Summary

Um Método Eficiente e Reprodutível para Produção de Compósitos por Transformação de Raízes Pelosas à Base de Agrobacterium rhizogenes

Published: June 30, 2023
doi:

Summary

Aqui, apresentamos o protocolo detalhado de um método de transformação em uma etapa mediado por Agrobacterium tumefaciens para produzir plantas compostas.

Abstract

A produção de plantas compostas com raízes transgênicas e caules e gemas não transgênicas usando a transformação de raízes pilosas mediada por Agrobacterium rhizogenes é uma ferramenta poderosa para estudar a biologia relacionada às raízes. A transformação de raízes pilosas é estabelecida em uma ampla gama de dicotiledôneas e em várias espécies de monocotiledôneas e é quase independente do genótipo. O método tradicional de injeção de hipocótilo com A. rhizogenes para obtenção de plantas compostas é ineficiente, demorado, trabalhoso e frequentemente causa a morte de plantas tenras e minúsculas de hipocótilo. Uma transformação radicular pilosa altamente eficiente, de uma etapa, mediada por A. rhizogenes , foi estabelecida previamente, o que elimina a necessidade de transplante após a produção de raízes pilosas. Neste estudo, um hipocótilo parcial e uma raiz primária foram removidos, o local da incisão do hipocótilo foi recoberto com A. rhizogenes e, em seguida, os hipocótilos foram plantados em vermiculita estéril. Após 12 dias de cultivo, a incisão do hipocótilo expandiu-se e novas raízes pilosas foram induzidas. Este artigo fornece o protocolo detalhado de um método de transformação em uma etapa mediado por A. rhizogenes, com sua eficácia demonstrada pela produção de plantas compostas de soja silvestre, Solanum americanum e abóbora.

Introduction

Agrobacterium rhizogenes é uma bactéria gram-negativa do solo da família Rhizobiaceae. A. rhizogenes pode infectar quase todas as dicotiledôneas, algumas monocotiledôneas e gimnospermas individuais através de feridas, produzindo raízes pilosas em plantas infectadas. A bactéria carrega o plasmídeo Ri (indutor de raízes), e o T-DNA do plasmídeo Ri carrega o gene de síntese de opina e os genes rol (genes do locus radicular). Após o DNA-T do plasmídeo Ri entrar em uma célula vegetal e se integrar a um cromossomo hospedeiro, a expressão dos genes rol induz a produção de raízes pilosas1. Um vetor de expressão binária de planta que carrega um gene alvo é transformado em A. rhizogenes, e o A. rhizogenes transformado é usado para infectar uma planta. Raízes transgênicas podem ser induzidas em plantas infectadas, produzindo plantas compostas contendo raízes transgênicas e caules e gemas não transgênicas. Geralmente, uma planta composta pode ser obtida dentro de 14-20 dias. A transformação de raízes pilosas mediada por A. rhizogenes geralmente não é limitada pelo genótipo em plantas dicotiledôneas2. As raízes pilosas produzidas por plantas infectadas por A. rhizogenes são caracterizadas por uma rápida taxa de crescimento, herança estável e fácil operação. A transformação de raízes pilosas mediada por A. rhizogenes é atualmente amplamente utilizada para estudar a biologia relacionada às raízes. Além disso, a transformação de raízes pilosas também pode ser usada para validar e otimizar a eficiência de edição de alvos do sistema CRISPR/Cas9 3,4,5 e a localização subcelular de proteínas. Portanto, a transformação de raízes pilosas é uma importante ferramenta em pesquisas sobre função gênica de plantas, engenharia metabólica e interações entre raízes e microrganismos rizosféricos 6,7,8.

Plantas compostas contendo raízes transgênicas obtidas através da transformação de raízes pilosas têm sido amplamente produzidas em plantas dicotiledôneas, especialmente em leguminosas. O método tradicional de injeção do hipocótilo com A. rhizogenes tem sido utilizado para produzir o composto Lotus corniculatus9, soja10, tomate 11, batata-doce12 e muitas outras plantas 5,8. O método de injeção de hipocótilo é ineficiente e é provável que cause a morte de plantas jovens ou minúsculas de hipocótilo. Para tanto, o método foi aprimorado com o corte das raízes embrionárias, o revestimento da incisão das plântulas com A. rhizogenes e, em seguida, a colocação do hipocótilo em meio de cultura estéril para o cultivo do enraizamento13. No entanto, essas etapas são executadas em um ambiente estéril e as etapas de operação são relativamente complicadas. Em particular, as plantas compostas resultantes precisam ser transplantadas, o que aumenta a quantidade de trabalho. Em trabalhos anteriores, a transformação da raiz pilosa mediada por A. rhizogenes (ARM) em uma etapa foi estabelecida em pepino, soja, Lotus japonicus, Medicago truncatula, e tomate 2,14,15,16,17. A raiz primária e o hipocótilo parcial foram removidos, o local da incisão do hipocótilo remanescente foi revestido com A. rhizogenes transformado e, em seguida, a plântula foi plantada em vermiculita estéril úmida. Após 12 dias de cultivo, raízes pilosas foram produzidas no local da incisão. O método ARM de uma etapa é altamente eficiente e requer menos tempo para produzir raízes pilosas. O transplante após a formação de raízes pilosas também não é necessário. Como a contaminação microbiana pode ser evitada sem transplante, o método ARM em uma etapa pode ser particularmente útil no estudo de interações entre plantas e microrganismos, como fixação simbiótica de nitrogênio entre leguminosas e rizóbios, e simbioses entre plantas e fungos micorrízicos arbusculares. Neste trabalho, um protocolo detalhado de transformação de raízes pilosas mediado por A. rhizogenes em uma etapa é fornecido com exemplos de plantas compostas produzidas em soja selvagem, Solanum americanum e abóbora. Com o protocolo, os pesquisadores podem realizar sem problemas a transformação do ARM em uma etapa.

Protocol

1. Condições de crescimento vegetal e cultivo de A. rhizogenes Semeadura de sementesNOTA: Sementes silvestres de soja foram coletadas no condado de Yanggu, Liaocheng, China; sementes de S. americanum e abóbora variedade local Yinsu foram compradas em um mercado.Coletar sementes de soja selvagem, S. americanum, e a variedade local de abóbora, semeá-las em vermiculita a uma profundidade de 1 cm e regá-las completamente. Plante 20 sementes em caixas pl…

Representative Results

Transformação de raiz pilosa mediada por A. rhizogenes em uma etapa altamente eficienteRaízes pilosas foram produzidas no local da incisão do hipocótilo 12 dias após a inoculação com K599 modificado. As raízes pilosas transgênicas foram determinadas com base na expressão do gene repórter contido no vetor binário. Raízes transgênicas transformadas com o gene repórter DsRed2 de soja silvestre composta, S. americanum e abóbora foram observadas sob luz de excit…

Discussion

O método de raiz pilosa mediada por A. rhizogenes em uma etapa é um método mais simples e eficiente para a produção de plantas compostas do que o método de injeção de hipocótilo. O método ARM de uma etapa melhora significativamente a eficiência da transformação de raízes pilosas, encurta o tempo para produzir raízes pilosas, aumenta o número de raízes pilosas e reduz a quantidade de trabalho envolvido. O protocolo de transformação aprimorado é ideal para estudos de simbioses entre leguminosas…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabalho foi apoiado pelo Fundo de Pesquisa da Universidade de Liaocheng (318012028) e pela Fundação de Ciências Naturais da Província de Shandong (ZR2020MC034).

Materials

kanamycin Sangon Biotech (Shanghai) Co., Ltd. A506636
LB medium Sangon Biotech (Shanghai) Co., Ltd. B540113
plastic box LiaoSu 8 cm x 11 cm x 9 cm
pumpkin local variety Yinsu
streptomycin Sangon Biotech (Shanghai) Co., Ltd. A610494 
Tanon-5200Multi machine Tanon Co., Ltd., China 5200Multi chemiluminescence imaging system
tomato local variety Zhongshu4
wild soybean collected in Yanggu County, Liaocheng, China

Riferimenti

  1. Chilton, M. D., et al. Agrobacterium rhizogenes inserts T-DNA into the genome of the host plant root cells. Nature. 295, 432-434 (1982).
  2. Fan, Y., et al. A fast, simple, high efficient and one-step generation of composite cucumber plants with transgenic roots by Agrobacterium rhizogenes-mediated transformation. Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC). 141, 207-216 (2020).
  3. Du, H., et al. Efficient targeted mutagenesis in soybean by TALENs and CRISPR/Cas9. Journal of Biotechnology. 217, 90-97 (2016).
  4. Nguyen, D. V., et al. An efficient hairy root system for validation of plant transformation vector and CRISPR/Cas construct activities in cucumber (Cucumis sativus L.). Frontiers in Plant Science. 12, 770062 (2022).
  5. Liu, S., et al. AtGCS promoter-driven clustered regularly interspaced short palindromic repeats/Cas9 highly efficiently generates homozygous/biallelic mutations in the transformed roots by Agrobacterium rhizogenes-mediated transformation. Frontiers in Plant Science. 13, 952428 (2022).
  6. Irigoyen, S., et al. Plant hairy roots enable high throughput identification of antimicrobials against Candidatus Liberibacter spp. Nature Communications. 11 (1), 5802 (2020).
  7. Plasencia, A., et al. Eucalyptus hairy roots, a fast, efficient and versatile tool to explore function and expression of genes involved in wood formation. Plant Biotechnology Journal. 14 (6), 1381-1393 (2016).
  8. Gutierrez-Valdes, N., et al. Hairy root cultures-a versatile tool with multiple applications. Frontiers in Plant Science. 11, 33 (2020).
  9. Stougaard, J. Agrobacterium rhizogenes as a vector for transforming higher plants. Application in Lotus corniculatus transformation. Methods in Molecular Biology. 49, 49-61 (1995).
  10. Kereszt, A., et al. Agrobacterium rhizogenes-mediated transformation of soybean to study root biology. Nature Protocols. 2 (4), 948-952 (2007).
  11. Ho-Plágaro, T., Huertas, R., Tamayo-Navarrete, M. I., Ocampo, J. A., García-Garrido, J. M. An improved method for Agrobacterium rhizogenes-mediated transformation of tomato suitable for the study of arbuscular mycorrhizal symbiosis. Plant Methods. 14, 34 (2018).
  12. Yu, Y., et al. Overexpression of phosphatidylserine synthase IbPSS1 affords cellular Na+ homeostasis and salt tolerance by activating plasma membrane Na+/H+ antiport activity in sweet potato roots. Horticulture Research. 7, 131 (2020).
  13. Boisson-Dernier, A., et al. Agrobacterium rhizogenes-transformed roots of Medicago truncatula for the study of nitrogen-fixing and endomycorrhizal symbiotic associations. Molecular Plant-Microbe Interactions: MPMI. 14 (6), 695-700 (2001).
  14. Fan, Y., et al. One-step generation of composite soybean plants with transgenic roots by Agrobacterium rhizogenes-mediated transformation. BMC Plant Biology. 20 (1), 208 (2020).
  15. Fan, Y., et al. Anthocyanin, a novel and user-friendly reporter for convenient, non-destructive, low cost, directly visual selection of transgenic hairy roots in the study of rhizobia-legume symbiosis. Plant Methods. 16, 94 (2020).
  16. Wang, X., et al. Application of AtMYB75 as a reporter gene in the study of symbiosis between tomato and Funneliformis mosseae. Mycorrhiza. 33 (3), 181-185 (2023).
  17. Wang, X., et al. Development of a set of novel binary expression vectors for plant gene function analysis and genetic transformation. Frontiers in Plant Science. 13, 1104905 (2023).
  18. Li, Q. Q., et al. Phytochrome B inhibits darkness-induced hypocotyl adventitious root formation by stabilizing IAA14 and suppressing ARF7 and ARF19. The Plant Journal: For Cell and Molecular Biology. 105 (6), 1689-1702 (2021).
check_url/it/65688?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Teng, C., Lyu, K., Li, Q., Li, N., Lyu, S., Fan, Y. An Efficient and Reproducible Method for Producing Composite Plants by Agrobacterium rhizogenes-Based Hairy Root Transformation. J. Vis. Exp. (196), e65688, doi:10.3791/65688 (2023).

View Video