Summary

मेसेनकाइमल स्ट्रोमल कोशिकाओं में मानव प्रेरित प्लुरिपोटेंट स्टेम कोशिकाओं के भेदभाव के लिए दो प्रतिनिधि तरीकों की तुलना

Published: October 20, 2023
doi:

Summary

यह प्रोटोकॉल mesenchymal stromal कोशिकाओं (MSCs) में hiPSCs अंतर के लिए दो प्रतिनिधि तरीकों का वर्णन करता है और तुलना करता है. मोनोलेयर विधि को कम लागत, सरल संचालन और आसान ओस्टोजेनिक भेदभाव की विशेषता है। भ्रूण निकायों (ईबी) विधि को कम समय की खपत की विशेषता है।

Abstract

मेसेनकाइमल स्ट्रोमल कोशिकाएं (एमएससी) वयस्क प्लुरिपोटेंट स्टेम सेल हैं जिनका पुनर्योजी चिकित्सा में व्यापक रूप से उपयोग किया गया है। चूंकि दैहिक ऊतक-व्युत्पन्न एमएससी सीमित दान, गुणवत्ता भिन्नताओं और जैव सुरक्षा द्वारा प्रतिबंधित हैं, पिछले 10 वर्षों में मानव प्रेरित प्लुरिपोटेंट स्टेम सेल (एचआईपीएससी) से एमएससी उत्पन्न करने के प्रयासों में काफी वृद्धि देखी गई है। एमएससी में एचआईपीएससी के भेदभाव में पिछले और हाल के प्रयास दो संस्कृति पद्धतियों के आसपास केंद्रित हैं: (1) भ्रूण निकायों (ईबी) का गठन और (2) मोनोलेयर संस्कृति का उपयोग। यह प्रोटोकॉल hiPSCs से MSC प्राप्त करने में इन दो प्रतिनिधि तरीकों का वर्णन करता है। प्रत्येक विधि अपने फायदे और नुकसान प्रस्तुत करती है, जिसमें समय, लागत, सेल प्रसार क्षमता, एमएससी मार्करों की अभिव्यक्ति और इन विट्रो में भेदभाव की उनकी क्षमता शामिल है। यह प्रोटोकॉल दर्शाता है कि दोनों विधियां एचआईपीएससी से परिपक्व और कार्यात्मक एमएससी प्राप्त कर सकती हैं। मोनोलेयर विधि को कम लागत, सरल संचालन और आसान ओस्टोजेनिक भेदभाव की विशेषता है, जबकि ईबी विधि को कम समय की खपत की विशेषता है।

Introduction

मेसेनकाइमल स्ट्रोमल कोशिकाएं (एमएससी) मेसोडर्म-व्युत्पन्न वयस्क प्लुरिपोटेंट स्टेम सेल1 हैं। एमएससी लगभग सभी संयोजी ऊतकों में मौजूद हैं2. चूंकि MSCs को पहली बार 1970 के दशक में खोजा गया था और 1987 में फ्राइडेनस्टीन एट अल 3,4,5 द्वारा अस्थि मज्जा से सफलतापूर्वक अलग किया गया था, इसलिए विभिन्न प्रकार के मानव दैहिक (भ्रूण और वयस्क सहित) ऊतकों का उपयोग एमएससी जैसे हड्डी, उपास्थि, कण्डरा, मांसपेशियों, वसा ऊतक, और हेमटोपोइएटिक-सहायक स्ट्रोमा 1,2,6,7 को अलग करने के लिए किया गया है. एमएससी कई दैहिक सेल वंशावली में अंतर करने के लिए उच्च प्रोलिफेरेटिव क्षमताओं और प्लास्टिसिटी का प्रदर्शन करते हैं और घायल और सूजन वाले ऊतकों 2,8,9 में पलायन कर सकते हैं। ये गुण एमएससी को पुनर्योजी चिकित्सा10 के लिए एक संभावित उम्मीदवार बनाते हैं। हालांकि, दैहिक ऊतक-व्युत्पन्न एमएससी (एसटी-एमएससी) सीमित दान, सीमित सेल प्रोलिफेरेटिव क्षमता, गुणवत्ता भिन्नताओं, और रोगजनकों के संभावित संचरण के लिए जैव सुरक्षा चिंता, यदि कोई हो, दाताओं11,12 से प्रतिबंधित हैं।

मानव प्रेरित प्लुरिपोटेंट स्टेम सेल (hiPSCs) प्रतिलेखन कारकों (Oct4, Sox2, Klf4, और c-Myc) के साथ वयस्क कोशिकाओं reprogramming से ली गई है, जो भ्रूण स्टेम कोशिकाओं13,14 के रूप में समान कार्य है. वे आत्म-नवीनीकरण कर सकते हैं और एमएससी सहित किसी भी प्रकार की दैहिक कोशिकाओं में अंतर करने की क्षमता रखते हैं। एसटी-एमएससी की तुलना में, आईपीएससी-एमएससी में असीमित आपूर्ति, कम लागत, उच्च शुद्धता, गुणवत्ता नियंत्रण में सुविधा, पैमाने पर उत्पादन और जीन संशोधन 15,16,17 के लिए आसान का लाभ है।

IPSC-MSCs के इन फायदों के कारण, IPSC से MSC ड्राइविंग तरीकों की एक किस्म की सूचना दी गई है. इन भेदभाव विधियों को दो संस्कृति पद्धतियों के आसपास केंद्रित किया गया है: (1) भ्रूण निकायों (ईबी) का गठन और (2) मोनोलेयर संस्कृतियों का उपयोग 11,18,19,20. इसमें, दो पद्धतियों में से प्रत्येक के लिए एक प्रतिनिधि दृष्टिकोण की विशेषता थी। इसके अलावा, समय, लागत, प्रोलिफेरेटिव क्षमता, एमएससी बायोमार्कर की अभिव्यक्ति और इन विट्रो में भेदभाव क्षमता के आधार पर दो प्रतिनिधि दृष्टिकोणों के बीच तुलना भी एक्सेस की गई थी।

Protocol

1. hiPSCs रखरखाव hiPSC का विगलनतरल नाइट्रोजन से कोशिकाओं को बाहर निकालें और जल्दी से 37 डिग्री सेल्सियस पानी के स्नान में कोशिकाओं को पिघलाएं। विगलन कोशिकाओं को एक 15 एमएल ट्यूब के साथ तैयार करने के ?…

Representative Results

प्रोटोकॉल (चित्रा 1 ए) के बाद, एचआईपीएससी को ईबी गठन और मोनोलेयर संस्कृति विधियों के माध्यम से एमएससी में विभेदित किया गया था। भेदभाव के दौरान, कोशिकाओं ने विभिन्न प्रतिनिधि आकारिकी (…

Discussion

इस प्रोटोकॉल में, एमएससी में एचआईपीएससी को अलग करने के दो प्रतिनिधि तरीकों की जांच 20,21,22,23,24,25,26,27,28,30 की गई।

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

हम दिलचस्प चर्चाओं और परियोजना में महान योगदान के लिए माओ और हू लैब के सभी सदस्यों, अतीत और वर्तमान के लिए बहुत आभारी हैं। हम महान समर्थन के लिए बाल स्वास्थ्य के लिए राष्ट्रीय नैदानिक अनुसंधान केंद्र के आभारी हैं। इस अध्ययन को चीन के राष्ट्रीय प्राकृतिक विज्ञान फाउंडेशन (जियानहुआ माओ के U20A20351, लिदान हू के 82200784), चीन के झेजियांग प्रांत के प्राकृतिक विज्ञान फाउंडेशन (सं। LQ22C070004 लिडान हू को)।

Materials

Alizarin red staining kit Beyotime Biotechnology C0148S
Anti-human-CD105 (PE) Biolegend 323206
Anti-human-CD34 (FITC) Biolegend 343503
Anti-human-CD45 (APC) Biolegend 304011
Anti-human-CD73( APC) Biolegend 344006
Anti-human-CD90 (FITC) Biolegend 328108
Ascorbic acid Solarbio A8100
BMP-6 Novoprotein C012
Carbon dioxide level shaker Crystal CO-06UC6
Compensation Beads BioLegend 424601
CryoStor CS10 STEMCELL Technology 07959
Dexamethasone Beyotime Biotechnology ST1254
DMEM/F12  medium Servicebio G4610
Fetal bovine serum HAKATA HS-FBS-500
FGF2 Stemcell 78003.1
Gelatin Sigma-Aldrich G2500-100G
GlutaMAX Gibco 35050061
human IgG1 isotype control APC BioLegend 403505
human IgG1 isotype control FITC BioLegend 403507
human IgG1 isotype control PE BioLegend 403503
Human TGF-β1 Stemcell 78067
Human TruStain FcX  BioLegend 422301
IBMX Beyotime Biotechnology ST1398
Indomethacin Solarbio SI9020
Insulin Beyotime Biotechnology P3376
iPSC maintenance medium STEMCELL Technology 85850
ITS Media Supplement Beyotime Biotechnology C0341-10mL
Matrigel, growth factor reduced BD Corning 354230
Oli Red O staining kit Beyotime Biotechnology C0158S
Proline Solarbio P0011
Sodium pyruvate ThermoFisher 11360-070
TGFβ3 Novoprotein CJ44
Toluidine blue staining kit Solarbio G2543
TrypLE Express Enzyme(1x)  Gibco 12604013
Ultra-Low Attachment 6 Well Plate Costar 3471
Versene Gibco 15040-66
Y-27632 Stemcell 72304
α-MEM Hyclone SH30265
β-glycerophosphate Solarbio G8100

Riferimenti

  1. Weng, Z., et al. Mesenchymal stem/stromal cell senescence: Hallmarks, mechanisms, and combating strategies. Stem Cells Translational Medicine. 11 (4), 356-371 (2022).
  2. Soliman, H., et al. Multipotent stromal cells: One name, multiple identities. Cell Stem Cell. 28 (10), 1690-1707 (2021).
  3. Friedenstein, A. J., Chailakhyan, R. K., Gerasimov, U. V. Bone marrow osteogenic stem cells: in vitro cultivation and transplantation in diffusion chambers. Cell and Tissue Kinetics. 20 (3), 263-272 (1987).
  4. Friedenstein, A. J., et al. Precursors for fibroblasts in different populations of hematopoietic cells as detected by the in vitro colony assay method. Experimental Hematology. 2 (2), 83-92 (1974).
  5. Friedenstein, A. J., Gorskaja, J. F., Kulagina, N. N. Fibroblast precursors in normal and irradiated mouse hematopoietic organs. Experimental Hematology. 4 (5), 267-274 (1976).
  6. El Agha, E., et al. Mesenchymal stem cells in fibrotic disease. Cell Stem Cell. 21 (2), 166-177 (2017).
  7. Mushahary, D., Spittler, A., Kasper, C., Weber, V., Charwat, V. Isolation, cultivation, and characterization of human mesenchymal stem cells. Cytometry A. 93 (1), 19-31 (2018).
  8. Ullah, M., Liu, D. D., Thakor, A. S. Mesenchymal stromal cell homing: Mechanisms and strategies for improvement. iScience. 15, 421-438 (2019).
  9. Regmi, S., et al. Enhanced viability and function of mesenchymal stromal cell spheroids is mediated via autophagy induction. Autophagy. 17 (10), 2991-3010 (2021).
  10. Hoang, D. M., et al. Stem cell-based therapy for human diseases. Signal Transduction and Targeted Therapy. 7 (1), 272 (2022).
  11. Jiang, B., et al. Concise review: Mesenchymal stem cells derived from human pluripotent cells, an unlimited and quality-controllable source for therapeutic applications. Stem Cells. 37 (5), 572-581 (2019).
  12. Soontararak, S., et al. Mesenchymal stem cells (MSC) derived from induced pluripotent stem cells (iPSC) equivalent to adipose-derived MSC in promoting intestinal healing and microbiome normalization in mouse inflammatory bowel disease model. Stem Cells Translational Medicine. 7 (6), 456-467 (2018).
  13. Di Baldassarre, A., Cimetta, E., Bollini, S., Gaggi, G., Ghinassi, B. Human-induced pluripotent stem cell technology and cardiomyocyte generation: Progress and clinical applications. Cells. 7 (6), 48 (2018).
  14. Shi, Y., Inoue, H., Wu, J. C., Yamanaka, S. Induced pluripotent stem cell technology: a decade of progress. Nature Reviews. Drug Discovery. 16 (2), 115-130 (2017).
  15. Levy, O., et al. Shattering barriers toward clinically meaningful MSC therapies. Science Advances. 6 (30), eaba6884 (2020).
  16. Zhao, C., Ikeya, M. Generation and applications of induced pluripotent stem cell-derived mesenchymal stem cells. Stem Cells International. 2018, 9601623 (2018).
  17. Path, G., Perakakis, N., Mantzoros, C. S., Seufert, J. Stem cells in the treatment of diabetes mellitus – Focus on mesenchymal stem cells. Metabolism. 90, 1-15 (2019).
  18. Zhou, Y., et al. One-step derivation of functional mesenchymal stem cells from human pluripotent stem cells. Bio-Protocol. 8 (22), e3080 (2018).
  19. Hua, Z., et al. Low-intensity pulsed ultrasound promotes osteogenic potential of iPSC-derived MSCs but fails to simplify the iPSC-EB-MSC differentiation process. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology. 10, 841778 (2022).
  20. Dupuis, V., Oltra, E. Methods to produce induced pluripotent stem cell-derived mesenchymal stem cells: Mesenchymal stem cells from induced pluripotent stem cells. World Journal of Stem Cells. 13 (8), 1094-1111 (2021).
  21. Zhang, W., et al. Aging stem cells. A Werner syndrome stem cell model unveils heterochromatin alterations as a driver of human aging. Science. 348 (6239), 1160-1163 (2015).
  22. Liu, G. H., et al. Modelling Fanconi anemia pathogenesis and therapeutics using integration-free patient-derived iPSCs. Nature Communications. 5, 4330 (2014).
  23. Kubben, N., et al. Repression of the antioxidant NRF2 pathway in premature aging. Cell. 165 (6), 1361-1374 (2016).
  24. Duan, S., et al. PTEN deficiency reprogrammes human neural stem cells towards a glioblastoma stem cell-like phenotype. Nature Communications. 6, 10068 (2015).
  25. Zhang, J., et al. Exosomes released from human induced pluripotent stem cells-derived MSCs facilitate cutaneous wound healing by promoting collagen synthesis and angiogenesis. Journal of Translational Medicine. 13, 49 (2015).
  26. Hu, G. W., et al. Exosomes secreted by human-induced pluripotent stem cell-derived mesenchymal stem cells attenuate limb ischemia by promoting angiogenesis in mice. Stem Cell Research & Therapy. 6 (1), 10 (2015).
  27. Kang, R., et al. Mesenchymal stem cells derived from human induced pluripotent stem cells retain adequate osteogenicity and chondrogenicity but less adipogenicity. Stem Cell Research & Therapy. 6 (1), 144 (2015).
  28. Wang, L. T., et al. Differentiation of mesenchymal stem cells from human induced pluripotent stem cells results in downregulation of c-Myc and DNA replication pathways with immunomodulation toward CD4 and CD8 cells. Stem Cells. 36 (6), 903-914 (2018).
  29. Dominici, M., et al. Minimal criteria for defining multipotent mesenchymal stromal cells. The International Society for Cellular Therapy position statement. Cytotherapy. 8 (4), 315-317 (2006).
  30. Kim, S., Kim, T. M. Generation of mesenchymal stem-like cells for producing extracellular vesicles. World Journal of Stem Cells. 11 (5), 270-280 (2019).
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Citazione di questo articolo
Wang, F., Gao, L., Fu, X., Yan, Q., Hu, L., Mao, J. Comparison of Two Representative Methods for Differentiation of Human Induced Pluripotent Stem Cells into Mesenchymal Stromal Cells. J. Vis. Exp. (200), e65729, doi:10.3791/65729 (2023).

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