Summary

Screening ionkanaler i kræftceller

Published: June 16, 2023
doi:

Summary

Den farmakologiske målretning af ionkanaler er en lovende tilgang til behandling af solide tumorer. Der gives detaljerede protokoller til karakterisering af ionkanalfunktion i kræftceller og analyse af virkningerne af ionkanalmodulatorer på kræftlevedygtighed.

Abstract

Ionkanaler er kritiske for celleudvikling og vedligeholdelse af cellehomeostase. Perturbation af ionkanalfunktion bidrager til udviklingen af en bred vifte af lidelser eller kanalopatier. Kræftceller bruger ionkanaler til at drive deres egen udvikling, såvel som at forbedre sig som en tumor og assimilere i et mikromiljø, der omfatter forskellige ikke-kræftceller. Desuden kan stigninger i niveauer af vækstfaktorer og hormoner i tumormikromiljøet resultere i forbedret ionkanalekspression, hvilket bidrager til kræftcelleproliferation og overlevelse. Således er den farmakologiske målretning af ionkanaler potentielt en lovende tilgang til behandling af faste maligniteter, herunder primær og metastatisk hjernekræft. Heri beskrives protokoller til karakterisering af ionkanalernes funktion i kræftceller og tilgange til analyse af modulatorer af ionkanaler for at bestemme deres indvirkning på kræftlevedygtigheden. Disse omfatter farvning af en celle (er) til en ionkanal (er), test af mitokondriernes polariserede tilstand, etablering af ionkanalfunktion ved hjælp af elektrofysiologi og udførelse af levedygtighedsanalyser for at vurdere lægemiddelstyrke.

Introduction

Membrantransportproteiner er kritiske for kommunikation mellem celler såvel som for at opretholde cellulær homeostase. Blandt membrantransportproteinerne tjener ionkanaler til at drive vækst og udvikling af celler og til at opretholde cellernes tilstand i udfordrende og skiftende miljøer. Ionkanaler er også rapporteret at drive og understøtte udviklingen af solide tumorer, både systemisk og i centralnervesystemet (CNS)1,2. For eksempel er KCa3.1-kanaler ansvarlige for regulering af membranpotentiale og styring af cellevolumen, hvilket er vigtigt i cellecyklusregulering. Defekte KCa3.1 kanaler er blevet rapporteret at bidrage til unormal spredning af tumorceller3. Endvidere kan ionkanaler bidrage til metastatisk spredning af kræftformer. Transiente receptorpotentielle (TRP) kanaler er for eksempel involveret i Ca 2+ og Mg2+ tilstrømning; Denne tilstrømning aktiverer flere kinaser og varmechokproteiner, der fungerer til at regulere den ekstracellulære matrix, der omgiver en tumor, hvilket igen er vigtigt for at initiere kræftmetastase4.

Da ionkanaler kan bidrage til udviklingen af kræft, kan de også være mål for lægemiddelrelateret kræftbehandling. For eksempel er resistens over for behandlingsmetoder, herunder kemoterapi og ny immunterapi, relateret til ionkanalfunktionsdysregulering 5,6,7. Derudover fremstår ionkanaler som vigtige lægemiddelmål for at hindre vækst og udvikling af kræftformer, hvor genanvendte lægemidler med små molekyler (FDA-godkendte) undersøges såvel som biopolymerer, herunder monoklonale antistoffer 1,2,8,9. Mens der har været store fremskridt på denne front, er opdagelsen af ionkanalkræftmedicin fortsat underudviklet. Dette skyldes blandt andet de unikke udfordringer ved at studere ionkanaler i kræftceller. For eksempel er der tekniske begrænsninger i opsætning af elektrofysiologiske assays for langsomt virkende forbindelser og tidsmæssige forskelle i kanalaktivering og lægemiddelvirkning. Endvidere kan opløseligheden af forbindelser også hæmme fremskridt, da de fleste af de automatiserede elektrofysiologiske systemer, der almindeligvis anvendes i dag, bruger hydrofobe substrater, hvilket kan bidrage til artefakter som følge af sammensat adsorption. Derudover er store bioorganiske molekylære lægemidler såsom naturlige produkter, peptider og monoklonale antistoffer teknisk udfordrende at screene ved hjælp af konventionelle elektrofysiologiske assays10. Endelig forbliver kræftcellernes bioelektriske egenskaber dårligt forstået11.

I mellemtiden er immunofluorescensfarvning af ionkanaler ofte udfordrende. Dette skyldes til dels kompleksiteten af deres strukturer og deres kontekst i membranen, som påvirker evnen til både at generere og anvende antistoffer til mikroskopiundersøgelser. Det er især vigtigt, at de antistoffer, der bruges til at plette ionkanaler, valideres for specificitet, affinitet og reproducerbarhed. Kommercielle antistoffer mod ionkanaler bør overvejes på grundlag af deres valideringsstrategi og offentliggørelseshistorik. Eksperimenter bør omfatte negative kontroller for at demonstrere manglen på uspecifik binding ved enten knockdown eller knockout af målproteinet. Alternativt kan cellelinjer, hvor målproteinet er fraværende eller i lav forekomst baseret på mRNA eller proteinbestemmelser, tjene som negative kontroller. For eksempel viser denne undersøgelse lokalisering af (GABA) receptorunderenheden Gabra5 i en medulloblastomcellelinje (D283). D283-celler med en siRNA-knockdown og Daoy-celler, en anden cerebellær medulloblastomcellelinje, blev farvet for Gabra5 og viste ingen mærkbar farvning (data ikke vist).

Her præsenteres metoder til analyse og analyse af ionkanalfunktion samt effekten af ionkanalmodulatorer på kræftceller. Der er fastsat protokoller for (1) farvning af celler til en ionkanal, (2) test af mitokondriernes polariserede tilstand, (3) etablering af ionkanalfunktion ved hjælp af elektrofysiologi og (4) di vitro-lægemiddelvalidering. Disse protokoller understreger undersøgelser af type A gamma-aminosmørsyre (GABAA) receptor 2,12,13,14,15,16, en chloridanionkanal og større hæmmende neurotransmitterreceptor. De metoder, der præsenteres her, gælder imidlertid for at studere mange andre kræftceller og ionkanaler.

Protocol

1. Immunmærkning ionkanaler i dyrkede celler Klargøring af cellerne og eksperimentel opsætningOprethold cellerne som en aktivt voksende kultur i 75 cm2 kulturkolber. Passage cellerne en gang, indtil de bliver 50% -90% sammenflydende, afhængigt af fordoblingstiden for cellelinjen, der bruges.BEMÆRK: Til denne undersøgelse blev D283-celler, en gruppe 3 medulloblastomcellelinje, anvendt. Saml cellerne fra dyrkningskolben i et centrifugerør (15 ml eller 50 ml), og tilsæt 2 …

Representative Results

Ovenfor er udvalgte procedurer, der kan anvendes til at karakterisere ionkanaler i kræftceller. Den første protokol fremhæver farvningen af en ionkanal. Som beskrevet er der mange udfordringer ved farvning af en ionkanal eller for den sags skyld ethvert protein, der er til stede i den ekstracellulære membran. Vist i figur 1 er farvningen for en underenhed af den pentamere GABAA-receptor. Den anden protokol fremhæver resultaterne af test af den polariserede tilstand af mitokon…

Discussion

Ændringer i ionkanalfunktionen ændrer intracellulære signalkaskader, hvilket kan påvirke en celles overordnede funktion. I løbet af det sidste årti er det blevet mere og mere klart, at ionkanaler er vigtige for kræftcellevækst og metastase. Det er vigtigt, at mange ionkanaler er primære mål for godkendte behandlinger rettet mod en bred vifte af lidelser24. Efterforskere har undersøgt, om ionkanaler kunne være anti-cancer mål, og de første resultater er lovende 2,16,…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne anerkender støtte fra Thomas E. & Pamela M. Mischell Family Foundation til SS og Harold C. Schott Foundation finansiering af Harold C. Schott Endowed Chair, UC College of Medicine, til SS.

Materials

ABS SpectraMax Plate Reader Molecular Devices ABS
Accutase Invitrogen 00-4555-56
Alexa Flor 488 Invitrogen A32723 Goat Anti-Rabbit
Antibiotic-Antimycotic Gibco 15240-062 100x
B27 Supplement Gibco 12587-010 Lacks vitamin A
Biosafety Cabinet LABCONCO 302381101 Class II, Type A2
Bovine Serum Albumin Fisher Scientific BP1606-100
CO2 Incubator Fisher Scientific 13-998-211 Heracell VIOS 160i
Calcium Chloride Fisher Scientific C7902 Dihydrate
Cell Culture Dishes, 150 mm Fisher Scientific 12-600-004 Cell culture treated
Cell Culture Flasks, 75 cm2 Fisher Scientific 430641U Cell culture treated
Cell Culture Plates, 6 well Fisher Scientific 353046 Cell culture treated
Cell Culture Plates, 96 well Fisher Scientific 353072 Cell culture treated
Centrifuge Eppendorf EP-5804R Refrigerated
Corning CoolCell Fisher Scientific 07-210-0006
Coverslips, 22 x 22 mm Fisher Scientific 12-553-450 Corning brand
D283 Med ATCC HTB-185
DABCO Mounting Media EMS 17989-97
D-Glucose Sigma Life Sciences D9434
Dimethyl Sulfoxide Sigma Aldrich D2650 Cell culture grade
DMEM/F12, base media Fisher Scientific 11330-032 With phenol red
DMEM/F12, phenol red free Fisher Scientific 21041-025
EGTA Sigma Aldrich E4378
Epidermal Growth Factor STEMCELL 78006.1
FCCP Abcam AB120081
Fetal Bovine Serum, Qualified Gibco 10437-028
Fibroblast Growth Factor, Basic Millipore GF003
GARBA5 Antibody Aviva ARP30687_P050 Rabbit Polyclonal
Glutamax Gibco 35050-061
Glycerol Mounting Medium EMS 17989-60 With DAPI+DABCO
Hemocytometer Millipore Sigma
Heparin STEMCELL 7980
HEPES HyClone SH3023701 Solution
HEPES Fisher Scientific BP310-500 Solid
ImageJ Open platform With Fiji plugins
Immuno Mount DAPI EMS 17989-97
KRM-II-08 experimental compounds not available from a commercial source
Leica Application Suite X Leica Microsystems
Leukemia Inhibitory Factor Novus N276314100U
L-Glutamine Gibco 25030-081
Magnesium Chloride Sigma Aldrich M9272 Hexahydrate
Microscope, Confocal Leica SP8
Microscope, Light VWR 76382-982 DMiL Inverted
MTS – Promega One Step Promega G3581
Multi-channel pipette, 0.5-10 µL Eppendorf Z683914
Multi-channel pipette, 10-100 µL Eppendorf Z683930
Multi-channel pipette, 30-300 µL Eppendorf Z683957
Nest-O-Patch Heka
Neurobasal-A Medium Gibco 10888022 Without vitamin A
Neurobasal-A Medium Gibco 12348-017 Phenol red free
Non-Essential Amino Acids Gibco 11140-050
NOR-QH-II-66 experimental compounds not available from a commercial source
Parafilm Fisher Scientific 50-998-944 4 inch width
Paraformaldehyde EMS RT-15710
PATHCHMASTER Heka
Penicillin-Streptomycin Gibco 15140-122
Perfusion System Nanion 4000120
PFA EMS RT-15710
Phosphate Bufered Saline Fisher Scientific AAJ75889K2 Reagent grade
Poly-D-Lysine Fisher Scientific A3890401
Poly-L-Lysine Sigma Life Sciences P4707
Port-a-Patch Nanion 21000072
Potassium Chloride Sigma Life Sciences P5405
Primary Antibody Invitrogen MA5-34653 Rabbit Monoclonal
Prism GraphPad
Propofol Fisher Scientific NC0758676 1 mL ampule
QH-II-66 experimental compounds not available from a commercial source
Reagent Reservoirs VWR 89094-664 Sterile
Slides, 75 x 25 mm Fisher Scientific 12-544-7 Frosted one side
Sodium Bicarbonate Corning 25-035-Cl
Sodium Chloride Fisher Scientific S271-3
Sodium Pyruvate Gibco 11360-070
Synth-a-Freeze Medium Gibco R00550 Cryopreservation
TMRE Fisher Scientific 50-196-4741 Reagent
TMRE Kit Abcam AB113852 Kit
Triton X-100 Sigma Aldrich NC0704309
Trypan Blue Gibco 15-250-061 Solution, 0.4%
Trypsin/EDTA Gibco 25200-072 Solution, 0.25%
Vortex Mixer VWR 97043-562
Whatman Filter Paper Fisher Scientific 09-927-841

Riferimenti

  1. Prevarskaya, N., Skryma, R., Shuba, Y. Ion channels in cancer: Are cancer hallmarks oncochannelopathies. Physiological Reviews. 98 (2), 559-621 (2018).
  2. Rao, R., et al. Ligand-gated neurotransmitter receptors as targets for treatment and management of cancers. Frontiers in Physiology. 13, 839437 (2022).
  3. Mohr, C. J., et al. Cancer-associated intermediate conductance Ca2+-activated K+ channel KCa3.1. Cancers. 11 (1), 109 (2019).
  4. Fels, B., Bulk, E., Petho, Z., Schwab, A. The role of TRP channels in the metastatic cascade. Pharmaceuticals. 11 (2), 48 (2018).
  5. Eil, R., et al. Ionic immune suppression within the tumour microenvironment limits T cell effector function. Nature. 537 (7621), 539-543 (2016).
  6. Haustrate, A., Hantute-Ghesquier, A., Prevarskaya, N., Lehen’kyi, V. Monoclonal antibodies targeting ion channels and their therapeutic potential. Frontiers in Pharmacology. 10, 606 (2019).
  7. Kischel, P., et al. Ion channels: New actors playing in chemotherapeutic resistance. Cancers. 11 (3), 376 (2019).
  8. Tuszynski, J., Tilli, T. M., Levin, M. Ion channel and neurotransmitter modulators as electroceutical approaches to the control of cancer. Current Pharmaceutical Design. 23 (32), 4827-4841 (2017).
  9. Kale, V. P., Amin, S. G., Pandey, M. K. Targeting ion channels for cancer therapy by repurposing the approved drugs. Biochimica Biophysica Acta. 1848 (10), 2747-2755 (2015).
  10. Wickenden, A., Priest, B., Erdemli, G. Ion channel drug discovery: Challenges and future directions. Future Medicinal Chemistry. 4 (5), 661-679 (2012).
  11. Rocha, P. R. F., Elghajiji, A., Tosh, D. Ultrasensitive system for electrophysiology of cancer cell populations: A review. Bioelectricity. 1 (3), 131-138 (2019).
  12. Sengupta, S., et al. α5-GABAA receptors negatively regulate MYC-amplified medulloblastoma growth. Acta Neuropathologica. 127 (4), 593-603 (2014).
  13. Jonas, O., et al. First in vivo testing of compounds targeting Group 3 medulloblastomas using an implantable microdevice as a new paradigm for drug development. Journal of Biomedical Nanotechnology. 12 (6), 1297-1302 (2016).
  14. Kallay, L., et al. Modulating native GABAA receptors in medulloblastoma with positive allosteric benzodiazepine-derivatives induces cell death. Journal of Neurooncology. 142 (3), 411-422 (2019).
  15. Pomeranz Krummel, D. A., et al. Melanoma cell intrinsic GABAA receptor enhancement potentiates radiation and immune checkpoint response by promoting direct and T cell-mediated anti-tumor activity. International Journal of Radiation Oncology, Biology, Physics. 109 (4), P1040-P1053 (2021).
  16. Bhattacharya, D., et al. Therapeutically leveraging GABAA receptors in cancer. Experimental Biology and Medicine. 246 (19), 2128-2135 (2021).
  17. Mazia, D., Schatten, G., Sale, W. Adhesion of cells to surfaces coated with polylysine. Applications to electron microscopy. Journal of Cell Biology. 66 (1), 198-200 (1975).
  18. Wiatrak, B., Kubis-Kubiak, A., Piwowar, A., Barg, E. PC12 cell line: Cell types, coating of culture vessels, differentiation and other culture conditions. Cells. 9 (4), 958 (2020).
  19. Baker, J. R. Fixation in cytochemistry and electron-microscopy. Journal of Histochemistry and Cytochemistry. 6 (5), 303-308 (1958).
  20. Chung, J. Y., et al. Histomorphological and molecular assessments of the fixation times comparing formalin and ethanol-based fixatives. Journal of Histochemistry and Cytochemistry. 66 (2), 121-135 (2018).
  21. Crowley, L. C., Christensen, M. E., Waterhouse, N. J. Measuring mitochondrial transmembrane potential by TMRE staining. Cold Spring Harbor Protocols. 2016 (12), (2016).
  22. Cory, A. H., Owen, T. C., Barltrop, J. A., Cory, J. G. Use of an aqueous soluble tetrazolium/formazan assay for cell growth assays in culture. Cancer Communications. 3 (7), 207-212 (1991).
  23. Maro, B., Marty, M. C., Bornens, M. In vivo and in vitro effects of the mitochondrial uncoupler FCCP on microtubules. EMBO Journal. 1 (11), 1347-1352 (1982).
  24. Zheng, J., et al. Mechanism for regulation of melanoma cell death via activation of thermo-TRPV4 and TRPV. Journal of Oncology. 2019, 7362875 (2019).
  25. Konno, K., Watanabe, M., Luján, R., Ciruela, F. Immunohistochemistry for ion channels and their interacting molecules: Tips for improving antibody accessibility. Receptor and Ion Channel Detection in the Brain. , (2016).
  26. Mortensen, M., Smart, T. G. Single-channel recording of ligand-gated ion channels. Nature Protocols. 2 (11), 2826-2841 (2007).
  27. Franken, N. A., Rodermond, H. M., Stap, J., Haveman, J., van Bree, C. Clonogenic assay of cells in vitro. Nature Protocols. 1 (5), 2315-2319 (2006).
  28. Rafehi, H., et al. Clonogenic assay: Adherent cells. Journal of Visualized Experiments. (49), 2573 (2011).
  29. Scudiero, D. A., et al. Evaluation of a soluble tetrazolium/formazan assay for cell growth and drug sensitivity in culture using human and other tumor cell lines. Ricerca sul cancro. 48 (17), 4827-4833 (1988).
  30. Wang, P., Henning, S. M., Heber, D. Limitations of MTT and MTS-based assays for measurement of antiproliferative activity of green tea polyphenols. PLoS One. 5, e10202 (2010).
  31. Berridge, M. V., Tan, A. S. Characterization of the cellular reduction of 3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazolium bromide (MTT): subcellular localization, substrate dependence, and involvement of mitochondrial electron transport in MTT reduction. Archives of Biochemistry and Biophysics. 303 (2), 474-482 (1993).
  32. Plumb, J. A., Milroy, R., Kaye, S. B. Effects of the pH dependence of 3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyl-tetrazolium bromide-formazan absorption on chemosensitivity determined by a novel tetrazolium-based assay. Ricerca sul cancro. 49 (16), 4435-4440 (1989).
  33. Chakrabarti, R., Kundu, S., Kumar, S., Chakrabarti, R. Vitamin A as an enzyme that catalyzes the reduction of MTT to formazan by vitamin C. Journal of Cellular Biochemistry. 80 (1), 133-138 (2000).
  34. Dong, G. W., Preisler, H. D., Priore, R. Potential limitations of in vitro clonogenic drug sensitivity assays. Cancer Chemotherapy and Pharmacology. 13 (3), 206-210 (1984).
  35. Sun, J., et al. STIM1- and Orai1-Mediated Ca2+oscillation orchestrates invadopodium formation and melanoma invasion. Journal of Cell Biology. 207 (4), 535-548 (2014).
check_url/it/65427?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Kallay, L., Gawali, V. S., Toukam, D. K., Bhattacharya, D., Jenkins, A., Sengupta, S., Pomeranz Krummel, D. A. Screening Ion Channels in Cancer Cells. J. Vis. Exp. (196), e65427, doi:10.3791/65427 (2023).

View Video