Summary

Gemodificeerde In Vivo Matrix Gel Plug Assay voor Angiogenesestudies

Published: June 30, 2023
doi:

Summary

De hier gepresenteerde methode kan het effect van reagentia op angiogenese of vasculaire permeabiliteit in vivo evalueren zonder kleuring. De methode maakt gebruik van dextran-FITC-injectie via de staartader om neovaten of vasculaire lekkage te visualiseren.

Abstract

Er zijn verschillende modellen ontwikkeld om angiogenese in vivo te onderzoeken. De meeste van deze modellen zijn echter complex en duur, vereisen gespecialiseerde apparatuur of zijn moeilijk uit te voeren voor latere kwantitatieve analyse. Hier presenteren we een gemodificeerde matrix gelplug-assay om angiogenese in vivo te evalueren. In dit protocol werden vasculaire cellen gemengd met matrixgel in de aan- of afwezigheid van pro-angiogene of anti-angiogene reagentia, en vervolgens subcutaan geïnjecteerd in de rug van ontvangende muizen. Na 7 dagen wordt fosfaatbufferzoutoplossing met dextran-FITC via de staartader geïnjecteerd en gedurende 30 minuten in vaten gecirculeerd. Matrixgelpluggen worden verzameld en ingebed met weefselinbeddingsgel, waarna secties van 12 μm worden gesneden voor fluorescentiedetectie zonder kleuring. In deze test kan dextran-FITC met een hoog molecuulgewicht (~150.000 Da) worden gebruikt om functionele vaten aan te duiden voor het detecteren van hun lengte, terwijl dextran-FITC met een laag molecuulgewicht (~4.400 Da) kan worden gebruikt om de permeabiliteit van neovaten aan te geven. Concluderend kan dit protocol een betrouwbare en handige methode bieden voor de kwantitatieve studie van angiogenese in vivo.

Introduction

Angiogenese, het proces van vorming van neovaten uit reeds bestaande vaten, speelt een cruciale rol in veel fysiologische en pathologische processen, zoals embryonale ontwikkeling, wondgenezing, atherosclerose, tumorontwikkeling, enz.1,2,3,4,5. Dit dynamische proces omvat verschillende stappen, waaronder de afbraak van de matrix, vasculaire celproliferatie, migratie en zelforganisatie om buisvormige structuren te vormen en de stabilisatie van de neovaten6. Het is aangetoond dat het bevorderen van angiogenese van cruciaal belang is bij de behandeling van myocardinfarct, beroerte en andere soorten ischemische ziekten7, terwijl het remmen van angiogenese wordt beschouwd als een veelbelovende strategie bij de behandeling van kankers8 en reumatoïde aandoeningen9. Angiogenese wordt beschouwd als een organiserend principe voor de ontdekking van geneesmiddelen10. De constructie van een betrouwbare en handige methode om de omvang van angiogenese te beoordelen, is dus van cruciaal belang voor mechanisch onderzoek of het ontdekken van geneesmiddelen bij angiogenese-afhankelijke ziekten.

Er zijn verschillende in vitro en in vivo modellen ontwikkeld om angiogenesete evalueren 11. Hiervan kunnen tweedimensionale (2D) modellen, zoals matrix gelbuisvormingstest12, geen functionele buisvormige structuren vormen. De diermodellen, zoals het ischemiemodel13,14 van de achterpoten, kunnen het angiogeneseproces reproduceren, maar zijn complex en vereisen een laserspikkelbeeldvormingssysteem. 3D-modellen van vasculaire morfogenese, zoals matrixgelplug-assay, bieden een eenvoudig platform dat het proces van angiogenese in vivo15 kan nabootsen, maar de detectie van angiogenese vereist immunohistochemie of immunofluorescentiekleuring 16,17,18, die variabel en slecht gevisualiseerd zijn.

Hier beschrijven we een protocol voor een gemodificeerde matrix gel plug assay waarbij vasculaire cellen werden gemengd met matrix gel en subcutaan geïnjecteerd in de rug van muizen om een plug te vormen. In de plug moeten vasculaire cellen de matrix afbreken, zich vermenigvuldigen, migreren en zichzelf organiseren om uiteindelijk functionele bloedvaten te vormen met bloedstroom in de interne omgeving. Daarna wordt fluorescerend gelabeld dextran geïnjecteerd via de staartader, om door de plug te stromen, en het label wordt gevisualiseerd om neovaten aan te geven. De inhoud van angiogenese kan kwantitatief worden geëvalueerd aan de hand van de lengte van de bloedvaten. Deze methode kan functionele vaten vormen die niet kunnen worden geproduceerd in 2D-angiogenesemodellen12, en vereist geen complex kleuringsproces zoals in gewone matrixgelplugtest11. Het vereist ook geen dure specifieke instrumenten zoals laserspikkelbloedstroombeeldvormingssysteem in ischemiemodel 13,14,19 van de achterpoten. Deze methode is veelzijdig, goedkoop, kwantificeerbaar en gemakkelijk uit te voeren, en kan worden gebruikt om het pro- of anti-angiogene vermogen van geneesmiddelen te bepalen of kan worden gebruikt in mechanisch onderzoek dat betrokken is bij angiogenese.

Protocol

Alle procedures waarbij proefdieren betrokkenwaren, zijn goedgekeurd door het Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) van de Wenzhou Medical University (XMSQ2021-0057, 19 juli 2021). Alle reagentia en verbruiksartikelen staan vermeld in de materiaaltabel. 1. Bereiding van kweekmedium 10x M199 kweekmedium: Los M199-poeder op tot een concentratie van 10x met 90 ml gedeïoniseerd water en voeg 10 ml foetaal runderserum (FBS) toe e…

Representative Results

Figuur 1 is het stroomschema dat laat zien hoe het mengsel van matrixgel, vasculaire cellen, kweekmedium en reagens moet worden bereid. Het mengsel werd vervolgens subcutaan geïnjecteerd in de rug van Nu/Nu-muizen en verwarmd met behulp van een verwarmingskussen om de coagulatie te versnellen om uiteindelijk een gelplug te vormen. Figuur 2A is het stroomschema om vaten met fluorescerend gelabeld dextran aan te geven. Fluorescerend ge…

Discussion

We presenteren een betrouwbare en handige methode voor de kwantitatieve evaluatie van angiogenese in vivo zonder kleuring. In dit protocol werden vasculaire cellen gemengd met matrixgel in aanwezigheid van pro-angiogene of anti-angiogene reagentia, en vervolgens subcutaan geïnjecteerd in de rug van Nu/Nu-muizen om een gelplug te vormen (Figuur 1). Na 7 dagen vorming van gelpluggen werd dextran-FITC intraveneus geïnjecteerd en gedurende 30 minuten gecirculeerd. De gelplug werd verz…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk werd gefinancierd door de Natural Science Foundation van de provincie Zhejiang (LY22H020005) en de National Natural Science Foundation of China (81873466).

Materials

Adhesion Microscope Slides CITOTEST 188105
Anesthesia System RWD R640-S1
Cell Counter Invitrogen AMQAX1000
Cell Culture Dish Corning 430167
Cryoslicer Thermo Fisher CryoStar NX50
Dextrans-FITC-150kDa WEIHUA BIO WH007N07
Dextrans-FITC-4kDa WEIHUA BIO WH007N0705
Embedding Cassettes CITOTEST 80203-0007
Endothelial Cell Medium ScienCell 35809
Endothelial Growth Supplements ScienCell 1025
Fetal Bovine Serum Gibco 10100147C
Fibroblast Growth Factor 1 AtaGenix 9043p-082318-A01 FGF1
Fluorescence Microscope Nikon ECLIPSE Ni
Heating Pad Boruida 30-50-30
Insulin Syringe BD 300841
Isoflurane RWD R510-22-10
Laboratory Balance Sartorius BSA124S-CW
Matrigel Corning 356234 Matrix gel
Medium 199 powder Gibco 31100-035
Microtubes Axygen MCT-150-C
Optimal Cutting Temperature (OCT) Compound SUKURA 4583 Tissue embedding gel
Palmitate Acid KunChuang KC001
Penicillin-Streptomycin Liquid Solarbio P1400
Phosphate Buffer Saline Solarbio P1022
Surgical Instruments RWD RWD
Tail Vein Injection Instrument KEW BASIS KW-XXY
Trypsin-EDTA Solution Solarbio T1320
Ultra-Low Temperature Freezer eppendorf U410
Vascular Endothelial Growth Factor CHAMOT CM058-5HP VEGF

Riferimenti

  1. Bikfalvi, A. History and conceptual developments in vascular biology and angiogenesis research: a personal view. Angiogenesis. 20 (4), 463-478 (2017).
  2. Carmeliet, P., Jain, R. Principles and mechanisms of vessel normalization for cancer and other angiogenic diseases. Nature reviews Drug discovery. 10 (6), 417-427 (2011).
  3. De Palma, M., Biziato, D., Petrova, T. Microenvironmental regulation of tumour angiogenesis. Nature reviews Cancer. 17 (8), 457-474 (2017).
  4. Griffioen, A., Molema, G. Angiogenesis: potentials for pharmacologic intervention in the treatment of cancer, cardiovascular diseases, and chronic inflammation. Pharmacological reviews. 52 (2), 237-268 (2000).
  5. Viallard, C., Larrivée, B. Tumor angiogenesis and vascular normalization: alternative therapeutic targets. Angiogenesis. 20 (4), 409-426 (2017).
  6. Craig, M., Sumanas, S. ETS transcription factors in embryonic vascular development. Angiogenesis. 19 (3), 275-285 (2016).
  7. Losordo, D., Dimmeler, S. Therapeutic angiogenesis and vasculogenesis for ischemic disease. Part I: angiogenic cytokines. Circulation. 109 (21), 2487-2491 (2004).
  8. Folkman, J. Anti-angiogenesis-new concept for therapy of solid tumors. Annals of Surgery. 175 (3), 409-416 (1972).
  9. Folkman, J. Angiogenesis in cancer, vascular, rheumatoid and other disease. Nature Medicine. 1 (1), 27-31 (1995).
  10. Folkman, J. Opinion – Angiogenesis: an organizing principle for drug discovery. Nature Reviews Drug Discovery. 6 (4), 273-286 (2007).
  11. Nowak-Sliwinska, P., et al. Consensus guidelines for the use and interpretation of angiogenesis assays. Angiogenesis. 21 (3), 425-532 (2018).
  12. Fan, X., et al. Interleukin-1β augments the angiogenesis of endothelial progenitor cells in an NF-κB/CXCR7-dependent manner. Journal of Cellular and Molecular Medicine. 24 (10), 5605-5614 (2020).
  13. Dai, X., et al. Nrf2 transcriptional upregulation of IDH2 to tune mitochondrial dynamics and rescue angiogenic function of diabetic EPCs. Redox Biology. 56, 102449 (2022).
  14. Yan, X., et al. Liraglutide Improves the Angiogenic Capability of EPC and Promotes Ischemic Angiogenesis in Mice under Diabetic Conditions through an Nrf2-Dependent Mechanism. Cells. 11 (23), 3821 (2022).
  15. Koh, W., Stratman, A., Sacharidou, A., Davis, G. In vitro three dimensional collagen matrix models of endothelial lumen formation during vasculogenesis and angiogenesis. Methods in enzymology. 443, 83-101 (2008).
  16. Nowak-Sliwinska, P., et al. Consensus guidelines for the use and interpretation of angiogenesis assays. Angiogenesis. 21 (3), 425-532 (2018).
  17. Malinda, K. In vivo matrigel migration and angiogenesis assay. Methods in molecular biology (Clifton, NJ). , 287-294 (2009).
  18. Rezzola, S., et al. In vitro and ex vivo retina angiogenesis assays. Angiogenesis. 17 (3), 429-442 (2014).
  19. Dai, Q., et al. FGF21 promotes ischaemic angiogenesis and endothelial progenitor cells function under diabetic conditions in an AMPK/NAD+-dependent manner. Journal of Cellular and Molecular Medicine. 25 (6), 3091-3102 (2021).
  20. Gavard, J., Gutkind, J. S. VEGF controls endothelial-cell permeability by promoting the beta-arrestin-dependent endocytosis of VE-cadherin. Nature cell biology. 8 (11), 1223-1234 (2006).
  21. Birdsey, G. M., et al. The endothelial transcription factor ERG promotes vascular stability and growth through Wnt/β-catenin signaling. Developmental Cell. 32 (1), 82-96 (2015).
  22. Yan, X., et al. A Novel CXCR4 antagonist enhances angiogenesis via modifying the ischaemic tissue environment. Journal of Cellular and Molecular Medicine. 21 (10), 2298-2307 (2017).
check_url/it/65567?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Lu, Z., Yi, M., Chen, T., He, Y., Fan, X., Chen, H., Huang, Y., Niu, J., Yan, X. Modified In Vivo Matrix Gel Plug Assay for Angiogenesis Studies. J. Vis. Exp. (196), e65567, doi:10.3791/65567 (2023).

View Video