Summary

Universelle molekulare Retention mit 11-facher Expansionsmikroskopie

Published: October 06, 2023
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Summary

Hier wird eine neue Version der Expansionsmikroskopie (ExM), Magnify, vorgestellt, die für eine bis zu 11-fache Expansion modifiziert wurde, eine umfassende Palette von Biomolekülklassen bewahrt und mit einer Vielzahl von Gewebetypen kompatibel ist. Es ermöglicht die Untersuchung der nanoskaligen Konfiguration von Biomolekülen mit herkömmlichen beugungsbegrenzten Mikroskopen.

Abstract

Die nanoskalige Bildgebung biologischer Proben kann das Verständnis der Krankheitspathogenese verbessern. In den letzten Jahren hat sich die Expansionsmikroskopie (ExM) als effektive und kostengünstige Alternative zur optischen Superauflösungsmikroskopie erwiesen. Sie wurde jedoch durch den Bedarf an spezifischen und oft kundenspezifischen Verankerungsmitteln zur Beibehaltung verschiedener Biomolekülklassen im Gel und durch Schwierigkeiten bei der Erweiterung klinischer Standardprobenformate, wie z. B. formalinfixiertes, in Paraffin eingebettetes Gewebe, eingeschränkt, insbesondere wenn größere Expansionsfaktoren oder konservierte Proteinepitope gewünscht werden. Hier beschreiben wir Magnify, eine neue ExM-Methode zur robusten bis zu 11-fachen Expansion in einer Vielzahl von Gewebetypen. Durch die Verwendung von Methacrolein als chemischer Anker zwischen dem Gewebe und dem Gel hält Magnify mehrere Biomoleküle wie Proteine, Lipide und Nukleinsäuren im Gel zurück und ermöglicht so die breite nanoskalige Abbildung von Geweben auf herkömmlichen optischen Mikroskopen. Dieses Protokoll beschreibt Best Practices, um eine robuste und rissfreie Gewebeexpansion zu gewährleisten, sowie Tipps für die Handhabung und Bildgebung von stark expandierten Gelen.

Introduction

Biologische Systeme weisen strukturelle Heterogenität auf, von den Gliedmaßen und Organen bis hin zu Proteinen auf der Nanoskala. Daher erfordert ein vollständiges Verständnis der Funktionsweise dieser Systeme eine visuelle Untersuchung über diese Größenskalen hinweg. Die Beugungsgrenze des Lichts stellt jedoch eine Herausforderung bei der Visualisierung von Strukturen dar, die kleiner als ~200-300 nm auf einem herkömmlichen Fluoreszenzmikroskop sind. Darüber hinaus stellen optische Superauflösungsmethoden 1,2,3, wie z. B. die stimulierte Emissionsverarmung (STED), die photoaktivierte Lokalisierungsmikroskopie (PALM), die stochastische optische Rekonstruktionsmikroskopie (STORM) und die strukturierte Beleuchtungsmikroskopie (SIM), zwar ihre eigenen Herausforderungen dar, da sie teure Hardware und Reagenzien erfordern und oft langsame Aufnahmezeiten und eine schlechte Fähigkeit haben, große Mengen in 3D abzubilden.

Die Expansionsmikroskopie4 (ExM) bietet eine alternative Möglichkeit, die Beugungsgrenze des Lichts zu umgehen, indem Biomoleküle kovalent in einem wasserquellfähigen Polymergel verankert und physikalisch auseinandergezogen werden, wodurch sie auf herkömmlichen optischen Mikroskopen auflösbar werden. Seit der ursprünglichen Veröffentlichung von ExM vor weniger als einem Jahrzehnt wurde eine Vielzahl von ExM-Protokollvarianten entwickelt, die den direkten Einbau der Proteine 5,6,7, RNA 8,9,10 oder Lipide11,12,13 ermöglichen in das Gelnetzwerk durch Verändern des chemischen Ankers oder weiteres Erweitern der Probe (wodurch die effektive Auflösung verbessert wird) entweder in einem einzigen Schritt14 oder in mehreren iterativen Schritten15,16. Bis vor kurzem konnte kein einzelnes ExM-Protokoll diese drei Biomolekülklassen mit einem einzigen kommerziell erhältlichen chemischen Anker beibehalten und gleichzeitig ein mechanisch robustes Gel bereitstellen, das sich in einer einzigen Expansionsrunde ~10-fach ausdehnen konnte.

Hier stellen wir Magnify17 vor, eine neue Ergänzung des ExM-Arsenals, die Methacrolein als Biomolekülanker verwendet. Methacrolein bildet kovalente Bindungen mit Gewebe wie Paraformaldehyd und stellt sicher, dass mehrere Klassen von Biomolekülen innerhalb des Gelnetzwerks erhalten bleiben können, ohne dass verschiedene spezifische oder kundenspezifische Verankerungsmittel erforderlich sind. Darüber hinaus kann diese Technik ein breites Spektrum von Geweben um das bis zu 11-fache erweitern, einschließlich notorisch schwieriger Proben wie formalinfixierte, paraffineingebettete (FFPE) klinische Proben. Bisherige Methoden zur Expansion solcher mechanisch starren Proben erforderten einen harten Proteaseverstand, was die Antikörpermarkierung von Proteinen von Interesse nach der Expansion der Probe unmöglich machte. Im Gegensatz dazu wird mit dieser Technik die Expansion klinischer FFPE-Proben mit einer heißen Denaturierungslösung erreicht, wodurch ganze Proteinepitope im Gel erhalten bleiben, die für die Bildgebung nach der Expansion gezielt eingesetzt werden können (Abbildung 1).

Protocol

Alle Versuchsverfahren mit Tieren wurden in Übereinstimmung mit den Richtlinien der National Institutes of Health (NIH) durchgeführt und vom Institutional Animal Care and Use Committee der Carnegie Mellon University genehmigt. Menschliche Gewebeproben wurden kommerziell gewonnen. 1. Herstellung der Stammreagenzien und -lösungen HINWEIS: In der Materialtabelle finden Sie eine Liste der verwendeten Reagenzien. Bereiten Si…

Representative Results

Wenn das Protokoll erfolgreich abgeschlossen wurde (Abbildung 1), erscheint die Probe nach der Hitzedenaturierung klar und flach. Jede Faltung oder Faltenbildung deutet auf eine unvollständige Homogenisierung hin. Eine erfolgreich expandierte Probe ist 3-4,5-mal größer als vor der Expansion in 1x PBS und 8-11-mal größer, wenn sie vollständig in ddH2Oexpandiert ist. Abbildung 3 zeigt Beispiele für Pre- und Post-Expansionsbilder einer 5 μm dicke…

Discussion

Hier stellen wir das Magnify-Protokoll17 vor, eine ExM-Variante, die mehrere Biomoleküle mit einem einzigen chemischen Anker zurückhalten und anspruchsvolle klinische FFPE-Proben durch Hitzedenaturierung bis zu 11-fach erweitern kann. Zu den wichtigsten Änderungen in diesem Protokoll, die es von anderen ExM-Protokollen unterscheiden, gehören die Verwendung eines neu formulierten Gels, das auch bei vollständiger Expansion mechanisch robust bleibt, sowie die Verwendung von Methacrolein als Biom…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Diese Arbeit wurde von der Carnegie Mellon University und der D.S.F. Charitable Foundation (Y.Z. und X.R.), den National Institutes of Health (N.I.H.) Director’s New Innovator Award DP2 OD025926-01 und der Kauffman Foundation.

Materials

4-hydroxy-TEMPO (4HT) Sigma Aldrich 176141 Inhibitor
6-well glass-bottom plate (#1.5 coverglass) Cellvis P06-1.5H-N
Acrylamide Sigma Aldrich A8887 Gel Monomer component
Ammonium persulfate (APS)  Sigma Aldrich A3678 Initiatior
DAPI (1 mg/mL) Thermo Scientific 62248
Decaethylene glycol mono dodecyl ether (C12E10) Sigma Aldrich P9769 Non-ionic surfactant
Diamond knife No. 88 CM General Tools 31116
Ethanol Pharmco 111000200
Ethanol Pharmco 111000200
Ethylenediaminetetraacetic
acid (EDTA) 0.5 M
VWR BDH7830-1 Homogenization Buffer Component
Forceps
Glycine Sigma Aldrich G8898 Homogenization Buffer Component
Heparin Sigma Aldrich H3393
Methacrolein Sigma Aldrich 133035 Anchoring Agent
Micro cover Glass #1 (24x60mm) VWR 48393 106
Micro cover Glass #1.5 (24x60mm) VWR 48393 251
N,N,N′,N′-
Tetramethylethylenediamine (TEMED)
Sigma Aldrich T9281 Accelerator
N,N′-Methylenebisacrylamide (Bis) Sigma Aldrich M7279 Gel Monomer component
N,N-dimethylacrylamide (DMAA) Sigma Aldrich 274135 Gel Monomer component
Nunclon 4-Well x 5 mL MultiDish Cell Culture Dish Thermo Fisher 167063
Nunclon 6-Well Cell Culture Dish Thermo Fisher 140675
Nunc™ 15mL Conical Thermo Fisher 339651
Nunc™ 50mL Conical Thermo Fisher 339653
Orbital Shaker
Paint brush
pH Meter
Phosphate Buffered Saline (PBS), 10x Solution Fischer Scientific BP399-1
Polyethylene glycol  200 Sigma Aldrich P-3015
Proteinase K (Molecular Biology Grade) Thermo Scientific EO0491
Razor blade Fischer Scientifc 12640
Safelock Microcentrifuge Tubes 1.5 mL Thermo Fisher 3457
Safelock Microcentrifuge Tubes 2.0 mL Thermo Fisher 3459
Sodium acrylate (SA) AK Scientific R624 Gel Monomer component
Sodium azide Sigma Aldrich S2002
Sodium chloride Sigma Aldrich S6191
Sodium citrate tribasic dihydrate Sigma Aldrich C8532-1KG
Sodium dodecyl sulfate (SDS) Sigma Aldrich L3771 Homogenization Buffer Component
Tris Base Fischer Scientific BP152-1 Homogenization Buffer Component
Triton X-100 Sigma Aldrich T8787
Urea Sigma Aldrich U5378 Homogenization Buffer Component
Xylenes Sigma Aldrich 214736
20x SSC Thermo Scientific AM9763
Tween20 Sigma Aldrich P1379
poly-L-lysine  Sigma Aldrich P8920

Riferimenti

  1. Hell, S. W. Far-field optical nanoscopy. Science. 316 (5828), 1153-1158 (2007).
  2. Combs, C. A., Shroff, H. Fluorescence microscopy: A concise guide to current imaging methods. Current Protocols in Neuroscience. 79, 1-25 (2017).
  3. Schermelleh, L., Heintzmann, R., Leonhardt, H. A guide to super-resolution fluorescence microscopy. Journal of Cell Biology. 190 (2), 165-175 (2010).
  4. Chen, F., Tillberg, P. W., Boyden, E. S. Expansion microscopy. Science. 347 (6221), 543-548 (2015).
  5. Tillberg, P. W., et al. Protein-retention expansion microscopy of cells and tissues labeled using standard fluorescent proteins and antibodies. Nature Biotechnology. 34 (9), 987-992 (2016).
  6. Chozinski, T. J., et al. Expansion microscopy with conventional antibodies and fluorescent proteins. Nature Methods. 13 (6), 485-488 (2016).
  7. Ku, T., et al. Multiplexed and scalable super-resolution imaging of three-dimensional protein localization in size-adjustable tissues. Nature Biotechnology. 34 (9), 973-981 (2016).
  8. Chen, F., et al. Nanoscale imaging of R.N.A. with expansion microscopy. Nature Methods. 13 (8), 679-684 (2016).
  9. Tsanov, N., et al. SmiFISH and FISH-quant – A flexible single R.N.A. detection approach with super-resolution capability. Nucleic Acids Research. 44 (22), 165 (2016).
  10. Wang, G., Moffitt, J. R., Zhuang, X. Multiplexed imaging of high-density libraries of R.N.A.s with MERFISH and expansion microscopy. Scientific Reports. 8 (1), 4847 (2018).
  11. Wen, G., et al. Evaluation of direct grafting strategies via trivalent anchoring for enabling lipid membrane and cytoskeleton staining in expansion microscopy. ACS Nano. 14 (7), 7860-7867 (2020).
  12. Sun, D., et al. Click-ExM enables expansion microscopy for all biomolecules. Nature Methods. 18, 107-113 (2021).
  13. White, B. M., Kumar, P., Conwell, A. N., Wu, K., Baskin, J. M. Lipid expansion microscopy. Journal of the American Chemical Society. 144 (40), 18212-18217 (2022).
  14. Truckenbrodt, S., et al. X10 expansion microscopy enables 25-nm resolution on conventional microscopes. EMBO Reports. 19 (9), e45836 (2018).
  15. Chang, J. -. B., et al. Iterative expansion microscopy. Nature Methods. 14 (6), 593-599 (2017).
  16. Park, J., et al. Epitope-preserving magnified analysis of proteome (eMAP). Science Advances. 7 (46), (2021).
  17. Klimas, A., et al. Magnify is a universal molecular anchoring strategy for expansion microscopy. Nature Biotechnology. , (2023).
  18. Gao, M., et al. Expansion stimulated emission depletion microscopy (ExSTED). ACS Nano. 12 (5), 4178-4185 (2018).
  19. Zwettler, F. U., et al. Molecular resolution imaging by post-labeling expansion single-molecule localization microscopy (Ex-SMLM). Nature Communications. 11, 3388 (2020).
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Citazione di questo articolo
Gallagher, B. R., Klimas, A., Cheng, Z., Zhao, Y. Universal Molecular Retention with 11-Fold Expansion Microscopy. J. Vis. Exp. (200), e65338, doi:10.3791/65338 (2023).

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