Summary

Bruke MouseWalker til å kvantifisere lokomotorisk dysfunksjon i en musemodell av ryggmargsskade

Published: March 24, 2023
doi:

Summary

En eksperimentell rørledning for kvantitativt å beskrive det lokomotoriske mønsteret til fritt gående mus ved hjelp av MouseWalker (MW) verktøykasse er gitt, alt fra innledende videoopptak og sporing til postkvantifiseringsanalyse. En ryggmargskontusjonsskademodell hos mus brukes til å demonstrere nytten av MW-systemet.

Abstract

Gjennomføringen av komplekse og høyt koordinerte motoriske programmer, som å gå og løpe, er avhengig av rytmisk aktivering av spinal- og supra-spinalkretser. Etter en thorax ryggmargsskade er kommunikasjonen med oppstrøms kretser svekket. Dette fører igjen til tap av koordinering, med begrenset utvinningspotensial. Derfor, for bedre å evaluere graden av utvinning etter administrering av legemidler eller terapier, er det behov for nye, mer detaljerte og nøyaktige verktøy for å kvantifisere gange, lemkoordinering og andre fine aspekter av lokomotorisk oppførsel i dyremodeller av ryggmargsskade. Flere analyser har blitt utviklet gjennom årene for å kvantitativt vurdere frittgående oppførsel hos gnagere; Imidlertid mangler de vanligvis direkte målinger relatert til trinnvise gangstrategier, fotavtrykksmønstre og koordinering. For å løse disse manglene, tilbys en oppdatert versjon av MouseWalker, som kombinerer en frustrert total intern refleksjon (fTIR) gangvei med sporings- og kvantifiseringsprogramvare. Dette open source-systemet er tilpasset for å trekke ut flere grafiske utganger og kinematiske parametere, og et sett med postkvantifiseringsverktøy kan være å analysere utdataene. Dette manuskriptet viser også hvordan denne metoden, alliert med allerede etablerte atferdstester, kvantitativt beskriver bevegelsesutfall etter ryggmargsskade.

Introduction

Den effektive koordineringen av fire lemmer er ikke unik for quadruped dyr. Forben-baklem-koordinasjon hos mennesker er fortsatt viktig for å utføre flere oppgaver, for eksempel svømming og hastighetsendringer mens du går1. Ulike lem kinematisk2 og motorprogram 1,3,4, samt proprioceptive tilbakemeldingskretser5, er konservert mellom mennesker og andre pattedyr og bør vurderes ved analyse av terapeutiske alternativer for motoriske lidelser, som ryggmargsskade (SCI) 6,7,8.

For å kunne gå, må flere spinalforbindelser fra forben og baklemmer være riktig kablet og rytmisk aktivert, noe som krever innganger fra hjernen og tilbakemelding fra det somatosensoriske systemet 2,9,10. Disse forbindelsene kulminerer i de sentrale mønstergeneratorene (CPG), som ligger på livmorhals- og lumbalnivå for forbenene og baklemmene, henholdsvis 1,9,10. Ofte, etter SCI, begrenser forstyrrelsen av nevronal tilkobling og dannelsen av et hemmende glialarr12 gjenopprettingen av lokomotorisk funksjon, med utfall som varierer fra total lammelse til begrenset funksjon av en gruppe lemmer avhengig av skadens alvorlighetsgrad. Verktøy for presis kvantifisering av bevegelsesfunksjon etter ryggmargsskade er avgjørende for å overvåke tilfriskning og evaluere effekten av behandlinger eller andre kliniske intervensjoner6.

Standard metrisk analyse for musekontusjonsmodeller av SCI er Basso-museskalaen (BMS) 13,14, en ikke-parametrisk poengsum som vurderer stammestabilitet, haleposisjon, plantartrapping og forben-bakben-koordinering i en åpen feltarena. Selv om BMS er ekstremt pålitelig i de fleste tilfeller, krever det minst to erfarne ratere å observere alle vinkler av dyrs bevegelse for å ta hensyn til naturlig variabilitet og redusere skjevhet.

Andre analyser er også utviklet for å vurdere motorens ytelse etter SCI kvantitativt. Disse inkluderer rotarod-testen, som måler tid brukt på en roterende sylinder15; den horisontale stigen, som måler antall tapte rekkverk og positiv stige griper16,17; og strålegangtesten, som måler tiden et dyr tar og antall feil det gjør når det krysser en smal bjelke18. Til tross for at de reflekterer en kombinasjon av motoriske underskudd, gir ingen av disse testene direkte lokomotorisk informasjon om koordinering mellom forben og baklem.

For å spesifikt og grundigere analysere gangadferd, har andre analyser blitt utviklet for å rekonstruere trinnsykluser og gangstrategier. Et eksempel er fotavtrykkstesten, der de blekkede potene til et dyr tegner et mønster over et ark med hvitt papir19. Selv om det er enkelt i utførelsen, er det tungvint og unøyaktig å trekke ut kinematiske parametere som skrittlengde. Videre begrenser mangelen på dynamiske parametere, for eksempel varigheten av trinnsyklusen eller koordinering av ben, dens applikasjoner; Faktisk kan disse dynamiske parametrene bare kjøpes ved å analysere ramme-for-ramme-videoer av gnagere som går gjennom en gjennomsiktig overflate. For SCI-studier har forskere analysert gangadferd fra en lateral visning ved hjelp av tredemølle, inkludert rekonstruksjon av trinnsyklusen og måling av vinkelvariasjonene i hvert benledd 4,20,21. Selv om denne tilnærmingen kan være ekstremt informativ6, forblir den fokusert på et bestemt sett med lemmer og mangler ekstra gangfunksjoner, for eksempel koordinering.

For å fylle disse hullene utviklet Hamers og kolleger en kvantitativ test basert på en optisk berøringssensor ved hjelp av frustrert total intern refleksjon (fTIR)22. I denne metoden forplanter lyset seg gjennom glass via intern refleksjon, blir spredt ved potepressing, og til slutt fanges det av et høyhastighetskamera. Mer nylig ble en åpen kildekode-versjon av denne metoden, kalt MouseWalker, gjort tilgjengelig, og denne tilnærmingen kombinerer en fTIR-gangvei med en sporings- og kvantifiseringsprogramvarepakke23. Ved hjelp av denne metoden kan brukeren trekke ut et stort sett med kvantitative parametere, inkludert trinn-, rom- og gangmønstre, fotavtrykksposisjonering og koordinering av forben-baklemmer, samt visuelle utganger, for eksempel fotavtrykkmønstre (etterligne blekkpoteanalysen6) eller holdningsfaser i forhold til kroppsaksen. Viktigere, på grunn av sin åpen kildekode-natur, kan nye parametere trekkes ut ved å oppdatere MATLAB-skriptpakken.

Her oppdateres den tidligere publiserte samlingen av MouseWalker23-systemet . Det gis en beskrivelse av hvordan du konfigurerer den, med alle trinnene som kreves for å oppnå best mulig videokvalitet, sporingsforhold og parameterinnhenting. Ytterligere postkvantifiseringsverktøy deles også for å forbedre analysen av MouseWalker (MW) utgangsdatasett. Til slutt demonstreres nytten av dette verktøyet ved å oppnå kvantifiserbare verdier for generell lokomotorisk ytelse, spesielt trinnsykluser og koordinering av forben-baklemmer, i en ryggmargsskade (SCI) kontekst.

Protocol

Alle prosedyrer for håndtering, kirurgi og postoperativ behandling ble godkjent av Instituto de Medicina Molecular Internal Committee (ORBEA) og den portugisiske dyreetikkkomiteen (DGAV) i samsvar med Det europeiske fellesskaps retningslinjer (direktiv 2010/63/EU) og den portugisiske loven om dyrepleie (DL 113/2013) under lisensen 0421/000/000/2022. Hunnmus C57Bl/6J i alderen 9 uker ble brukt i denne studien. Alle anstrengelser ble gjort for å minimere antall dyr og for å redusere lidelsene til dyrene som ble brukt i …

Representative Results

Standard BMS-system beskriver brutto motoriske underskudd etter SCI14. På grunn av sin subjektive natur utføres andre kvantitative analyser vanligvis sammen med BMS for å produsere en mer detaljert og fin vurdering av bevegelse. Imidlertid klarer ikke disse testene å vise spesifikk informasjon om trinnsykluser, trinnmønstre og koordinering av forben-baklemmer, noe som er ekstremt viktig for å forstå hvordan ryggkretsen opprettholder funksjon og tilpasser seg en ufullstendig SCI. Denne delen…

Discussion

Her demonstreres potensialet til MouseWalker-metoden ved å analysere lokomotorisk oppførsel etter SCI. Det gir ny innsikt i spesifikke endringer i stepping, fotavtrykk og gangmønstre som ellers ville bli savnet av andre standardtester. I tillegg til å gi en oppdatert versjon av MW-pakken, beskrives også dataanalyseverktøy ved hjelp av de medfølgende Python-skriptene (se trinn 5).

Siden MW genererer et stort datasett og en samling kinematiske parametere som reflekterer en høydimensjonal…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne takker Laura Tucker og Natasa Loncarevic for deres kommentarer til manuskriptet og støtten gitt av Rodent Facility ved Instituto de Medicina Molecular João Lobo Antunes. Forfatterne ønsker å anerkjenne økonomisk støtte fra Prémios Santa Casa Neurociências – Prize Melo e Castro for Spinal Cord Injury Research (MC-36/2020) til LS og CSM Dette arbeidet ble støttet av Fundação para a Ciência e a Tecnologia (FCT) (PTDC/BIA-COM/0151/2020), iNOVA4Health (UIDB/04462/2020 og UIDP/04462/2020), og LS4FUTURE (LA/P/0087/2020) til C.S.M. L.S. ble støttet av en CEEC Individual Principal Investigator-kontrakt (2021.02253.CEECIND). AFI ble støttet av et doktorgradsstipend fra FCT (2020.08168.BD). A.M.M. ble støttet av en doktorgradsstipendiat fra FCT (PD/BD/128445/2017). I.M. ble støttet av et postdoktorstipend fra FCT (SFRH/BPD/118051/2016). D.N.S. ble støttet av en doktorgradsstipendiat fra FCT (SFRH/BD/138636/2018).

Materials

45º Mirror 
2 aluminum extrusion (2 x 2 cm), 16 cm height, 1 on each side Misumi
2 aluminum extrusion (2 x 2 cm), 23 cm, @ 45° , 1 on each side Misumi
1 aluminum extrusion (2 x 2 cm), 83 cm long Misumi
87 x 23 cm mirror General glass supplier 
black cardboard filler  General stationery supplier We used 2, one with 69 x 6 cm and another with 69 x 3cm to limit the reflection on the mirror
Background backlight
109 x 23 cm plexiglass (0.9525 cm thick) General hardware supplier
2 lateral aluminum extrusion (4 x 4 cm), 20 cm long, 1 on each side Misumi
multicolor LED strip General hardware supplier
white opaque paper to cover the plexyglass General stationery supplier
fTIR Support base and posts
2 aluminum extrusion (4 x 4 cm), 100 cm height Misumi
60 x 30 cm metric breadboard Edmund Optics  #54-641
M6 12 mm screws Edmund Optics 
M6 hex nuts and wahers Edmund Optics 
fTIR Walkway 
109 x 8.5 cm plexyglass (1.2 cm thick) General hardware supplier 109 x 8.5 cm plexyglass (1.2 cm thick)
109 cm long Base-U-channel aluminum with 1.6 cm height x 1.9 cm depth thick folds (to hold the plexyglass) General hardware supplier
2 lateral aluminum extrusion (4 x 4 cm) 20 cm length, 1 on each side Misumi
black cardboard filler  General stationery supplier we used 2 fillers on each side to cover the limits of the plexyglass, avoiding bright edges
12 mm screws Edmund Optics  M6
High speed camera (on a tripod)
Blackfly S USB3 Blackfly USB3 This is a reccomendation. The requirement is to record at least 100 frames per second
Infinite Horizon Impactor 
Infinite Horizon Impactor  Precision Systems and Instrumentation, LLC.
Lens
Nikkon AF Zoom-Nikkor 24-85mm Nikkon  2.8-4D IF This lens is reccomended, however other lens can be used. Make sure it contains a large aperture (i.e., smaller F-stop values), to capture fTIR signals
Software
MATLAB R2022b MathWorks
Python 3.9.13  Python Software Foundation
Anaconda Navigator 2.1.4 Anaconda, Inc.
Spyder 5.1.5  Spyder Project Contributors
Walkway wall 
2 large rectagular acrilics with 100 x 15 cm Any bricolage convenience store
2 Trapezian acrilic laterals with 6-10 length x 15 cm height Any bricolage convenience store
GitHub Materials
Folder name URL
Boxplots https://github.com/NeurogeneLocomotion/MouseWalker/tree/main/Boxplots Script to create Boxplots
Docs https://github.com/NeurogeneLocomotion/MouseWalker/tree/main/Docs Additional documents
Heatmap https://github.com/NeurogeneLocomotion/MouseWalker/tree/main/Heatmaps Script to create heatmap
Matlat script https://github.com/NeurogeneLocomotion/MouseWalker/tree/main/Matlab%20Script MouseWalker matlab script
PCA https://github.com/NeurogeneLocomotion/MouseWalker/tree/main/PCA%20plots Script to perform Principal Component Analysis
Raw data Plots https://github.com/NeurogeneLocomotion/MouseWalker/tree/main/Rawdata%20Plots Script to create Raw data plots
Residual Analysis https://github.com/NeurogeneLocomotion/MouseWalker/tree/main/Residual_Analysis Code to compute residuals from Raw data

Riferimenti

  1. Frigon, A. The neural control of interlimb coordination during mammalian locomotion. Journal of Neurophysiology. 117 (6), 2224-2241 (2017).
  2. Grillner, S. Biological pattern generation: The cellular and computational logic of networks in motion. Neuron. 52 (5), 751-766 (2006).
  3. Dominici, N., et al. locomotor primitives in newborn babies and their development. Science. 334 (6058), 997-999 (2011).
  4. Courtine, G., et al. Kinematic and EMG determinants in quadrupedal locomotion of a non-human primate (Rhesus). Journal of Neurophysiology. 93 (6), 3127-3145 (2005).
  5. Clarac, F., Cattaert, D., le Ray, D. Central control components of a ‘simple’ stretch reflex. Trends Neuroscience. 23 (5), 199-208 (2000).
  6. Squair, J. W., Gautier, M., Sofroniew, M. V., Courtine, G., Anderson, M. A. Engineering spinal cord repair. Current Opinion in Biotechnology. 72, 48-53 (2021).
  7. Wenger, N., et al. Spatiotemporal neuromodulation therapies engaging muscle synergies improve motor control after spinal cord injury. Nature Medicine. 22 (2), 138-145 (2016).
  8. Grillner, S. The spinal locomotor CPG: A target after spinal cord injury. Progress in Brain Research. 137, 97-108 (2002).
  9. Boulain, M., et al. Synergistic interaction between sensory inputs and propriospinal signalling underlying quadrupedal locomotion. Journal of Physiology. 599 (19), 4477-4496 (2021).
  10. Skarlatou, S., et al. Afadin signaling at the spinal neuroepithelium regulates central canal formation and gait selection. Cell Reports. 31 (10), 107741 (2020).
  11. Viala, D., Vidal, C. Evidence for distinct spinal locomotion generators supplying respectively fore-and hindlimbs in the rabbit. Brain Research. 155 (1), 182-186 (1978).
  12. Silver, J., Miller, J. H. Regeneration beyond the glial scar. Nature Reviews Neuroscience. 5 (2), 146-156 (2004).
  13. Basso, D. M., Beattie, M. S., Bresnahan, J. C. A sensitive and reliable locomotor rating scale for open field testing in rats. Journal of Neurotrauma. 12 (1), 1-21 (1995).
  14. Basso, D. M., et al. Basso mouse scale for locomotion detects differences in recovery after spinal cord injury in five common mouse strains. Journal of Neurotrauma. 23 (5), 635-659 (2006).
  15. Jones, B. J., Roberts, D. J. The quantitative measurement of motor inco-ordination in naive mice using an accelerating rotarod. Journal of Pharmacy and Pharmacology. 20 (4), 302-304 (1968).
  16. Metz, G. A., Whishaw, I. Q. The ladder rung walking task: A scoring system and its practical application. Journal of Visualized Experiments. (28), e1204 (2009).
  17. Metz, G. A., Whishaw, I. Q. Cortical and subcortical lesions impair skilled walking in the ladder rung walking test: A new task to evaluate fore-and hindlimb stepping, placing, and coordination. Journal of Neuroscience Methods. 115 (2), 169-179 (2002).
  18. Wallace, J. E., Krauter, E. E., Campbell, B. A. Motor and reflexive behavior in the aging rat. Journal of Gerontology. 35 (3), 364-370 (1980).
  19. Carter, R. J., et al. Characterization of progressive motor deficits in mice transgenic for the human Huntington’s disease mutation. The Journal of Neuroscience. 19 (8), 3248-3257 (1999).
  20. Leblond, H., L’espérance, M., Orsal, D., Rossignol, S. Behavioral/systems/cognitive treadmill locomotion in the intact and spinal mouse. The Journal of Neuroscience. 23 (36), 11411-11419 (2003).
  21. Courtine, G., et al. Recovery of supraspinal control of stepping via indirect propriospinal relay connections after spinal cord injury. Nature Medicine. 14 (1), 69-74 (2008).
  22. Hamers, F. P. T., Koopmans, G. C., Joosten, E. A. J. CatWalk-assisted gait analysis in the assessment of spinal cord injury. Journal of Neurotrauma. 23 (3-4), 537-548 (2006).
  23. Mendes, C. S., et al. Quantification of gait parameters in freely walking rodents. BMC Biology. 13 (1), 50 (2015).
  24. Schindelin, J., et al. Fiji: An open-source platform for biological-image analysis. Nature Methods. 9 (7), 676-682 (2012).
  25. Stauch, K. L., et al. Applying the ratwalker system for gait analysis in a genetic rat model of Parkinson’s disease. Journal of Visualized Experiments. (167), e62002 (2021).
  26. Mendes, C. S., Rajendren, S. V., Bartos, I., Márka, S., Mann, R. S. Kinematic responses to changes in walking orientation and gravitational load in Drosophila melanogaster. PLoS One. 9 (10), e109204 (2014).
  27. Cabrita, A., et al. Motor dysfunction in Drosophila melanogaster as a biomarker for developmental neurotoxicity. iScience. 25 (7), 104541 (2022).
  28. Bishop, C. M. . Pattern Recognition and Machine Learning. , (2006).
  29. vander Maaten, L., Postma, E., vanden Herik, J. . Dimensionality reduction: A comparative review. , (2009).
  30. Courtine, G., et al. Performance of locomotion and foot grasping following a unilateral thoracic corticospinal tract lesion in monkeys (Macaca mulatta). Brain. 128 (10), 2338-2358 (2005).
  31. Drew, T., Jiang, W., Kably, B., Lavoie, S. Role of the motor cortex in the control of visually triggered gait modifications. Canadian Journal of Physiology and Pharmacology. 74 (4), 426-442 (1996).
  32. Cheng, H., et al. Gait analysis of adult paraplegic rats after spinal cord repair. Experimental Neurology. 148 (2), 544-557 (1997).
  33. Thibaudier, Y., et al. Interlimb coordination during tied-belt and transverse split-belt locomotion before and after an incomplete spinal cord injury. Journal of Neurotrauma. 34 (9), 1751-1765 (2017).
  34. Bellardita, C., Kiehn, O. Phenotypic characterization of speed-associated gait changes in mice reveals modular organization of locomotor networks. Current Biology. 25 (11), 1426-1436 (2015).
  35. Machado, A. S., Marques, H. G., Duarte, D. F., Darmohray, D. M., Carey, M. R. Shared and specific signatures of locomotor ataxia in mutant mice. eLife. 9, 55356 (2020).
  36. Takeoka, A., Vollenweider, I., Courtine, G., Arber, S. Muscle spindle feedback directs locomotor recovery and circuit reorganization after spinal cord injury. Cell. 159 (7), 1626-1639 (2014).
check_url/it/65207?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Isidro, A. F., Medeiros, A. M., Martins, I., Neves-Silva, D., Saúde, L., Mendes, C. S. Using the MouseWalker to Quantify Locomotor Dysfunction in a Mouse Model of Spinal Cord Injury. J. Vis. Exp. (193), e65207, doi:10.3791/65207 (2023).

View Video