예방 프로그램은 캘리포니아14,17,19,20에서 CLa를 테스트, 탐지 및 근절하기 위한 조사에 연간 4천만 달러 이상을 지출합니다.
감귤류 바이로이드, 바이러스 및 박테리아 관리의 핵심 요소는 나무 생산을 위해 병원균 테스트를 거친 번식 물질(즉, 새싹나무)을 사용하는 것입니다. 병원균 테스트를 거친 감귤류 새싹나무는 고급 병원균 제거 및 검출 기술을 사용하는 포괄적인 검역 프로그램 내에서 생산 및 유지됩니다10,21. 캘리포니아 대학교 리버사이드의 감귤 클론 보호 프로그램(CCPP)은 캘리포니아의 감귤류를 보호하고 감귤류를 위한 전국 청정 식물 네트워크(National Clean Plant Network for Citrus10,17,22)의 기능을 지원하기 위해 주와 미국으로 새로 수입된 감귤 품종과 감귤류 새싹 나무에서 매년 수천 개의 새싹나무 샘플을 테스트합니다. 대량의 감귤류 검사를 처리하기 위해 높은 처리량, 신뢰할 수 있고 비용 효율적인 병원체 검출 분석은 CCPP 7,10,22와 같은 프로그램의 성공을 위한 기본 구성 요소입니다.
중합효소연쇄반응(PCR)과 같은 분자 기반 병원체 검출 분석을 통해 식물 진단 실험실에서 처리량을 크게 늘릴 수 있었지만, 경험상 고처리량 프로토콜 구현에서 가장 중요한 병목 현상 중 하나는 식물 조직 샘플 처리 단계입니다. 잎자루와 새싹 나무 껍질과 같은 체관부가 풍부한 조직을 처리하기 위해 현재 사용 가능한 프로토콜은 노동 집약적이고 시간이 많이 걸리며 값 비싸고 전문화 된 실험실 장비가 필요하기 때문에 감귤류의 경우 특히 그렇습니다. 이러한 프로토콜은 핵산 분해를 피하기 위해 저온에서 손으로 자르고, 무게를 측정하고, 동결건조하고, 분쇄하고, 원심분리하는 것을 필요로 한다 8,23,24. 예를 들어, CCPP 진단 실험실에서 샘플 처리에는 (i) 손 자르기(6-9 samples/h/operator), (ii) 동결 건조(16-24시간), (iii) 분쇄(30-60초) 및 (iv) 원심분리(1-2시간). 또한 이 공정에는 특수 소모품(예: 견고한 안전 잠금 튜브, 스테인리스 스틸 연삭 볼, 어댑터, 블레이드, 장갑)과 여러 개의 고가의 실험실 장비(예: 초저온 냉동고, 동결 건조기, 조직 분쇄기, 액체 질소 냉동 장치, 냉장 원심 분리기)가 필요합니다.
모든 산업과 마찬가지로 장비 엔지니어링 및 프로세스 자동화는 비용을 절감하고 처리량을 늘리며 고품질의 균일한 제품과 서비스를 제공하는 데 핵심적인 역할을 합니다. 감귤 산업은 작동에 최소한의 기술이 필요하며, 따라서 신속한 다운스트림 병원균 검출을 위한 높은 샘플 처리 용량을 허용하기 위해 진단 실험실 및 현장 작업으로 쉽게 이전할 수 있는 저비용 조직 처리 기기가 필요합니다. TES(Technology Evolving Solutions)와 CCPP는 체관부가 풍부한 감귤 조직(즉, 버드우드)의 신속한 처리를 위한 저비용(즉, 특수 실험실 장비의 필요성 제거) 기기를 개발(즉, 설계 및 제작) 및 검증(즉, 감귤 샘플로 테스트하고 표준 실험실 절차와 비교)했으며, 이는 버드우드 조직 추출기(BTE)라고 합니다. 그림 1에서 볼 수 있듯이 BTE에는 전력 및 제어를 위한 기본 구성 요소와 감귤 버드우드 가공을 위한 탈착식 챔버가 포함되어 있습니다. BTE 챔버는 감귤류 새싹에서 체관부가 풍부한 껍질 조직을 벗겨내도록 특별히 설계된 연삭 휠로 구성됩니다. 파쇄된 껍질 조직은 슬라이드 포트를 통해 추출 완충액이 들어 있는 주사기로 빠르게 배출되고, 여과되며, 추가 취급이나 준비 없이 핵산 추출 및 정제를 위해 준비됩니다(그림 1). BTE 시스템에는 종이 없는 샘플 추적 애플리케이션과 통합 계량 애플리케이션이 포함되어 있어 샘플 처리 정보를 온라인 데이터베이스에 실시간으로 기록합니다.
BTE 시스템은 CCPP의 실험실 진단 능력을 100% 이상 증가시켰으며 PCR 분석을 사용하여 고품질 핵산의 정제 및 감귤류의 이식편 전염성 병원체의 다운스트림 검출에 적합한 감귤류 조직 추출물을 지속적으로 생산했습니다. 보다 구체적으로, BTE는 조직 처리 시간을 샘플 당 24 시간 이상에서 ~ 3 분으로 단축하고 $ 60,000 이상의 비용이 드는 실험실 장비를 교체했으며 (그림 2, 2-4 단계) 더 큰 샘플 크기를 처리 할 수있었습니다.
이 논문은 각각 CCPP Rubidoux 검역 시설 및 Lindcove 재단 시설의 모든 적절한 양성 및 음성 대조군을 포함하여 소스 나무의 감귤 새싹 샘플을 사용한 BTE 고처리량 감귤 껍질 조직 처리, 핵산 추출 및 병원체 검출 검증 데이터를 제시합니다. 또한 현재 실험실 절차와 비교한 처리량 및 처리 시간 변화를 제시합니다(그림 2). 또한 이 작업은 감귤류 병원균 테스트 실험실을 위한 상세한 단계별 프로토콜을 제공하고 BTE가 병원균 청정 종묘장, 조사 및 박멸 프로그램의 기능을 지원할 수 있는 방법을 보여줍니다.
그림 1: 버드우드 조직 추출기. BTE에는 전원 및 제어를위한 기본 구성 요소와 감귤류 버드 우드 처리를위한 탈착식 챔버가 포함되어 있습니다. BTE 챔버는 감귤류 새싹에서 체관부가 풍부한 껍질 조직을 벗겨내도록 특별히 설계된 연삭 휠로 구성됩니다. 파쇄된 껍질 조직은 슬라이드 포트를 통해 주사기로 빠르게 배출되고 여과되며 추가 취급이나 준비 없이 핵산 추출 및 정제를 위해 준비됩니다. 약어: BTE = budwood tissue extractor. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 2: 기존의 수동 절단 실험실 절차와 BTE 공정 간의 단계별 비교. BTE 처리는 고처리량 감귤류 껍질 조직 처리, 핵산 추출 및 병원체 검출을 포함한다. 각 단계의 시간은 괄호 안에 표시됩니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.
Protocol
Representative Results
Discussion
HLB 감귤병의 출현과 함께 손실을 줄이기 위해 감귤 산업, 규제 기관 및 진단 실험실은 질병 관리 관행과 함께 개별 나무 테스트를 위해 qPCR34 와 같은 저처리량 수동 샘플 처리 및 병원체 검출 분석과 결합된 고처리량 핵산 추출 방법에 의존할 것을 촉구받았습니다35. 캘리포니아의 HLB 양성률은 2012년 0.01%에서 2020년 1.2%로 증가했습니다. qPCR은 강력하고 신뢰할 수 …
Divulgazioni
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
저자는 Cahuilla 사람들을 실험 작업이 완료된 땅의 전통적인 관리인으로 인정합니다. UCR California Agriculture and Food Enterprise(CAFE) 이니셔티브에 따라 이 프로젝트를 위한 연구 활동을 수행할 수 있는 실험실 공간을 제공한 University of California, Riverside의 Norman Ellstrand 교수에게 감사드립니다. 이 연구는 CDFA – 특수 작물 블록 보조금 프로그램(보조금 번호 18-0001-055-SC)의 지원을 받았습니다. CRB 프로젝트 6100에서도 추가 지원이 제공되었습니다. USDA 국립 식량 농업 연구소, 해치 프로젝트 1020106; Georgios Vidalakis에게 수여 된 National Clean Plant Network-USDA Animal and Plant Health Inspection Service (AP17PPQS &T00C118, AP18PPQS &T00C107, AP19PPQS &T00C148, & AP20PPQS &T00C049)가 수여되었습니다.
Materials
| 0.08" Hex Trimmer line | PowerCare | FPRO07065 | Needed to replace blades. |
| 1 Hp, 8 gal air compressor | California Air Tools | 8010 | Quickly dry chambers after rinsed |
| 1.5 mL microcentrifuge tube | Globe Scientific | 111558B | Store sample in after swishing with syinges |
| 10 mL Syringe Set | Technology Evolving Solutions | TE006-F1-10A-G1000-E1 | Syringe material is cut into. 1 L bottle with guanidine thiocyanate buffer. WARNING – contains guanidine thiocyanate, hazardous waste service required – do not mix with bleach |
| 12" Ruler | Westcott | 16012 | To measure trimmer line before cutting |
| 12% Sodium Hypochlorite | Hasa | 1041 | Disinfects chambers after processing |
| -20 C Freezer | Insignia | NS-CZ70WH0 | Store sample after processing |
| 4" x 12" plastic bags | Plymor | FP20-4×12-10 | Bags to hold branches during shipping. O-rings attach bag to BTE chamber to seal |
| 6" Cotton Swab | Puritan | 806-PCL | Swab to remove clogs |
| 7 Gallon Storage Tote | HDX | 206152 | Holds sodium hypochlorite solution to disinfect chambers and water to rinse chambers |
| Air blow gun | JASTIND | JTABG103A | Directs air into the chambers at high pressure |
| Black Sharpie | Sharpie | S-19421 | Mark 1.5 mL tubes so you can identify sample later |
| Bottle Top Dispensor | Brand | Z627569 | Adjustable bottle top dispensor to dispense guandine into syringe |
| BTE Chamber | Technology Evolving Solutions | TE002BB-A05-E1 | Used to process budwood. Includes O-rings, BTE Slide, slide plunger, drain valve, lid, blade set, and blade set removal tool |
| Dish Soap | Dawn | 57445CT | Surfectant to improve sodium hypochlorite penetration into chamber |
| Fume hood with hepa filter | Air Science | P5-36XT-A | Fume hood with hepa filter (ASTS-030) to limit possible contamination and protect against chemical spills |
| Insulated foam shipping container | PolarTech | 261/J50C | Insulated shipping container to ship samples on ice after they are collected |
| Lab coat | Red Kap | KP14WH LN 46 | Lab coat to limit possible contamination and protect against chemical spills |
| Laptop | Microsoft | Surface | Wifi capable laptop to run TES GUI. Needed for initial setup and provides more indepth information about the tissue processing base |
| NFC Capable Phone | Samsung | Galaxy S9 | Phone to download and use TES phone app |
| NFC clip tag | Technology Evolving Solutions | TE005-Clip-E1 | Sample tag that can be linked with trees. Made to function with TES phone app |
| NFC Collar Tag | Technology Evolving Solutions | TE005-Collar-E1 | Tag that is attached to a tree. Made to function with TES phone app |
| Nitrile Gloves | Usa Scientific | 3915-4400 | Gloves to limit possible contamination and protect against chemical spills |
| Noise-Reducing Earmuff | 3M | 90565-4DC-PS | Protect ears while operating air compressor and tissue processing base |
| Polyurethane Recoil Air Hose | FYPower | 510019 | Attaches air gun to compressor |
| Saftey glasses | Solidwork | SW8329-US | Protect eyes for chemical and physical hazards |
| Spray bottle | JohnBee | B08QM81BJV | Spray bleach to deconatinate surfaces |
| Tissue Extractor Base | Technology Evolving Solutions | TE001-A-E1 | System to process plant tissue. Needs BTE or LTE chambers to function. Includes power cable, blade adapter, and 8/32" allen wrench |
| Tissue Processing Base Weight Scale | Technology Evolving Solutions | TE003-A05-200g-01-E1 | 200 g, 0.01 resolution weight scale that connects to tissue processing base to enforce weight ranges and/or link weights with sample. Includes scale, power cable, connection cable, 5ml syringe holder, tower air shield |
| Vermiculite | EasyGoProducts | B07WQDZGRP | Needed to transport hazardous waste (guanidine thiocyanate) using a hazardous waste disposal service |
| Wire Cutter | Boenfu | BOWC-06002-US | Wire cutters to cut trimmer line |
Riferimenti
- Vernière, C., et al. Interactions between citrus viroids affect symptom expression and field performance of clementine trees grafted on trifoliate orange. Phytopathology. 96 (4), 356-368 (2006).
- Vernière, C., et al. Citrus viroids: Symptom expression and effect on vegetative growth and yield of clementine trees grafted on trifoliate orange. Plant Disease. 88 (11), 1189-1197 (2004).
- Zhou, C., Talon, M., Caruso, M., Gmitter, F. G., et al. Chapter 19 – Citrus viruses and viroids. The Genus Citrus. , 391-410 (2020).
- Trends and issues facing the U.S. citrus industry. Choices Magazine Online Available from: https://www.choicesmagazine.org/choices-magazine/theme-articles/trends-and-challenges-in-fruit-and-tree-nut-sectors/trends-and-issues-facing-the-us-citrus-industry (2021)
- Fruit and Tree Nuts Outlook. United States Department of Agriculture-Economic Research Service Available from: https://www.ers.usda.gov/webdocs/outlooks/98171/fts-370.pdf?v=5697 (2020)
- Forsyth, J., Fruits Damiani, J. C. i. t. r. u. s. Citrus Fruits. Types on the market. Encyclopedia of Food Sciences and Nutrition. , 1329-1335 (2003).
- Bostock, R. M., Thomas, C. S., Hoenisch, R. W., Golino, D. A., Vidalakis, G. Plant health: How diagnostic networks and interagency partnerships protect plant systems from pests and pathogens. California Agriculture. 68 (4), 117-124 (2014).
- Osman, F., Dang, T., Bodaghi, S., Vidalakis, G. One-step multiplex RT-qPCR detects three citrus viroids from different genera in a wide range of hosts. Journal of Virological Methods. 245, 40-52 (2017).
- Wang, J., et al. Past and future of a century old Citrus tristeza virus collection: A California citrus germplasm tale. Frontiers in Microbiology. 4, 366 (2013).
- Gergerich, R. C., et al. Safeguarding fruit crops in the age of agricultural globalization. Plant Disease. 99 (2), 176-187 (2015).
- Moreno, P., Ambrós, S., Albiach-Martí, M. R., Guerri, J., Peña, L. Citrus tristeza virus: A pathogen that changed the course of the citrus industry. Molecular Plant Pathology. 9 (2), 251-268 (2008).
- Yokomi, R. K., et al. Identification and characterization of Citrus tristeza virus isolates breaking resistance in trifoliate orange in California. Phytopathology. 107 (7), 901-908 (2017).
- Selvaraj, V., Maheshwari, Y., Hajeri, S., Yokomi, R. A rapid detection tool for VT isolates of Citrus tristeza virus by immunocapture-reverse transcriptase loop-mediated isothermal amplification assay. PLoS One. 14 (9), 0222170 (2019).
- Babcock, B. A. Economic impact of California’s citrus industry in 2020. Journal of Citrus Pathology. 9, (2022).
- Gottwald, T. R., Polek, M., Riley, K. History, present incidence, and spatial distribution of Citrus tristeza virus in the California central valley. International Organization of Citrus Virologists Conference Proceedings (1957-2010). 15, (2002).
- Yokomi, R., et al. Molecular and biological characterization of a novel mild strain of citrus tristeza virus in California. Archives of Virology. 163 (7), 1795-1804 (2018).
- Fuchs, M., et al. Economic studies reinforce efforts to safeguard specialty crops in the United States. Plant Disease. 105 (1), 14-26 (2021).
- The real cost of HLB in Florida. Citrus Industry Magazine Available from: https://citrusindustry.net/2019/07/30/the-real-cost-of-hib-in-florida/ (2019)
- McRoberts, N., et al. Using models to provide rapid programme support for California’s efforts to suppress Huanglongbing disease of citrus. Philosophical Transactions of the Royal Society B: Biological Sciences. 374 (1776), 20180281 (2019).
- Albrecht, C., et al. Action plan for Asian citrus psyllid and huanglongbing (citrus greening) in California. Journal of Citrus Pathology. 7 (1), (2020).
- Navarro, L., et al. The Citrus Variety Improvement Program in Spain in the period 1975-2001. International Organization of Citrus Virologists Conference Proceedings (1957-2010). 15 (15), (2002).
- Vidalakis, G., Gumpf, D. J., Polek, M. L., Bash, J. A., Ferguson, L., Grafton-Cardwell, E. E. The California Citrus Clonal Protection Program. Citrus Production Manual. , 117-130 (2014).
- Dang, T., Rao, A. L. N., Lavagi-Craddock, I., Vidalakis, G., et al. High-throughput RNA extraction from citrus tissues for the detection of viroids. In Viroids: Methods and Protocols. 2316, (2022).
- Osman, F., Vidalakis, G., Rao, A. L. N., Lavagi-Craddock, I., Vidalakis, G. Real-time detection of viroids using singleplex and multiplex quantitative polymerase chain reaction. Viroids: Methods and Protocols. 2316, (2022).
- Li, R., et al. A reliable and inexpensive method of nucleic acid extraction for the PCR-based detection of diverse plant pathogens. Journal of Virological Methods. 154 (1-2), 48-55 (2008).
- Saponari, M., Manjunath, K., Yokomi, R. K. Quantitative detection of Citrus tristeza virus in citrus and aphids by real-time reverse transcription-PCR (TaqMan). Journal of Virological Methods. 147 (1), 43-53 (2008).
- Damaj, M. B., et al. Reproducible RNA preparation from sugarcane and citrus for functional genomic applications. International Journal of Plant Genomics. 2009, 765367 (2009).
- Dang, T., et al. First report of citrus leaf blotch virus infecting Bearss lime tree in California. Plant Disease. 104 (11), 3088 (2020).
- Manchester, K. L. Use of UV methods for measurement of protein and nucleic acid concentrations. BioTechniques. 20 (6), 968-970 (1996).
- Teare, J. M., et al. Measurement of nucleic acid concentrations using the DyNA QuantTM and the GeneQuantTM. BioTechniques. 22 (6), 1170-1174 (1997).
- Imbeaud, S. Towards standardization of RNA quality assessment using user-independent classifiers of microcapillary electrophoresis traces. Nucleic Acids Research. 33 (6), 56-56 (2005).
- Menzel, W., Jelkmann, W., Maiss, E. Detection of four apple viruses by multiplex RT-PCR assays with coamplification of plant mRNA as internal control. Journal of Virological Methods. 99 (1-2), 81-92 (2002).
- Vidalakis, G., Rao, A. L. N., Lavagi-Craddock, I., Vidalakis, G., et al. SYBR Green RT-qPCR for the universal detection of citrus viroids. Viroids: Methods and Protocols. , 211-217 (2022).
- Arredondo Valdés, R., et al. A review of techniques for detecting Huanglongbing (greening) in citrus. Canadian Journal of Microbiology. 62 (10), 803-811 (2016).
- Li, S., Wu, F., Duan, Y., Singerman, A., Guan, Z. Citrus greening: Management strategies and their economic impact. HortScience. 55 (5), 604-612 (2020).
- . CDFA California Citrus Pest and Disease Prevention Program Operations Subcomittee Meeting. Meeting Minutes Available from: https://www.cdfa.ca.gov/citrus/docs/minutes/2019/OpsSubcoMinutes-11062019.pdf (2019)
