Summary

זיהוי אוטומטי מעולה של טפילי טריפנוזום באמצעות מודל היברידי של למידה עמוקה

Published: October 27, 2023
doi:

Summary

טפילי דם רפואיים ברחבי העולם נבדקו באופן אוטומטי באמצעות צעדים פשוטים על פלטפורמת AI עם קידוד מועט. האבחנה הפרוספקטיבית של שכבות דם שופרה על ידי שימוש בשיטת זיהוי וסיווג אובייקטים במודל היברידי של למידה עמוקה. שיתוף הפעולה של ניטור פעיל ומודלים מאומנים היטב מסייע לזהות נקודות חמות של העברת טריפנוזומים.

Abstract

טריפנוסומיאזיס היא בעיה משמעותית בבריאות הציבור במספר אזורים ברחבי העולם, כולל דרום אסיה ודרום מזרח אסיה. זיהוי אזורים חמים תחת מעקב פעיל הוא הליך בסיסי לשליטה בהעברת מחלות. בדיקה מיקרוסקופית היא שיטת אבחון נפוצה. עם זאת, היא מסתמכת בעיקר על כוח אדם מיומן ומנוסה. כדי להתמודד עם בעיה זו, הוצגה תוכנית בינה מלאכותית (AI) העושה שימוש בטכניקת למידה עמוקה היברידית של זיהוי אובייקטים וסיווג אובייקטים עמוד השדרה של הרשת העצבית על פלטפורמת AI עם קידוד מועט (CiRA CORE). התוכנה יכולה לזהות ולסווג את מיני הטריפנוזומים הפרוטוזואים, כלומר Trypanosoma cruzi, T. brucei ו – T. evansi, מתמונות מיקרוסקופיות של טבילת שמן. תוכנית הבינה המלאכותית משתמשת בזיהוי תבניות כדי לצפות ולנתח פרוטוזואה מרובים בתוך דגימת דם אחת ומדגישה את הגרעין והקינטופלסט של כל טפיל כתכונות אופייניות ספציפיות באמצעות מפת קשב.

כדי להעריך את ביצועי תוכנית הבינה המלאכותית, נוצרים שני מודולים ייחודיים המספקים מגוון מדדים סטטיסטיים כגון דיוק, היזכרות, ספציפיות, דיוק, ציון F1, שיעור סיווג שגוי, עקומות מאפייני הפעלה של מקלט (ROC) ועקומות דיוק לעומת אחזור (PR). ממצאי ההערכה מראים כי אלגוריתם הבינה המלאכותית יעיל בזיהוי וסיווג טפילים. על ידי אספקת כלי סינון מהיר, אוטומטי ומדויק, לטכנולוגיה זו יש פוטנציאל לשנות את המעקב והבקרה אחר מחלות. זה יכול גם לסייע לפקידים מקומיים לקבל החלטות מושכלות יותר על אסטרטגיות חסימת מחלות.

Introduction

טריפנוסומיאזיס הוא אתגר משמעותי לבעיות בריאות עולמיות בשל מגוון מינים זואונוטיים הגורמים למחלות אנושיות עם מגוון רחב של תפוצה גיאוגרפית מחוץ ליבשות אפריקה ואמריקה, כגון דרום ודרום מזרח אסיה 1,2,3. טריפנוסומיאזיס אפריקאי אנושי (HAT) או מחלת שינה, נגרמת על ידי Trypanosoma brucei gambiense ו– T. b. rhodesiense המייצרים את הצורות הכרוניות והחריפות, בהתאמה, המייצגות את ההתפשטות העיקרית באפריקה. הטפיל הסיבתי שייך לקבוצת Salivaria עקב העברת רוק נגוע של זבובי Tsetse4. והואיל והטריפנוסומיאזיס האמריקאי הידוע (מחלת צ’אגאס) הנגרמת על ידי T. cruzi מהווה דאגה לבריאות הציבור במדינות שאינן אנדמיות; כולל קנדה, ארה”ב, אירופה, אוסטרליה ויפן, בגלל ההגירה התכופה של פרטים מאזורים אנדמיים5. זיהום טריפנוזום שייך לקבוצת Stercoraria כי זה מועבר על ידי צואה נגועה של חרקים reduviid. טריפנוסומיאזות וטריפנוזמוזות (מחלת סורה) הנגרמות על ידי זיהום T. evansi אנדמיות באפריקה, דרום אמריקה, מערב ומזרח אסיה, ומדינות דרום ודרום מזרח אסיה 3,6. למרות טריפנוסומיאזיס אנושי שנגרם על ידי טריפנוזום דווח 3,4,7,8,9,10,11,12, מסלול העברת זיהום הטפיל שנוי במחלוקת: או הדם המכני או נגוע באמצעות חרקים hematophagous כגון זבובי tsetse ו tabanids או זבובי סוסים 6,7, 8,9,10,12,13,14. לא נמצא דיווח מקרה בתאילנד, עם זאת, שכיחות גבוהה של זיהום T. evansi בכלב15, סוסי מרוץ ותאו מים באזור המזרחי פורסמה16, מה שמרמז על העברה נרכשת בין חיות בית שהתרחשה. דווח על מספר זיהומים אנושיים לא טיפוסיים הנגרמים על ידי טריפנוזומים של בעלי חיים (T. vivax, T. b. brucei, T. congolense, T. lewisi ו-T. evansi), שאינם הצורות הקלאסיות של טריפנוזומים אנושיים17. ניתן לזלזל במודעות לזיהומים אנושיים לא טיפוסיים, להדגיש את הצורך בבדיקות אבחון משופרות ובחקירות שטח לאיתור ואישור מקרים לא טיפוסיים אלה, ולאפשר בקרה וטיפול נאותים במחלות פתוגניות של בעלי חיים המשפיעות על בעלי חיים עולמיים, ביטחון תזונתי18 ובריאות האדם. הדבר הוביל לפיתוח אסטרטגיה פוטנציאלית המשולבת בשיטה משותפת קיימת (בדיקה מיקרוסקופית) לסינון מהיר של דגימות דם באזורים מרוחקים במהלך מעקב פעיל, המאפשר זיהוי של האזורים החמים להגבלה ושליטה במחלה.

שכיחות ספורדית של מחלת סורה במגוון רחב של חיות בית כגון דרומדריות, בקר, סוסים וכלבים המזכירים T. evansi אאוריקסני עשויה להיות זואונוטית לבני אדם 1,4,13,14. זיהום אנושי נראה בלתי אפשרי מכיוון שגורם טריפנוליטי בסרום אנושי, המתבטא בגן דמוי sra, מסוגל למנוע T. brucei ו– T. congolense12,19 אנושיים. יתר על כן, כפי שמוכיח דו”ח המקרה הראשון מהודו, למחלה אין קשר לחולי HIV מדוכאי חיסון4. כפי שתואר לעיל, הזיהום האנושי האפשרי עשוי להיות קשור למחסור ליפופרוטאין בצפיפות גבוהה עם תפקוד לא תקין של הגורם הליטי טריפנוזום, שהוא הפרעה גנטית אוטוזומלית רצסיבית נדירה, כלומר מחלת טנג’יר4. בשנת 2016 התגלה כי לחולה וייטנאמי יש שני אללים מסוג פראי APOL1 וריכוז APOL1 בסרום בטווח הנורמלי. עם זאת, התיאוריה של מחסור APOL-1 כבר לא נחשב תקף12. לכן, מנגנון אפשרי אחד של זיהום טריפנוזום הוא מגע ישיר של פצע עם דם בעלי חיים נגועים במהלך גידול בעלי חיים תעסוקתיים 4,12. בדיקה מיקרוסקופית מגלה כי המורפולוגיה של T. evansi היא צורה מונומורפית של הטריפומסטיגוטה, הכוללת טריפנוזום ארוך, דק, שוטון ומתחלק, הדומה למין הקרוב שלהם T. brucei 1,12,13. הגרעין נמצא במיקום המרכזי עם קינטופלסט קטן נראה לעין במצב האחורי. מחקר קודם הצביע על כך שהטפיל יכול להתקיים בשתי צורות דומות, הידועות כצורות קלאסיות וקטועות. עם זאת, עדיין יש צורך לאשר את ההשפעות הפתוגניות שלהם בהתאמה על המארחים20. מהלך הסימפטומים משתנה החל מחום לסירוגין הקשור לצמרמורות והזעה. סוראמין, למרבה המזל, הוא טיפול קו ראשון מוצלח לטריפנוסומיאזיס אפריקאי אנושי בשלב מוקדם ללא פלישה למערכת העצבים המרכזית (CNS), ריפוי חולים בהודו ובווייטנאם 4,12,21.

מלבד בדיקת סימנים קליניים, קיימות מספר שיטות אבחון לטפילים של T. evansi, כולל תצפית מיקרוסקופית פרזיטולוגית 4,9,12, סרולוגית 4,8,9,10,12, ובדיקות ביולוגיות מולקולריות 4,12. סרטים דקים המוכתמים בגימסה משמשים לעתים קרובות כדי לדמיין את הטפיל הקיים בבדיקה מיקרוסקופית, המשמשת באופן שגרתי ונפוץ22. עם זאת, נראה כי ההליך אפשרי; עם זאת, הוא גוזל זמן ודורש עבודה רבה, יש לו שונות הערכה בין-מדרגית, הוא רגיש לשלב אקוטי בלבד, ודורש חניך אישי23. הן בביולוגיה מולקולרית והן בבדיקות סרולוגיות נדרשו גם הן כוח אדם מיומן לביצוע תהליכים מרובים של הכנת דגימות, כולל חילוץ וטיהור הדגימות לפני בדיקתן עם מכשירים יקרים, דבר שקשה לתקן, סיכון לזיהום בחומרים חוץ-טפיליים ואי התאמות בתוצאות24. בהתבסס על הרציונל שתואר לעיל, יש צורך בטכנולוגיית סינון מהירה ומוקדמת כדי לתמוך במחקר המעקב בשטח ולהבטיח שתוצאות הסקר ידווחו בזמן כדי לזהות את האזור החם לשליטה נוספת בהעברת המחלה 1,8. מכשירים ממוחשבים (CAD) הוצעו כטכנולוגיה חדשנית לתחומים רפואיים, כולל משימות היסטופתולוגיות וציטופתולוגיות25. ה- CAD שהוזכר לעיל בוצע במהירות גבוהה וחושב באמצעות זיהוי דפוסים, כלומר בינה מלאכותית (AI). שיטת הבינה המלאכותית מושגת באמצעות אלגוריתמים של רשת עצבית קונבולוציונית שניתן להשתמש בהם כדי להתמודד עם מספר רב של דגימות מערכי נתונים, במיוחד גישת למידה מפוקחת המאמנת מודל מאומן היטב על צריכת נתונים.

באופן כללי, AI היא היכולת של מחשבים לפתור משימות הדורשות מודיעין מומחה, כגון תיוג נתונים. למידת מכונה (ML), תת-תחום של בינה מלאכותית, מיוצגת כמערכת מחשב עם שני תהליכים שונים המורכבים מחילוץ תכונות וזיהוי דפוסים. למידה עמוקה (DL), או אלגוריתמי ML מתקדמים, מתייחסת לפיתוח של תוכניות ומכשירים ממוחשבים המשווים ביצועים דמויי אדם עם רמות דיוק גבוהות ושוות לאלה שהושגו על ידי אנשי מקצוע אנושיים26. כיום, תפקידה של DL בתחומים רפואיים ווטרינריים מרחיב ומחולל מהפכה מבטיחה במניעת מחלות מידבקות במטרה למנוע אותה לאחרונה ולהדריך אותה לצוות בריאות פרטני22,27. יישום DL פוטנציאלי הוא בלתי מוגבל עם תוויות איכות ומספר רב של ערכות נתונים מוגברת, מה שמשחרר מומחים לנהל את משימת הפרויקט. באופן ספציפי, התקדמות בתמונה הדיגיטלית יחד עם ניתוח בעזרת מחשב, שיפרו את האבחון והסינון האוטומטיים בחמש קטגוריות של פתולוגיה שדווחו; כולל סטטי, דינמי, רובוטי, הדמיית שקופיות שלמות ושיטות היברידיות28. יש לקחת בחשבון כי שילוב של גישות אלגוריתם DL ונתוני תמונה דיגיטליים יכול לעודד צוות מקומי להשתמש בטכנולוגיה בפרקטיקות היומיומיות שלהם.

בעבר, העלייה בדיוק החיזוי של שימוש במודל היברידי הוכחה27. כדי לזהות את טפיל הטריפנוזום בתמונות מיקרוסקופיות, מחקר זה מציג שני מודלים היברידיים, המשלבים את האלגוריתמים YOLOv4-tiny (זיהוי אובייקטים) ו- Densenet201 (סיווג אובייקטים). מבין מספר מודלי זיהוי, YOLOv4-tiny עם עמוד שדרה CSPDarknet53 הראה ביצועים גבוהים כתוצאת חיזוי במונחים של לוקליזציה וסיווג29. מכיוון שהגלאי בזמן אמת שינה את האיזון האופטימלי בין רזולוציית רשת הקלט, כמות שכבת הקונבולוציה, הפרמטר הכולל ומספר יציאות השכבה, הוא שיפר את תעדוף מהירויות ההפעלה המהירות ואופטימיזציה לחישובים מקביליים בהשוואה לגרסאות קודמות. רשת קונבולוציונית צפופה (DenseNet) היא מודל פופולרי נוסף שמשיג תוצאות עדכניות במערכי נתונים תחרותיים. DenseNet201 הניב שגיאת אימות דומה לזו של ResNet101; עם זאת, ל- DenseNet201 יש פחות מ- 20 מיליון פרמטרים, שזה פחות מ- ResNet101 של יותר מ -40 מיליון פרמטרים30. לכן, מודל DenseNet יכול לשפר את דיוק החיזוי עם מספר גדל והולך של פרמטרים ללא סימן של התאמת יתר. כאן, תוכנית בינה מלאכותית (AI) משתמשת באלגוריתם למידה עמוקה היברידי עם עמוד שדרה של רשת עצבית לזיהוי וסיווג עמוק על פלטפורמת CiRA CORE הפנימית. התוכנה שפותחה יכולה לזהות ולסווג את מיני הטריפנוזומים הפרוטוזואניים, כלומר Trypanosoma cruzi, T. brucei ו – T. evansi, מתמונות מיקרוסקופיות של טבילת שמן. לטכנולוגיה זו יש פוטנציאל לחולל מהפכה במעקב ובקרה אחר מחלות על ידי מתן שיטת סינון מהירה, אוטומטית ומדויקת. זה יכול לסייע לצוות המקומי לקבל החלטות מושכלות יותר על אסטרטגיות חסימת שידור עבור מחלת פרוטוזואן טפילית.

Protocol

סרטי דם ארכיוניים ועיצוב הפרויקט אושרו על ידי הוועדה המוסדית לבטיחות ביולוגית, הוועדה המוסדית לטיפול ושימוש בבעלי חיים של הפקולטה למדעי הווטרינריה, אוניברסיטת צ’ולאלונגקורן (IBC מס ‘2031033 ו- IACUC מס ‘1931027), וועדת האתיקה של המחקר האנושי של המכון הטכנולוגי של המלך מונגקוט Ladkrabang (EC-KMITL_66_014). <p class="j…

Representative Results

במחקר זה, אלגוריתמים היברידיים של למידה עמוקה הוצעו כדי לסייע בחיזוי אוטומטי של החיוביות של דגימת דם עם זיהום טפיל טריפנוזומים. סרטי דם מוכתמים בארכיון של Giemsa מוינו כדי למקם ולסווג את הטפילים לעומת הלא טפילים באמצעות אלגוריתם זיהוי אובייקטים המבוסס על רשת עצבית בעמוד השדרה של הרשת האפלה. …

Discussion

תצפית מיקרוסקופית על זיהום פרוטוזואה טריפנוזומה היא מוקדמת ונפוצה, במיוחד במהלך מעקב באזורים מרוחקים שבהם יש מחסור בטכנאים מיומנים ותהליכים עתירי עבודה וגוזלי זמן שכולם מכשולים לדיווח על ארגון הבריאות בזמן. למרות שטכניקות ביולוגיה מולקולרית כגון אימונולוגיה ותגובת שרשרת פולימראז (PCR) א…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

עבודה זו (מענק מחקר לחוקר חדש, מענק מס’ RGNS 65 – 212) נתמך כספית על ידי משרד המזכיר הקבוע, משרד ההשכלה הגבוהה, המדע, המחקר והחדשנות (OPS MHESI), המחקר והחדשנות המדעית של תאילנד (TSRI) והמכון הטכנולוגי של המלך מונגקוט Ladkrabang. אנו אסירי תודה למועצת המחקר הלאומית של תאילנד (NRCT) [NRCT5-RSA63001-10] על מימון פרויקט המחקר. M.K. מומן על ידי קרן המחקר והחדשנות המדעית של תאילנד אוניברסיטת צ’ולאלונגקורן. אנו מודים גם למכללה לחדשנות בייצור מתקדם, המכון הטכנולוגי של המלך מונגקוט, Ladkrabang שסיפקו את פלטפורמת הלמידה העמוקה והתוכנה לתמיכה בפרויקט המחקר.

Materials

Darknet19, Darknet53 and Densenet201 Gao Huang, Z. L., Laurens van der Maaten. Densely Connected Convolutional Networks. arXiv:1608.06993 [cs.CV]. (2016) https://github.com/liuzhuang13/DenseNet  Deep convolutional neural network model that can function to  classification
Generic name: YOLO model/ detection model?
Olympus CX31 Model CX31RRBSFA  Olympus, Tokyo, Japan SN 4G42178  A light microscope 
Olympus DP21-SAL U-TV0.5XC-3  Olympus, Tokyo, Japan SN 3D03838 A digital camera
Generic name: Classification models/ densely CNNs
Window 10 Microsoft Window 10 Operation system in computers
YOLO v4-tiny  Naing, K. M. et al. Automatic recognition of parasitic products in stool examination using object detection approach. PeerJ Comput Sci. 8 e1065, (2022). https://git.cira-lab.com/users/sign_in Deep convolutional neural network model that can function to both localization and also classification 
https://git.cira-lab.com/users/sign_in

Riferimenti

  1. Kasozi, K. I., et al. Epidemiology of trypanosomiasis in wildlife-implications for humans at the wildlife interface in Africa. Frontiers in Veterinary Science. 8, 621699 (2021).
  2. Ola-Fadunsin, S. D., Gimba, F. I., Abdullah, D. A., Abdullah, F. J. F., Sani, R. A. Molecular prevalence and epidemiology of Trypanosoma evansi among cattle in peninsular Malaysia. Acta Parasitologica. 65 (1), 165-173 (2020).
  3. Aregawi, W. G., Agga, G. E., Abdi, R. D., Buscher, P. Systematic review and meta-analysis on the global distribution, host range, and prevalence of Trypanosoma evansi. Parasites & Vectors. 12 (1), 67 (2019).
  4. Joshi, P. P., et al. Human trypanosomiasis caused by Trypanosoma evansi in India: the first case report. The Am Journal of Tropical Medicine and Hygiene. 73 (3), 491-495 (2005).
  5. Lidani, K. C. F., et al. Chagas disease: from discovery to a worldwide health problem. Frontiers in Public Health. 7, 166 (2019).
  6. Sazmand, A., Desquesnes, M., Otranto, D. Trypanosoma evansi. Trends in Parasitology. 38 (6), 489-490 (2022).
  7. Powar, R. M., et al. A rare case of human trypanosomiasis caused by Trypanosoma evansi.Indian. Journal of Medical Microbiology. 24 (1), 72-74 (2006).
  8. Shegokar, V. R., et al. Short report: Human trypanosomiasis caused by Trypanosoma evansi in a village in India: preliminary serologic survey of the local population. American Journal of Tropical Medicine and Hygiene. 75 (5), 869-870 (2006).
  9. Haridy, F. M., El-Metwally, M. T., Khalil, H. H., Morsy, T. A. Trypanosoma evansi in dromedary camel: with a case report of zoonosis in greater Cairo, Egypt. Journal of the Egyptian Society of Parasitology. 41 (1), 65-76 (2011).
  10. Dey, S. K. CATT/T.evansi antibody levels in patients suffering from pyrexia of unknown origin in a tertiary care hospital in Kolkata. Research Journal of Pharmaceutical, Biological and Chemical Sciences. 5, 334-338 (2014).
  11. Dakshinkar, N. P., et al. Aberrant trypanosomias in human. Royal Veterinary Journal of India. 3 (1), 6-7 (2007).
  12. Vn Vinh Chau, N., et al. A clinical and epidemiological investigation of the first reported human infection with the zoonotic parasite Trypanosoma evansi in Southeast Asia. Clinical Infectious Diseases. 62 (8), 1002-1008 (2016).
  13. Misra, K. K., Roy, S., Choudhary, A. Biology of Trypanosoma (Trypanozoon) evansi in experimental heterologous mammalian hosts. Journal of Parasitic Diseases. 40 (3), 1047-1061 (2016).
  14. Nakayima, J., et al. Molecular epidemiological studies on animal trypanosomiases in Ghana. Parasites & Vectors. 5, 217 (2012).
  15. Riana, E., et al. The occurrence of Trypanosoma in bats from Western Thailand. The 20th Chulalongkorn University Veterinary Conference CUVC 2021: Research in practice. 51, (2021).
  16. Camoin, M., et al. The Indirect ELISA Trypanosoma evansi in equids: optimisation and application to a serological survey including racing horses, in Thailand. BioMed Research International. 2019, 2964639 (2019).
  17. Truc, P., et al. Atypical human infections by animal trypanosomes. PLoS Neglected Tropical Diseases. 7 (9), 2256 (2013).
  18. Desquesnes, M., et al. Diagnosis of animal trypanosomoses: proper use of current tools and future prospects. Parasites & Vectors. 15 (1), 235 (2022).
  19. Da Silva, A. S., et al. Trypanocidal activity of human plasma on Trypanosoma evansi in mice. Revista Brasileira de Parasitologia Veterinaria. 21 (1), 55-59 (2012).
  20. Desquesnes, M., et al. Trypanosoma evansi and surra: a review and perspectives on transmission, epidemiology and control, impact, and zoonotic aspects. BioMed Research International. 2013, 321237 (2013).
  21. World Health Organization. A new form of human trypanosomiasis in India. Description of the first human case in the world caused by Trypanosoma evansi. Weekly Epidemiological Record. 80 (7), 62-63 (2005).
  22. Naing, K. M., et al. Automatic recognition of parasitic products in stool examination using object detection approach. PeerJ Computer Science. 8, 1065 (2022).
  23. Wongsrichanalai, C., Barcus, M. J., Muth, S., Sutamihardja, A., Wernsdorfer, W. H. A review of malaria diagnostic tools: microscopy and rapid diagnostic test (RDT). American Journal of Tropical Medicine and Hygiene. 77, 119-127 (2007).
  24. Rostami, A., Karanis, P., Fallahi, S. Advances in serological, imaging techniques and molecular diagnosis of Toxoplasma gondii infection. Infection. 46 (3), 303-315 (2018).
  25. Ahmad, Z., Rahim, S., Zubair, M., Abdul-Ghafar, J. Artificial intelligence (AI) in medicine, current applications and future role with special emphasis on its potential and promise in pathology: present and future impact, obstacles including costs and acceptance among pathologists, practical and philosophical considerations. A comprehensive review. Diagnostic Pathology. 16 (1), 24 (2021).
  26. Sarker, I. H. Deep learning: a comprehensive overview on techniques, taxonomy, applications and research directions. SN Computer Science. 2 (6), 420 (2021).
  27. Kittichai, V., et al. Classification for avian malaria parasite Plasmodium gallinaceum blood stages by using deep convolutional neural networks. Scientific Reports. 11 (1), 16919 (2021).
  28. Baskota, S. U., Wiley, C., Pantanowitz, L. The next generation robotic microscopy for intraoperative teleneuropathology consultation. Journal of Pathology Informatics. 11, 13 (2020).
  29. Bochkovskiy, A., Wang, C. -. Y., Liao, H. -. Y. M. YOLOv4: optimal speed and accuracy of object detection. arXiv. , 10934 (2004).
  30. Huang, G., Liu, Z., vander Maaten, L., Weinberger, K. Q. Densely connected convolutional networks. arXiv. , 06993 (2018).
  31. . CDC-DPDx. Diagnostic procedures – Blood specimens Available from: https://www.cdc.gov/dpdx/diagosticprocedures/blood/specimenproc.html#print (2020)
  32. Control and surveillance of African trypanosomiasis: report of a WHO expert committee. WHO Technical Report Series 881 Available from: https://iris.who.int/bitstream/handle/10665/42087/WHO_TRS_881.pdf?sequence=1 (1998)
  33. Leber, A. L. Detection of blood parasites. Clinical Microbiology Procedures Handbook. , (2022).
  34. Huang, L. -. P., Hong, M. -. H., Luo, C. -. H., Mahajan, S., Chen, L. -. J. A vector mosquitoes classification system based on edge computing and deep learning. Proceedings-2018 Conmference on Technologies and Applications of Artifical Intelligence. , 24-27 (2018).
  35. Cihan, P., Gökçe, E., Kalipsiz, O. A review of machine learning applications in veterinary field. Kafkas Universitesi Veteriner Fakultesi Dergisi. 23 (4), 673-680 (2017).
  36. Berrar, D. Cross-validation. Encyclopedia of Bioinformatics and Computational Biology. 1, 542-545 (2019).
  37. Gaithuma, A. K., et al. A single test approach for accurate and sensitive detection and taxonomic characterization of Trypanosomes by comprehensive analysis of internal transcribed spacer 1 amplicons. PLoS Neglected Tropical Diseases. 13 (2), 0006842 (2019).
  38. Vijayalakshmi, A., Rajesh Kanna, B. Deep learning approach to detect malaria from microscopic images. Multimedia Tools and Applications. 79 (21-22), 15297-15317 (2019).
  39. Morais, M. C. C., et al. Automatic detection of the parasite Trypanosoma cruzi in blood smears using a machine learning approach applied to mobile phone images. PeerJ. 10, 13470 (2022).
  40. Uc-Cetina, V., Brito-Loeza, C., Ruiz-Pina, H. Chagas parasite detection in blood images using AdaBoost. Computational and Mathematical Methods in Medicine. 2015, 139681 (2015).
  41. Zhang, C., et al. Deep learning for microscopic examination of protozoan parasites. Computational and Structural Biotechnology Journal. 20, 1036-1043 (2022).
  42. Sarataphan, N., et al. Diagnosis of a Trypanosoma lewisi-like (Herpetosoma) infection in a sick infant from Thailand. Journal of Medical Microbiology. 56, 1118-1121 (2007).
  43. Desquesnes, M., et al. A review on the diagnosis of animal trypanosomoses. Parasites & Vectors. 15 (1), 64 (2022).
  44. Fuhad, K. M. F., et al. Deep learning based automatic malaria parasite detection from blood smear and its smartphone based application. Diagnostics (Basel). 10 (5), 329 (2020).
  45. Christian Matek, S. S., Spiekermann, K., Marr, C. Human-level recognition of blast cells in acute myeloid leukaemia with convolutional neural networks. Nature Machine Intelligence. 1, 538-544 (2019).
  46. Hamdan, S., Ayyash, M., Almajali, S. Edge-computing architectures for internet of things applications: a survey. Sensors (Basel). 20 (22), 6441 (2020).
  47. Visser, T., et al. A comparative evaluation of mobile medical APPS (MMAS) for reading and interpreting malaria rapid diagnostic tests. Malaria Journal. 20 (1), 39 (2021).
  48. Giorgi, E., Macharia, P. M., Woodmansey, J., Snow, R. W., Rowlingson, B. Maplaria: a user friendly web-application for spatio-temporal malaria prevalence mapping. Malaria Journal. 20 (1), 471 (2021).
  49. Rajaraman, S., Jaeger, S., Antani, S. K. Performance evaluation of deep neural ensembles toward malaria parasite detection in thin-blood smear images. PeerJ. 7, 6977 (2019).
check_url/it/65557?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Kittichai, V., Kaewthamasorn, M., Thanee, S., Sasisaowapak, T., Naing, K. M., Jomtarak, R., Tongloy, T., Chuwongin, S., Boonsang, S. Superior Auto-Identification of Trypanosome Parasites by Using a Hybrid Deep-Learning Model. J. Vis. Exp. (200), e65557, doi:10.3791/65557 (2023).

View Video