Summary

Использование индуцируемых мышей с нокаутом Stat3 , специфичных для остеобластической линии, для изучения ремоделирования альвеолярной кости во время ортодонтического перемещения зубов

Published: July 21, 2023
doi:

Summary

В этом исследовании представлен протокол использования мышей с нокаутом Stat3 , специфичных для индуцируемой линии остеобластов, для изучения ремоделирования кости под действием ортодонтической силы и описаны методы анализа ремоделирования альвеолярной кости во время ортодонтического перемещения зубов, что проливает свет на механическую биологию скелета.

Abstract

Альвеолярная кость с высокой скоростью обновления является наиболее активно ремоделирующей костью в организме. Ортодонтическое перемещение зубов (OTM) является распространенным искусственным процессом ремоделирования альвеолярной кости в ответ на механическую силу, но основной механизм остается неуловимым. Предыдущие исследования не смогли выявить точный механизм ремоделирования костной ткани в любое время и пространстве из-за ограничений, связанных с животными моделями. Сигнальный преобразователь и активатор транскрипции 3 (STAT3) важен в метаболизме костной ткани, но его роль в остеобластах во время ОТМ неясна. Чтобы предоставить in vivo доказательства того, что STAT3 участвует в OTM в определенные моменты времени и в определенных клетках во время OTM, мы создали тамоксифен-индуцируемую модель остеобластов Stat3 на мышах, применили ортодонтическую силу и проанализировали фенотип альвеолярной кости.

Для доступа к расстоянию ОТМ использовали микрокомпьютерную томографию (Micro-CT) и стереомикроскопию. Гистологический анализ выбрал область, расположенную в пределах трех корней первого моляра (M1) в поперечном сечении верхнечелюстной кости, в качестве области интереса (ROI) для оценки метаболической активности остеобластов и остеокластов, указывающей на влияние ортодонтической силы на альвеолярную кость. Вкратце, мы предлагаем протокол использования индуцируемых остеобласт-специфичных нокаут-мышей Stat3 для изучения ремоделирования костной ткани под действием ортодонтической силы и описываем методы анализа ремоделирования альвеолярной кости во время ОТМ, тем самым проливая новый свет на скелетную механическую биологию.

Introduction

Общеизвестно, что кость подвергается постоянной реконструкции на протяжении всей жизни, реагируя на механические силы в соответствии с законом Вольфа 1,2. Соответствующая механическая стимуляция, такая как гравитация и ежедневные физические упражнения, поддерживает костную массу и прочность и предотвращает потерю костной массы, стимулируя как остеобласты, так и остеокласты. Остеокласты, ответственные за резорбцию костной ткани 3,4,5,6,7, и остеобласты, ответственные за формирование костной ткани 8,9,10, поддерживают гомеостаз костной ткани и совместно функционируют в биологическом процессе ремоделирования костной ткани. Напротив, при отсутствии нагрузочных стимулов, как у астронавтов в условиях длительной микрогравитации, кости страдают от потери минеральной плотности костной ткани на 10%, что увеличивает риск развития остеопороза11,12. Кроме того, неинвазивные и удобные методы лечения, включая ортодонтию и дистракционный остеогенез, появились в качестве методов лечения заболеваний костей13,14. Все это показало, что механическая сила играет решающую роль в поддержании качества и количества костной ткани. В недавних исследованиях, как правило, анализировалось ремоделирование костей в ответ на механическую нагрузку с использованием трудоемких моделей, таких как испытания ходового колеса и хвостовой подвески, которые обычно занимали 4 недели или более для имитации силовой нагрузки или разгрузки15,16. Поэтому существует спрос на удобную и эффективную животную модель для изучения ремоделирования костей под действием силовой нагрузки.

Альвеолярная кость является наиболее активной с точки зрения ремоделирования кости, с высокой частотой обновления17. Ортодонтическое перемещение зубов (OTM), распространенный метод лечения неправильного прикуса, представляет собой искусственный процесс ремоделирования альвеолярной кости в ответ на механическую силу. Тем не менее, OTM, который индуцирует быстрое ремоделирование кости18, также является экономящим время способом изучения влияния механической силы на ремоделирование кости по сравнению с другими моделями с длительным экспериментальным периодом. Таким образом, ОТМ является идеальной моделью для изучения ремоделирования костной ткани при механических раздражителях. Примечательно, что механизм ремоделирования альвеолярной кости часто чувствителен ко времени, и необходимо наблюдать изменения в ремоделировании альвеолярной кости в определенные моменты времени после моделирования. Обладая двойными преимуществами временного и пространственного контроля рекомбинации ДНК и тканевой специфичности, индуцируемая условная модель нокаута гена мыши является подходящим выбором для исследований OTM.

Условно, OTM-опосредованное ремоделирование альвеолярной кости было разделено на зоны натяжения, связанные с формированием костной ткани, и зоны давления, включающие резорбцию костной ткани 19,20,21, которая является более детальной, но трудно регулируемой. Кроме того, Yuri et al. сообщили, что время формирования костной ткани при ОТМ различалось на стороне растяжения и компрессии22. Кроме того, предыдущее исследование продемонстрировало, что первый моляр может инициировать широкое ремоделирование верхнечелюстной альвеолярной кости под действием ортодонтической силы, которая не ограничена зонами растяжения и давления23. Таким образом, в качестве области интереса (ROI) мы выбрали область, расположенную в пределах трех корней М1 в поперечном сечении верхнечелюстной кости, и описали методы оценки активности остеобластов и остеокластов в той же области для оценки ремоделирования альвеолярной кости при ОТМ.

Доказано, что ядерный транскрипционный фактор, преобразователь сигналов и активатор транскрипции 3 (STAT3) имеет решающее значение для костного гомеостаза24,25. Предыдущие исследования сообщали о низкой минеральной плотности костной ткани и рецидивирующих патологических переломах у мышей с мутацией Stat3 26,27. Наше предыдущее исследование показало, что делеция Stat3 в остеобластах Osx+ вызывает черепно-лицевые пороки развития и остеопороз, а также спонтанный перелом костей28. Недавно мы предоставили доказательства in vivo с индуцируемой остеобласт-специфичной моделью делеции Stat3 у мышей (Col1α2CreERT2; Stat3 fl/fl, далее именуемый Stat3Col1α2ERT2), что STAT3 имеет решающее значение в опосредовании эффектов ортодонтической силы, приводящей к ремоделированию альвеолярной кости29. В этом исследовании мы предлагаем методы и протоколы использования индуцируемых остеобласт-специфичных нокаут-мышей Stat3 для изучения ремоделирования костной ткани под действием ортодонтической силы и описываем методы анализа ремоделирования альвеолярной кости во время ОТМ, тем самым проливая свет на скелетную механическую биологию.

Protocol

Все описанные здесь методы с участием животных были одобрены комитетом по этике Шанхайской девятой народной больницы Шанхайского медицинского факультета Университета Цзяо Тун (No 82101048). 1. Установление индуцируемых остеобласт-специфичных мышей с нокаутом Stat3</stron…

Representative Results

Используя этот протокол, мы создали индуцируемую модель мышей с нокаутом Stat3 (Stat3Col1α2ERT2), специфичную для линии остеобластов, для изучения влияния делеции STAT3 на ортодонтическое форс-управляемое ремоделирование альвеолярной кости (рис. 1A, B). Делец…

Discussion

Поскольку неправильный прикус является одним из наиболее распространенных заболеваний полости рта, ухудшающих дыхание, жевание, речь и даже внешний вид, спрос на ортодонтию растет день ото дня, а заболеваемость растет с 70% до 93%, согласно предыдущему эпидемиологическому обследованию<sup…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа была частично поддержана грантами Национального фонда естественных наук Китая (81870740, 82071083, 82271006, 82101048, 81800949); Шанхайский фонд естественных наук (21ZR1436900, 22ZR1436700); Программа Шанхайского лидера по академическим/технологическим исследованиям (20XD1422300); План клинических исследований SHDC (SHDC2020CR4084); Междисциплинарный исследовательский фонд Шанхайской девятой народной больницы, Медицинский факультет Шанхайского университета Цзяотун (JYJC201902, JYJC202116); Группа инновационных исследований местных университетов высокого уровня в Шанхае (SSMUZLCX20180501); Фонд научно-исследовательских дисциплин No KQYJXK2020 из Девятой народной больницы, Школы медицины Шанхайского университета Цзяотун и Колледжа стоматологии, Шанхайского университета Цзяотун; Первоначальный исследовательский проект Шанхайской девятой народной больницы, Медицинский факультет Шанхайского университета Цзяотун (JYYC003); Проект «Двести талантов» Школы медицины Шанхайского университета Цзяо Тун; Совместный исследовательский проект Института биоматериалов и регенеративной медицины Шанхайского университета Цзяо Тун (2022LHB02); Проект Биобанка Шанхайской девятой народной больницы Шанхайского медицинского факультета Университета Цзяо Тун (YBKB201909, YBKB202216).

Materials

1x PBS Beijing Solarbio Science & Technology Co.,Ltd.  P1020
4% paraformaldehyde Wuhan Servicebio Technology Co., Ltd. G1101
Alizarin red Sigma-Aldrich A5533
Anti-CTSK antibody Santa Cruz sc-48353
Anti-OPN antibody R&D Systems, Minneapolis, MN, USA AF808
Calcein Sigma-Aldrich C0875
Closed-coil springs Innovative Material and Devices, Shanghai, China CS1006B
Col1α2CreERT2 mice A gift from Bin Zhou, Shanghai Institutes for Biological Sciences, Chinese Academy of Sciences.
Dexmedetomidine hydrochloride Orionintie Corporation, Orion Pharma Espoo site
EDTA Beyotime Biotechanology ST069
Embedding tanks Citotest Labware Manufacturing Co., Ltd 80106-1100-16
Ethanol Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd. 100092183
ImageJ software NIH, Bethesda, MD, USA
Mounting medium with DAPI Beyotime Biotechanology P0131
Mouse dissection platform Shanghai Huake Experimental Devices and Materials Co., Ltd. HK105
Paraffin Sangon biotech Co., Ltd. A601889
Primers for genotyping Stat3 F-TTGACCTGTGCTCCTACAAAAA; Stat3 R-CCCTAGATTAGGCCAGCACA; Cre F-CGATGCAACGAGTGATGAGG; Cre R-CGCATA ACCAGTGAAACAGC
Protease K Sigma-Aldrich 539480
Self-curing restorative resin 3M ESPE, St. Paul, MN, USA 712-035
Stat3fl/fl mice GemPharmatech Co., Ltd D000527
Tamoxifen Sigma-Aldrich T5648
TRAP staining kit Sigma-Aldrich 387A
Tris-HCl Beyotime Biotechanology ST780
Universal tissue fixative Wuhan Servicebio Technology Co., Ltd. G1105
Xylene Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd. 10023418
Zoletil VIRBAC 

Riferimenti

  1. Frost, H. M. The Utah paradigm of skeletal physiology: an overview of its insights for bone, cartilage and collagenous tissue organs. Journal of Bone and Mineral Metabolism. 18 (6), 305-316 (2000).
  2. Frost, H. M. Wolff’s Law and bone’s structural adaptations to mechanical usage: an overview for clinicians. The Angle Orthodontist. 64 (3), 175-188 (1994).
  3. Gothlin, G., Ericsson, J. L. The osteoclast: review of ultrastructure, origin, and structure-function relationship. Clinical Orthopaedics and Related Research. (120), 201-231 (1976).
  4. Feng, X., Teitelbaum, S. L. Osteoclasts: New Insights. Bone Research. 1 (1), 11-26 (2013).
  5. Boyle, W. J., Simonet, W. S., Lacey, D. L. Osteoclast differentiation and activation. Nature. 423 (6937), 337-342 (2003).
  6. Zhu, L. X., et al. Osteoclast-mediated bone resorption is controlled by a compensatory network of secreted and membrane-tethered metalloproteinases. Science Translational Medicine. 12 (529), eaaw6143 (2020).
  7. Dai, Q., et al. A RANKL-based osteoclast culture assay of mouse bone marrow to investigate the role of mTORC1 in osteoclast formation. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (133), 56468 (2018).
  8. Karsenty, G., Kronenberg, H. M., Settembre, C. Genetic control of bone formation. Annual Review of Cell and Developmental Biology. 25, 629-648 (2009).
  9. Long, F. Building strong bones: molecular regulation of the osteoblast lineage. Nature Reviews. Molecular Cell Biology. 13 (1), 27-38 (2011).
  10. Harada, S., Rodan, G. A. Control of osteoblast function and regulation of bone mass. Nature. 423 (6937), 349-355 (2003).
  11. Lang, T., et al. Cortical and trabecular bone mineral loss from the spine and hip in long-duration spaceflight. Journal of Bone and Mineral Research. 19 (6), 1006-1012 (2004).
  12. Sibonga, J. D. Spaceflight-induced bone loss: is there an osteoporosis risk. Current Osteoporosis Reports. 11 (2), 92-98 (2013).
  13. Yang, Y., et al. Administration of allogeneic mesenchymal stem cells in lengthening phase accelerates early bone consolidation in rat distraction osteogenesis model. Stem Cell Research and Therapy. 11 (1), 129 (2020).
  14. Huang, C., Holfeld, J., Schaden, W., Orgill, D., Ogawa, R. Mechanotherapy: revisiting physical therapy and recruiting mechanobiology for a new era in medicine. Trends in Molecular Medicine. 19 (9), 555-564 (2013).
  15. Shu, H. S., et al. Tracing the skeletal progenitor transition during postnatal bone formation. Cell Stem Cell. 28 (12), 2122-2136 (2021).
  16. Wang, X., et al. miR-214 targets ATF4 to inhibit bone formation. Nature Medicine. 19 (1), 93-100 (2013).
  17. Huja, S. S., Fernandez, S. A., Hill, K. J., Li, Y. Remodeling dynamics in the alveolar process in skeletally mature dogs. The Anatomical Record. Part A, Discoveries in Molecular, Cellular, and Evolutionary Biology. 288 (12), 1243-1249 (2006).
  18. Jin, A., et al. FOXO3 mediates tooth movement by regulating force-induced osteogenesis. Journal of Dental Research. 101 (2), 196-205 (2022).
  19. Bumann, A., Carvalho, R. S., Schwarzer, C. L., Yen, E. H. Collagen synthesis from human PDL cells following orthodontic tooth movement. European Journal of Orthodontics. 19 (1), 29-37 (1997).
  20. Kitaura, H., et al. Effect of cytokines on osteoclast formation and bone resorption during mechanical force loading of the periodontal membrane. The Scientific World Journal. 2014, 617032 (2014).
  21. Lu, W., et al. Sclerostin injection enhances orthodontic tooth movement in rats. Archives of Oral Biology. 99, 43-50 (2019).
  22. Seki, Y., et al. Differentiation ability of Gli1(+) cells during orthodontic tooth movement. Bone. 166, 116609 (2023).
  23. Gong, X. Y., et al. Local orthodontic force initiates widespread remodelling of the maxillary alveolar bone. Australasian Orthodontic Journal. 36 (2), 175-183 (2020).
  24. Liu, Y., et al. STAT3 and its targeting inhibitors in osteosarcoma. Cell Proliferation. 54 (2), e12974 (2021).
  25. Guadagnin, E., Mazala, D., Chen, Y. W. STAT3 in skeletal muscle function and disorders. International Journal of Molecular Sciences. 19 (8), 2265 (2018).
  26. Saikia, B., et al. Clinical profile of hyper-IgE syndrome in India. Frontiers in Immunology. 12, 626593 (2021).
  27. van de Veen, W., et al. Impaired memory B-cell development and antibody maturation with a skewing toward IgE in patients with STAT3 hyper-IgE syndrome. Allergy. 74 (12), 2394-2405 (2019).
  28. Zhou, S. R., et al. STAT3 is critical for skeletal development and bone homeostasis by regulating osteogenesis. Nature Communications. 12 (1), 6891 (2021).
  29. Gong, X. Y., et al. Osteoblastic STAT3 is crucial for orthodontic force driving alveolar bone remodeling and tooth movement. Journal of Bone and Mineral Research. 38 (1), 214-227 (2023).
  30. Yang, Y., et al. Skeletal phenotype analysis of a conditional Stat3 deletion mouse model. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (161), 61390 (2020).
  31. Egic, B. Prevalence of orthodontic malocclusion in schoolchildren in Slovenia. A prospective aepidemiological study. European Journal of Paediatric Dentistry. 23 (1), 39-43 (2022).
  32. Gois, E. G., et al. Incidence of malocclusion between primary and mixed dentitions among Brazilian children A 5-year longitudinal study. The Angle Orthodontist. 82 (3), 495-500 (2012).
  33. Yang, F., et al. Effects Of triptolide on tooth movement and root resorption in rats. Drug Design, Development and Therapy. 13, 3963-3975 (2019).
  34. Wang, C., Sun, H. Progress in gene knockout mice. Sheng Wu Gong Cheng Xue Bao. 35 (5), 784-794 (2019).
  35. Cao, H., et al. Force-induced Adrb2 in periodontal ligament cells promotes tooth movement. Journal of Dental Research. 93 (11), 1163-1169 (2014).
check_url/it/65613?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Liu, Y., Sun, S., Jiang, Z., Gong, X., Yang, Y., Zhu, Y., Xu, H., Jin, A., Huang, X., Gao, X., Lu, T., Liu, J., Wang, X., Dai, Q., Jiang, L. Using Inducible Osteoblastic Lineage-Specific Stat3 Knockout Mice to Study Alveolar Bone Remodeling During Orthodontic Tooth Movement. J. Vis. Exp. (197), e65613, doi:10.3791/65613 (2023).

View Video