Summary

Ensaio de plugue de gel de matriz in vivo modificado para estudos de angiogênese

Published: June 30, 2023
doi:

Summary

O método aqui apresentado pode avaliar o efeito dos reagentes na angiogênese ou permeabilidade vascular in vivo sem coloração. O método utiliza injeção de dextran-FITC através da veia caudal para visualizar neovasos ou extravasamento vascular.

Abstract

Vários modelos têm sido desenvolvidos para investigar a angiogênese in vivo. No entanto, a maioria desses modelos é complexa e cara, requer equipamentos especializados ou é de difícil execução para posterior análise quantitativa. Apresentamos aqui um ensaio de plugue de gel de matriz modificado para avaliar a angiogênese in vivo. Nesse protocolo, as células vasculares foram misturadas com gel de matriz na presença ou ausência de reagentes pró-angiogênicos ou antiangiogênicos e, em seguida, injetadas por via subcutânea no dorso dos camundongos receptores. Após 7 dias, tampão fosfato salino contendo dextran-FITC é injetado através da veia caudal e circulado nos vasos por 30 min. Os plugues de gel de matriz são coletados e embebidos com gel de incorporação de tecido, em seguida, cortes de 12 μm são cortados para detecção de fluorescência sem coloração. Neste ensaio, dextran-FITC com alto peso molecular (~150.000 Da) pode ser usado para indicar vasos funcionais para detectar seu comprimento, enquanto dextran-FITC com baixo peso molecular (~4.400 Da) pode ser usado para indicar a permeabilidade de neo-vasos. Em conclusão, este protocolo pode fornecer um método confiável e conveniente para o estudo quantitativo da angiogênese in vivo.

Introduction

A angiogênese, processo de formação de neovasos a partir de vasos pré-existentes, desempenha papel crítico em muitos processos fisiológicos e patológicos, como desenvolvimento embrionário, cicatrização de feridas, aterosclerose, desenvolvimento tumoral, etc.1,2,3,4,5. Esse processo dinâmico envolve várias etapas, incluindo a degradação da matriz, proliferação de células vasculares, migração e auto-organização para formar estruturas tubulares e a estabilização dos neovasos6. A promoção da angiogênese tem se mostrado fundamental no tratamento do infarto do miocárdio, acidente vascular cerebral e outros tipos de doenças isquêmicas7, enquanto a inibição da angiogênese tem sido considerada uma estratégia promissora no tratamento decânceres8 e doenças reumatoides9. A angiogênese tem sido considerada um princípio organizador para a descoberta defármacos 10. Assim, a construção de um método confiável e conveniente para avaliar a extensão da angiogênese é fundamental para a pesquisa mecânica ou descoberta de drogas em doenças dependentes de angiogênese.

Vários modelos in vitro e in vivo têm sido desenvolvidos para avaliar a angiogênese11. Dentre estes, modelos bidimensionais (2-D), como o ensaio de formação de tubos de gel de matriz12, não podem formar estruturas tubulares funcionais. Os modelos animais, como o modelo de isquemia de membropélvico13,14, podem reproduzir o processo de angiogênese, mas são complexos e requerem um sistema de imagem de fluxo sanguíneo pontilhado a laser. Modelos 3D de morfogênese vascular, como o matrix gel plug assay, fornecem uma plataforma simples que pode mimetizar o processo de angiogênese divivo15, mas a detecção de angiogênese requer imunohistoquímica ou coloração de imunofluorescência16,17,18, que são variáveis e pouco visualizadas.

Aqui, descrevemos um protocolo para um ensaio de plugue de gel de matriz modificado onde células vasculares foram misturadas com gel de matriz e injetadas subcutaneamente no dorso de camundongos para formar um plug. No plug, as células vasculares precisam degradar a matriz, proliferar, migrar e se auto-organizar para finalmente formar vasos funcionais com fluxo sanguíneo no ambiente interno. Depois disso, o dextran fluorescente é injetado através da veia da cauda, para fluir através do plugue, e o rótulo é visualizado para indicar neo-vasos. O conteúdo da angiogênese pode ser avaliado quantitativamente pelo comprimento dos vasos. Esse método pode formar vasos funcionais que não podem ser produzidos em modelos de angiogênese2D12 e não necessita de processos complexos de coloração como no ensaio de plugue de gel de matrizcomum11. Também não requer instrumentos específicos de alto custo, como o laser speckle blood flow imaging system no modelo de isquemia de membro pélvico13,14,19. Este método é versátil, de baixo custo, quantificável e de fácil execução, podendo ser utilizado para determinar a capacidade pró ou antiangiogênica de fármacos ou ser utilizado em pesquisas mecânicas envolvidas na angiogênese.

Protocol

Todos os procedimentos envolvendo animais foram aprovados pelo Comitê Institucional de Cuidados e Uso de Animais (IACUC) da Wenzhou Medical University (XMSQ2021-0057, 19 de julho de 2021). Todos os reagentes e consumíveis estão listados na Tabela de Materiais. 1. Preparo do meio de cultura Meio de cultura 10x M199: Dissolver o pó M199 na concentração de 10x com 90 mL de água deionizada e adicionar 10 mL de soro fetal bovino (SFB), p…

Representative Results

A Figura 1 é o fluxograma descrevendo como preparar a mistura de gel de matriz, células vasculares, meio de cultura e reagente. A mistura foi então injetada por via subcutânea no dorso de camundongos Nu/Nu e aquecida usando uma almofada de aquecimento para acelerar sua coagulação e, finalmente, formar plugue de gel. A Figura 2A é o fluxograma para indicar vasos com dextrano marcado fluorescente. O dextran fluorescente marcado f…

Discussion

Apresentamos um método confiável e conveniente para a avaliação quantitativa da angiogênese in vivo sem coloração. Nesse protocolo, as células vasculares foram misturadas com gel de matriz na presença de reagentes pró-angiogênicos ou antiangiogênicos e, em seguida, injetadas por via subcutânea no dorso de camundongos Nu/Nu para formar plugue de gel (Figura 1). Após 7 dias da formação do plugue de gel, o dextran-FITC foi injetado por via intravenosa e circulado por 30…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabalho foi financiado pela Fundação de Ciências Naturais da Província de Zhejiang (LY22H020005) e pela Fundação Nacional de Ciências Naturais da China (81873466).

Materials

Adhesion Microscope Slides CITOTEST 188105
Anesthesia System RWD R640-S1
Cell Counter Invitrogen AMQAX1000
Cell Culture Dish Corning 430167
Cryoslicer Thermo Fisher CryoStar NX50
Dextrans-FITC-150kDa WEIHUA BIO WH007N07
Dextrans-FITC-4kDa WEIHUA BIO WH007N0705
Embedding Cassettes CITOTEST 80203-0007
Endothelial Cell Medium ScienCell 35809
Endothelial Growth Supplements ScienCell 1025
Fetal Bovine Serum Gibco 10100147C
Fibroblast Growth Factor 1 AtaGenix 9043p-082318-A01 FGF1
Fluorescence Microscope Nikon ECLIPSE Ni
Heating Pad Boruida 30-50-30
Insulin Syringe BD 300841
Isoflurane RWD R510-22-10
Laboratory Balance Sartorius BSA124S-CW
Matrigel Corning 356234 Matrix gel
Medium 199 powder Gibco 31100-035
Microtubes Axygen MCT-150-C
Optimal Cutting Temperature (OCT) Compound SUKURA 4583 Tissue embedding gel
Palmitate Acid KunChuang KC001
Penicillin-Streptomycin Liquid Solarbio P1400
Phosphate Buffer Saline Solarbio P1022
Surgical Instruments RWD RWD
Tail Vein Injection Instrument KEW BASIS KW-XXY
Trypsin-EDTA Solution Solarbio T1320
Ultra-Low Temperature Freezer eppendorf U410
Vascular Endothelial Growth Factor CHAMOT CM058-5HP VEGF

Riferimenti

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Citazione di questo articolo
Lu, Z., Yi, M., Chen, T., He, Y., Fan, X., Chen, H., Huang, Y., Niu, J., Yan, X. Modified In Vivo Matrix Gel Plug Assay for Angiogenesis Studies. J. Vis. Exp. (196), e65567, doi:10.3791/65567 (2023).

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