Summary

Extraction de l’ADN des diatomées à partir d’échantillons d’eau et de tissus

Published: November 10, 2023
doi:

Summary

Cet article décrit un protocole d’extraction de l’ADN des diatomées à l’aide d’un kit d’extraction d’ADN commun modifié.

Abstract

Le test des diatomées est un moyen auxiliaire essentiel dans la pratique médico-légale pour déterminer si le cadavre s’est noyé dans l’eau et pour déduire le lieu de la noyade. L’analyse des diatomées est également un élément de recherche important dans le domaine de l’environnement et du plancton. La technologie de test de biologie moléculaire des diatomées, qui se concentre sur l’ADN des diatomées en tant qu’objet de recherche principal, est une nouvelle méthode de test des diatomées. L’extraction de l’ADN des diatomées est la base des tests moléculaires des diatomées. À l’heure actuelle, les kits couramment utilisés pour l’extraction de l’ADN des diatomées sont coûteux, ce qui augmente le coût de la recherche connexe. Notre laboratoire a amélioré le kit général d’extraction rapide d’ADN génomique du sang total et a obtenu un effet d’extraction d’ADN de diatomée satisfaisant, fournissant ainsi une solution d’extraction d’ADN alternative économique et abordable à base de billes de verre pour la recherche connexe. L’ADN des diatomées extrait à l’aide de ce protocole pourrait satisfaire de nombreuses applications en aval, telles que la PCR et le séquençage.

Introduction

Dans la pratique médico-légale, il est essentiel de déterminer si un cadavre retrouvé dans l’eau en train de se noyer ou s’il a été jeté à l’eau après la mort est essentiel pour la bonne résolution de l’affaire1. C’est aussi l’une des questions difficiles qui doivent être résolues de toute urgence dans la pratique médico-légale2. Les diatomées sont abondantes dans le milieu naturel (en particulier dans l’eau)3,4. Au cours du processus de noyade, en raison de l’hypoxie et de la réponse au stress, les gens auront des mouvements respiratoires intenses et inhaleront une grande quantité de liquide de noyade. Par conséquent, les diatomées dans l’eau pénètrent dans les poumons avec le liquide de noyade, et certaines diatomées peuvent pénétrer dans la circulation sanguine à travers la barrière alvéolaire-capillaire et se propager aux organes internes avec le flux sanguin 5,6. La détection de diatomées dans les tissus internes et les organes tels que les poumons, le foie et la moelle osseuse est une preuve solide de noyade avant la mort 7,8. À l’heure actuelle, les tests médico-légaux des diatomées sont principalement basés sur des méthodes de tests morphologiques. Après une série de pré-digestion des tissus, les estimations morphologiques qualitatives et quantitatives des diatomées non digérées sont effectuées au microscope. Pendant cette période, des réactifs dangereux et peu respectueux de l’environnement tels que l’acide nitrique doivent être utilisés. Ce processus prend beaucoup de temps et exige des chercheurs qu’ils disposent d’une solide expertise taxonomique et d’une vaste expérience. Tout cela pose certains défis au personnel médico-légal9. La technologie de test d’ADN des diatomées est une nouvelle technologie de test des diatomées développée ces dernières années 10,11,12. Cette technologie permet d’identifier les espèces de diatomées en analysant la composition spécifique des séquences d’ADN des diatomées13,14. La technologie PCR et la technologie de séquençage sont des méthodes techniques couramment utilisées, mais leur base est l’extraction réussie de l’ADN des diatomées. Cependant, les diatomées ont une structure spéciale différente des autres organismes, ce qui rend leurs techniques d’extraction de l’ADN également différentes.

La paroi cellulaire de la diatomée a un degré élevé de silicification et son composant principal est le dioxyde de silicium 15,16,17. La paroi cellulaire siliceuse est très dure et doit être détruite avant d’extraire l’ADN. Les kits d’extraction d’ADN ordinaires sont souvent difficiles à utiliser directement pour l’extraction de l’ADN des diatomées car ils ne peuvent pas détruire la coquille siliceuse des diatomées18. Par conséquent, la destruction de la coquille siliceuse des diatomées est l’un des principaux problèmes techniques à résoudre dans l’extraction de l’ADN des diatomées.

Dans le même temps, étant donné que le nombre de diatomées contenues dans les échantillons de recherche médico-légale, qu’il s’agisse d’échantillons d’eau ou d’organes et de tissus de corps noyés, est souvent limité, il est nécessaire d’enrichir les diatomées. L’essence de l’enrichissement est la séparation des substances. Lorsque vous essayez de rassembler les diatomées, minimisez le contenu des autres composants matériels (composants interférents). Dans le domaine de la médecine légale, les laboratoires utilisent souvent des méthodes de centrifugation ou d’enrichissement par filtration membranaire pour séparer les cellules de diatomées19. Cependant, étant donné que l’équipement de pompage sous vide n’est pas largement utilisé, la méthode d’enrichissement membranaire n’est pas souvent utilisée dans les laboratoires médico-légaux primaires ordinaires. Ainsi, la méthode de centrifugation est encore couramment l’enrichissement en diatomées dans les laboratoires médico-légaux20.

L’extraction de l’ADN à partir de diatomées est actuellement utilisée principalement dans la pratique médico-légale, et son application présente des limites importantes. À l’heure actuelle, il existe peu de kits d’extraction d’ADN de diatomées utilisés en médecine légale sur le marché et ils sont généralement coûteux21. Cet article fournit une méthode améliorée d’extraction de l’ADN des diatomées, rendant l’extraction de l’ADN des diatomées simple, pratique et rentable. Cela augmente l’application des tests de biologie moléculaire ultérieurs des diatomées et peut mieux résoudre les problèmes liés à la noyade en médecine légale grâce aux tests de diatomées. Cette méthode brise les parois cellulaires siliceuses des diatomées en ajoutant des billes de verre et en fixant un moment approprié pour le vortex. De cette façon, la protéinase K et la solution de liaison lysent rapidement les cellules et inactivent diverses enzymes dans les cellules. L’ADN génomique est absorbé dans la membrane matricielle de la colonne d’adsorption et finalement élué par le tampon d’élution. Un tel kit amélioré d’extraction de gènes de sang total améliore l’effet d’extraction de l’ADN des diatomées du kit de sang dans les matériaux d’examen médico-légal, réduit le coût de l’extraction de l’ADN des diatomées dans la pratique médico-légale et peut être mieux appliqué à la recherche médico-légale de base.

Protocol

Cette étude a été approuvée par le comité d’éthique de l’Université de médecine de Hainan. Les échantillons de tissus utilisés dans cette étude ne sont pas considérés comme des études impliquant des sujets humains. Ces spécimens ont été obtenus à des fins de diagnostic de médecine légale, et le reste a été utilisé pour l’extraction de l’ADN des diatomées dans cette expérience. Les chercheurs ne peuvent pas facilement identifier les personnes pour obtenir le consentement éclairé des part…

Representative Results

Étant donné que la solution d’ADN extraite par la méthode d’extraction d’ADN actuellement utilisée contient tous les composants de l’ADN provenant de différentes sources dans l’échantillon, l’ADN obtenu par ce protocole n’a pas fait exception. Ainsi, la solution d’ADN n’était pas seulement une solution d’ADN génomique de diatomées. Les amorces qui peuvent amplifier spécifiquement les fragments d’ADNr de la diatomée 18S ont été sélectionnées en consultant la littérature 22,23,24.<sup …

Discussion

Les cellules de diatomées sont protégées par des parois cellulaires siliceuses dures17, et cette structure doit être détruite pour extraire l’ADN des diatomées. Les kits ordinaires ne détruisent pas facilement la coquille siliceuse des diatomées ; il est donc difficile d’extraire avec succès l’ADN21 des diatomées. Notre laboratoire a amélioré le kit d’extraction d’ADN sanguin le plus couramment utilisé, en ajoutant des billes de verre de différents …

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ce travail est soutenu par la Fondation nationale des sciences naturelles de Chine (82060341,81560304) et par le projet de recherche scientifique de la plate-forme d’innovation académicienne de la province de Hainan (YSPTZX202134).

Materials

Binding Buffer BioTeke B010006022 rapidly lysing cells
ChemoHS qPCR Mix Monad 00007547-120506 qPCR Mix
D2000 DNA ladder Real-Times(Beijing) Biotechnology RTM415 Measure the position of electrophoretic bands
D512 Taihe Biotechnology TW21109196 forword primer
D978 Taihe Biotechnology TW21109197 reverse primer
Elution buffer BioTeke B010006022 A low-salt elution buffer washes off the DNA
Glass bead Yingxu Chemical Machinery(Shanghai)  70181000 Special glass beads for dispersing and grinding
Import adsorption column BioTeke B2008006022 Adsorption column with silica matrix membrane
Inhibitor Removal Buffer BioTeke B010006022 Removal of Inhibitors in DNA Extraction
Isopropanol BioTeke B010006022 Precipitate or isolate DNA
MIX-30S Mini Mixer Miulab MUC881206 oscillatory action
Proteinase K BioTeke B010006022 Inactivation of intracellular nucleases and other proteins
Rotor-Gene Q 5plex HRM Qiagen R1116175 real-time fluorescence quantification PCR
Speed Micro-Centrifuge Scilogex 9013001121 centrifuge
Tanon 3500R Gel Imager Tanon 16T5553R-455 gel imaging
Taq Mix Pro Monad 00007808-140534 PCR Mix
Thermo Cycler Zhuhai Hema VRB020A ordinary PCR
Wash Buffer BioTeke B010006022 Remove impurities such as cell metabolites

Riferimenti

  1. Liu, C., Cong, B. Review and prospect of diagnosis of drowning deaths in water. Fa Yi Xue Za Zhi. 38 (1), 3-13 (2022).
  2. Frisoni, P., et al. Forensic diagnosis of freshwater or saltwater drowning using the marker aquaporin 5: An immunohistochemical study. Medicina (Kaunas). 58 (10), 1458 (2022).
  3. Mann, D. G., Vanormelingen, P. An inordinate fondness? The number, distributions, and origins of diatom species. J Eukaryot Microbiol. 60 (4), 414-420 (2013).
  4. Pfister, L., et al. Terrestrial diatoms as tracers in catchment hydrology: a review. WIREs Water. 4, 1241 (2017).
  5. Yu, W., et al. An improved automated diatom detection method based on YOLOv5 framework and its preliminary study for taxonomy recognition in the forensic diatom test. Front Microbiol. 13, 963059 (2022).
  6. Zhang, P., et al. The length and width of diatoms in drowning cases as the evidence of diatoms penetrating the alveoli-capillary barrier. Int J Legal Med. 134 (3), 1037-1042 (2020).
  7. Kihara, Y., et al. Experimental water injection into lungs using an animal model: Verification of the diatom concentration test to diagnose drowning. Forensic Sci Int. 327, 110983 (2021).
  8. Shen, X., et al. Analysis of false-positive results of diatom test in the diagnosis of drowning-would not be an impediment. Int J Legal Med. 133 (6), 1819-1824 (2019).
  9. Manoylov, K. M. Taxonomic identification of algae (morphological and molecular): species concepts, methodologies, and their implications for ecological bioassessment. J Phycol. 50 (3), 409-424 (2014).
  10. Uchiyama, T., et al. A new molecular approach to help conclude drowning as a cause of death: simultaneous detection of eight bacterioplankton species using real-time PCR assays with TaqMan probes. Forensic Sci Int. 222 (1-3), 11-26 (2012).
  11. Kakizaki, E., et al. Detection of diverse aquatic microbes in blood and organs of drowning victims: first metagenomic approach using high-throughput 454-pyrosequencing. Forensic Sci Int. 220 (1-3), 135-146 (2012).
  12. Cai, J., Wang, B., Chen, J. H., Deng, J. Q. Application Progress of High-Throughput Sequencing Technology in Forensic Diatom Detection. Fa Yi Xue Za Zhi. 38 (1), 20-30 (2022).
  13. Xiao, C., et al. Development and application of a multiplex PCR system for drowning diagnosis. Electrophoresis. 42 (11), 1270-1278 (2021).
  14. Yarimizu, K., et al. Development of an absolute quantification method for ribosomal RNA gene copy numbers per eukaryotic single cell by digital PCR. Harmful Algae. 103, 102008 (2021).
  15. Dalgic, A. D., Atila, D., Karatas, A., Tezcaner, A., Keskin, D. Diatom shell incorporated PHBV/PCL-pullulan co-electrospun scaffold for bone tissue engineering. Mater Sci Eng C Mater Biol Appl. 100, 735-746 (2019).
  16. Malviya, S., et al. Insights into global diatom distribution and diversity in the world’s ocean. Proc Natl Acad Sci U S A. 113 (11), 1516-1525 (2016).
  17. Brunner, E., et al. Analytical studies of silica biomineralization: towards an understanding of silica processing by diatoms. Appl Microbiol Biotechnol. 84 (4), 607-616 (2009).
  18. Annunziata, R., et al. An optimised method for intact nuclei isolation from diatoms. Sci Rep. 11 (1), 1681 (2021).
  19. Zhao, J., et al. The diagnostic value of quantitative assessment of diatom test for drowning: An analysis of 128 water-related death cases using microwave digestion-vacuum filtration-automated scanning electron microscopy. J Forensic Sci. 62 (6), 1638-1642 (2017).
  20. Zhao, J., Liu, C., Hu, S., He, S., Lu, S. Microwave digestion-vacuum filtration-automated scanning electron microscopy as a sensitive method for forensic diatom test. Int J Legal Med. 127 (2), 459-463 (2013).
  21. Cai, J., et al. Improved glass bead-vortex oscillation method for DNA extraction from diatom. Fa Yi Xue Za Zhi. 38 (1), 119-126 (2022).
  22. Zimmermann, J., Jahn, R., Gemeinholzer, B. Barcoding diatoms: evaluation of the V4 subregion on the 18S rRNA gene, including new primers and protocols. Org Divers Evol. 11 (3), 173-192 (2011).
  23. Vinayak, V. Chloroplast gene markers detect diatom DNA in a drowned mice establishing drowning as a cause of death. Electrophoresis. , (2020).
  24. Plante, C. J., Hill-Spanik, K., Cook, M., Graham, C. Environmental and Spatial Influences on Biogeography and Community Structure of Saltmarsh Benthic Diatoms. Estuaries and Coasts. 44, 147-161 (2021).
  25. Heid, C. A., Stevens, J., Livak, K. J., Williams, P. M. Real time quantitative PCR. Genome Res. 6 (10), 986-994 (1996).
  26. Ben Amor, F., et al. Development of a novel TaqMan qPCR assay for rapid detection and quantification of Gymnodinium catenatum for application to harmful algal bloom monitoring in coastal areas of Tunisia. Environ Sci Pollut Res Int. 29 (42), 63953-63963 (2022).
  27. Doddaraju, P., et al. Reliable and early diagnosis of bacterial blight in pomegranate caused by Xanthomonas axonopodis pv. punicae using sensitive PCR techniques. Sci Rep. 9 (1), 10097 (2019).
  28. Lunetta, P., Miettinen, A., Spilling, K., Sajantila, A. False-positive diatom test: a real challenge? A post-mortem study using standardized protocols. Leg Med (Tokyo). 15 (5), 229-234 (2013).
  29. Marquesda Silva, J., Cruz, S., Cartaxana, P. Inorganic carbon availability in benthic diatom communities: photosynthesis and migration. Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci. 372 (1728), 20160398 (2017).
  30. Yu, Z., et al. The effect of enzyme digestion time on the detection of diatom species. Pak J Pharm Sci. 27 (3 Suppl), 691-694 (2014).
  31. Liu, M., et al. Diatom DNA barcodes for forensic discrimination of drowning incidents. FEMS Microbiol Lett. 367 (17), 145 (2020).
  32. Mizushima, W., et al. The novel heart-specific RING finger protein 207 is involved in energy metabolism in cardiomyocytes. J Mol Cell Cardiol. 100, 43-53 (2016).
  33. Zimmermann, J., et al. Taxonomic reference libraries for environmental barcoding: a best practice example from diatom research. PLoS One. 9 (9), 108793 (2014).
check_url/it/65792?article_type=t

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Citazione di questo articolo
Zhou, Y., Wang, B., Cai, J., Xu, Y., Qin, X., Ha, S., Cong, B., Chen, J., Deng, J. Extraction of Diatom DNA from Water Samples and Tissues. J. Vis. Exp. (201), e65792, doi:10.3791/65792 (2023).

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