Summary

Ufraksjonert Bulk Kultur av mus skjelettmuskulatur å rekapitulere nisje og stamcelle quiescence

Published: June 02, 2023
doi:

Summary

Skjelettmuskulatur består av flere celletyper, inkludert bosatt stamceller, hver med et spesielt bidrag til muskelhomeostase og regenerering. Her beskrives 2D-kulturen av muskelstamceller og muskelcellenisjen i en ex vivo-setting som bevarer mange av de fysiologiske, in vivo og miljømessige egenskapene.

Abstract

Skjelettmuskulatur er det største vevet i kroppen og utfører flere funksjoner, fra bevegelse til kroppstemperaturkontroll. Dens funksjonalitet og utvinning fra skader avhenger av en rekke celletyper og på molekylære signaler mellom kjernemuskelcellene (myofibre, muskelstamceller) og deres nisje. De fleste eksperimentelle innstillinger bevarer ikke dette komplekse fysiologiske mikromiljøet, og de tillater heller ikke ex vivo-studien av muskelstamceller i hvile, en celletilstand som er avgjørende for dem. Her er en protokoll skissert for ex vivo-kulturen av muskelstamceller med cellulære komponenter i deres nisje. Gjennom mekanisk og enzymatisk nedbrytning av muskler oppnås en blanding av celletyper, som settes i 2D-kultur. Immunofarging viser at innen 1 uke er flere nisjeceller tilstede i kultur sammen med myofibre og, viktigere, Pax7-positive celler som viser egenskapene til hvilende muskelstamceller. Disse unike egenskapene gjør denne protokollen til et kraftig verktøy for celleforsterkning og generering av hvilelignende stamceller som kan brukes til å løse grunnleggende og translasjonsspørsmål.

Introduction

Bevegelse, pust, metabolisme, kroppsstilling og vedlikehold av kroppstemperatur er alle avhengige av skjelettmuskulatur, og funksjonsfeil i skjelettmuskulaturen kan dermed forårsake svekkende patologier (dvs. myopatier, muskeldystrofier, etc.) 1. Gitt sine essensielle funksjoner og overflod, har skjelettmuskulatur trukket oppmerksomheten til forskningslaboratorier over hele verden som streber etter å forstå de viktigste aspektene som støtter normal muskelfunksjon og kan tjene som terapeutiske mål. I tillegg er skjelettmuskulatur en mye brukt modell for å studere regenerering og stamcellefunksjon, da sunn muskel kan fullstendig reparere seg selv etter fullstendig skade og degenerasjon, hovedsakelig på grunn av de bosatte stamceller2; Disse kalles også satellittceller og er lokalisert under basal lamina i periferien av muskelfibrene3.

Kjernecellene i voksen skjelettmuskulatur er myofibrene (lange syncytiale multinukleære celler) og satellittcellene (stamceller med myogent potensial som hviler til en skade aktiverer dem). De sistnevnte cellene er de sentrale cellene i muskelregenerering, og denne prosessen kan ikke forekomme i deres fravær 4,5,6,7. I deres umiddelbare mikromiljø er det flere celletyper og molekylære faktorer som signaliserer til dem. Denne nisjen etableres gradvis gjennom utviklingen og frem til voksen alder8. Voksen muskel inneholder flere celletyper (endotelceller, pericytter, makrofager, fibro-adipogene progenitorer-FAPs, regulatoriske T-celler, etc.) 9,10 og ekstracellulære matrikskomponenter (lamininer, kollagen, fibronektin, fibrilliner, periostin, etc.) 11 som samhandler med hverandre og med satellittcellene i sammenheng med helse, sykdom og regenerering.

Å bevare denne komplekse nisjen i eksperimentelle omgivelser er grunnleggende, men utfordrende. Like vanskelig er det å opprettholde eller gå tilbake til hvile, en celletilstand som er kritisk for satellittceller9. Flere metoder har blitt introdusert for delvis å takle disse utfordringene, hver med sine fordeler og ulemper (detaljert i diskusjonsdelen). Her presenteres en metode som delvis kan overvinne disse to barrierene. Muskler blir først høstet og deretter brutt ned mekanisk og enzymatisk før den heterogene celleblandingen settes i kultur. I løpet av kulturen oppdages mange celletyper av nisje, og satellittceller som har returnert til stillhet, observeres. Som et siste trinn i protokollen presenteres immunfluorescenstrinnene som muliggjør deteksjon av hver celletype ved bruk av universelt aksepterte markører.

Protocol

Alle eksperimenter overholdt franske og EUs dyreforskrifter ved Institut Mondor de Recherche Biomédicale (INSERM U955), spesielt direktivet 2010/63/UE. Dyrene ble holdt i et kontrollert og beriket miljø ved dyreavdelingene med sertifiseringsnummer A94 028 379 og D94-028-028; De ble kun håndtert av autoriserte forskere og dyrepassere, og de ble visuelt inspisert av dyrehuspersonell for tegn på ubehag i løpet av livet. De ble avlivet ved cervikal dislokasjon før disseksjon. Ingen intervensjonsprosedyrer ble utført i…

Representative Results

Denne protokollen tillater muskelcellekultur samtidig som satellittcellene og de fleste celler bevares fra deres endogene nisje. Figur 2 oppsummerer hovedtrinnene i protokollen, mens vesentlige deler av disseksjonen og fordøyelsen er presentert i figur 1. Disseksjon av bakkroppsmuskulaturen anbefales (figur 1A-C), da denne muskelgruppen er godt studert og deler utviklingsmessig opprinnelse og molek…

Discussion

Voksen skjelettmuskelfunksjon støttes av et fint orkestrert sett med cellulære interaksjoner og molekylære signaler. Her presenteres en metode som gjør det mulig å studere disse parametrene i en ex vivo-setting som ligner det fysiologiske mikromiljøet.

Flere grupper har rapportert in vitro-metoder for dyrkning av myogene celler. Disse metodene hadde som mål å isolere satellittceller for å studere deres myogene stamegenskaper. To hovedtilnærminger brukes til å isole…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Til figur 2 ble det brukt maler fra Servier Medical Art (https://smart.servier.com/). FR-laboratoriet støttes av Association Française contre les Myopathies – AFM via TRANSLAMUSCLE (tilskudd 19507 og 22946), Fondation pour la Recherche Médicale – FRM (EQU202003010217, ENV202004011730, ECO201806006793), Agence Nationale pour la Recherche – ANR (ANR-21-CE13-0006-02, ANR-19-CE13-0010, ANR-10-LABX-73) og La Ligue Contre le Cancer (IP / SC-17130). Ovennevnte finansiører hadde ingen rolle i utformingen, innsamlingen, analysen, tolkningen eller rapporteringen av denne studien eller skrivingen av dette manuskriptet.

Materials

anti-CD31 BD 550274 dilution 1:100
anti-FOSB Santa Cruz sc-7203 dilution 1:200
anti-GFP Abcam ab13970 dilution 1:1000
anti-Ki67 Abcam ab16667 dilution 1:1000
anti-MyHC DSHB MF20-c dilution 1:400
anti-MYOD Active Motif 39991 dilution 1:200
anti-MYOG Santa Cruz sc-576 dilution 1:150
anti-Pax7 Santa Cruz sc-81648 dilution 1:100
anti-PDGFRα Invitrogen PA5-16571 dilution 1:50
b-FGF Peprotech 450-33 concentration 4 ng/mL
bovine serum albumin (BSA) – used for digestion  Sigma Aldrich A7906-1006 concentration 0.2%
BSA IgG-free, protease-free – used for staining Jackson ImmunoResearch 001-000-162 concentration 5%
cell strainer 40 um Dominique Dutscher 352340
cell strainer 70 um Dominique Dutscher 352350
cell strainer 100 um Dominique Dutscher 352360
Collagenase Roche 10103586001 concentration 0.5 U/mL
Dimethyl sulfoxide (DMSO) Euromedex UD8050-05-A
Dispase Roche 4942078001 concentration 3 U/mL
Dissection forceps size 5 Fine Science Tools 91150-20
Dissection forceps size 55 Fine Science Tools 11295-51
Dissection scissors (big, straight) Fine Science Tools 9146-11 ideal for chopping
Dissection scissors (small, curved) Fine Science Tools 15017-10
Dissection scissors (small, straight) Fine Science Tools 14084-08
Dulbecco's Modified Eagle's Medium (DMEM) ThermoFisher 41966-029
EdU Click-iT kit ThermoFisher C10340
Fetal bovine serum – option 1 Eurobio CVF00-01
Fetal bovine serum – option 2 Gibco 10270-106 
Matrigel Corning Life Sciences 354234 coating solution
Parafilm Dominique Dutscher 090261 flexible film
Penicillin streptomycin Gibco 15140-122
Paraformaldehyde – option 1 PanReac AppliChem ITW Reagents 211511.1209 concentration 4%
Paraformaldeyde – option 2 ThermoFisher 28908 concentration 4%
Shaking water bath ThermoFisher TSSWB27
TritonX100 Sigma Aldrich T8532-500 ML concentration 0.5%
Wild-type mice Janvier C57BL/6NRj

Riferimenti

  1. Frontera, W. R., Ochala, J. Skeletal muscle: A brief review of structure and function. Calcified Tissue International. 96 (3), 183-195 (2015).
  2. Forcina, L., Cosentino, M., Musarò, A. Mechanisms regulating muscle regeneration: Insights into the interrelated and time-dependent phases of tissue healing. Cells. 9 (5), 1297 (2020).
  3. Mauro, A. Satellite cell of skeletal muscle fibers. Journal of Biophysical and Biochemical Cytology. 9 (2), 493-495 (1961).
  4. Lepper, C., Partridge, T. A., Fan, C. -. M. An absolute requirement for Pax7-positive satellite cells in acute injury-induced skeletal muscle regeneration. Development. 138 (17), 3639-3646 (2011).
  5. McCarthy, J. J., et al. Effective fiber hypertrophy in satellite cell-depleted skeletal muscle. Development. 138 (17), 3657-3666 (2011).
  6. Murphy, M. M., Lawson, J. A., Mathew, S. J., Hutcheson, D. A., Kardon, G. Satellite cells, connective tissue fibroblasts and their interactions are crucial for muscle regeneration. Development. 138 (17), 3625-3637 (2011).
  7. Sambasivan, R., et al. Pax7-expressing satellite cells are indispensable for adult skeletal muscle regeneration. Development. 138 (17), 3647-3656 (2011).
  8. Hicks, M. R., Pyle, A. D. The emergence of the stem cell niche. Trends in Cell Biology. 33 (22), 112-123 (2022).
  9. Relaix, F., et al. Perspectives on skeletal muscle stem cells. Nature Communications. 12 (1), 692 (2021).
  10. Gama, J. F. G., et al. Role of regulatory T cells in skeletal muscle regeneration: A systematic review. Biomolecules. 12 (6), 817 (2022).
  11. Loreti, M., Sacco, A. The jam session between muscle stem cells and the extracellular matrix in the tissue microenvironment. NPJ Regenerative Medicine. 7 (1), 16 (2022).
  12. Sambasivan, R., et al. Distinct regulatory cascades govern extraocular and pharyngeal arch muscle progenitor cell fates. Developmental Cell. 16 (6), 810-821 (2009).
  13. Pereira, P. D., et al. Quantification of cell cycle kinetics by EdU (5-ethynyl-2′-deoxyuridine)-coupled-fluorescence-intensity analysis. Oncotarget. 8 (25), 40514-40532 (2017).
  14. Bismuth, K., Relaix, F. Genetic regulation of skeletal muscle development. Experimental Cell Research. 316 (18), 3081-3086 (2010).
  15. Yin, H., Price, F., Rudnicki, M. A. Satellite cells and the muscle stem cell niche. Physiological Reviews. 93 (1), 23-67 (2013).
  16. Lertkiatmongkol, P., Liao, D., Mei, H., Hu, Y., Newman, P. J. Endothelial functions of platelet/endothelial cell adhesion molecule-1 (CD31). Current Opinion in Hematology. 23 (3), 253-259 (2016).
  17. Scholzen, T., Gerdes, J. The Ki-67 protein: From the known and the unknown. Journal of Cellular Physiology. 182 (3), 311-322 (2000).
  18. Abou-Khalil, R., Le Grand, F., Chazaud, B. Human and murine skeletal muscle reserve cells. Stem Cell Niche. 1035, 165-177 (2013).
  19. Pasut, A., Oleynik, P., Rudnicki, M. A. Isolation of muscle stem cells by fluorescence activated cell sorting cytometry. Methods in Molecular Biology. 798, 53-64 (2011).
  20. Liu, L., Cheung, T. H., Charville, G. W., Rando, T. A. Isolation of skeletal muscle stem cells by fluorescence-activated cell sorting. Nature Protocols. 10 (10), 1612-1624 (2015).
  21. Montarras, D., et al. Direct isolation of satellite cells for skeletal muscle regeneration. Science. 309 (5743), 2064-2067 (2005).
  22. Qu, Y., Edwards, K., Barrow, J. Isolation, culture, and use of primary murine myoblasts in small-molecule screens. STAR Protocols. 4 (2), 102149 (2023).
  23. Danoviz, M. E., Yablonka-Reuveni, Z. Skeletal muscle satellite cells: Background and methods for isolation and analysis in a primary culture system. Methods in Molecular Biology. 798, 21-52 (2011).
  24. Saclier, M., Theret, M., Mounier, R., Chazaud, B. Effects of macrophage conditioned-medium on murine and human muscle cells: analysis of proliferation, differentiation, and fusion. Methods in Molecular Biology. 1556, 317-327 (2017).
  25. Giordani, L., et al. High-dimensional single-cell cartography reveals novel skeletal muscle-resident cell populations. Molecular Cell. 74 (3), 609-621 (2019).
  26. Tabula Muris Consortium et al. Single-cell transcriptomics of 20 mouse organs creates a Tabula Muris. Nature. 562 (7727), 367-372 (2018).
  27. Brunetti, J., Koenig, S., Monnier, A., Frieden, M. Nanopattern surface improves cultured human myotube maturation. Skeletal Muscle. 11 (1), 12 (2021).
  28. Denes, L. T., et al. Culturing C2C12 myotubes on micromolded gelatin hydrogels accelerates myotube maturation. Skeletal Muscle. 9 (1), 17 (2019).
  29. LaFramboise, W. A., et al. Effect of muscle origin and phenotype on satellite cell muscle-specific gene expression. Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 35 (10), 1307-1318 (2003).
  30. Azhar, M., Wardhani, B. W. K., Renesteen, E. The regenerative potential of Pax3/Pax7 on skeletal muscle injury. Journal of Generic Engineering and Biotechnology. 20 (1), 143 (2022).
  31. Hardy, D., et al. Comparative study of injury models for studying muscle regeneration in mice. PLoS One. 11 (1), e0147198 (2016).
check_url/it/65433?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Zaidan, L., Geara, P., Borok, M. J., Machado, L., Mademtzoglou, D., Mourikis, P., Relaix, F. Unfractionated Bulk Culture of Mouse Skeletal Muscle to Recapitulate Niche and Stem Cell Quiescence. J. Vis. Exp. (196), e65433, doi:10.3791/65433 (2023).

View Video