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Articolo metodologico

Generazione di itenociti derivati da cellule staminali pluripotenti indotte tramite sovraespressione combinata della sclerassi e tensione uniassiale 2D

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DOI:

10.3791/65837

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1 marzo 2024

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In questo articolo

Sommario

Questo articolo descrive una procedura per produrre iTenociti generando cellule stromali mesenchimali derivate da iPSC con sovraespressione combinata di Scleraxis utilizzando un vettore lentivirale e stretching uniassiale tramite un bioreattore 2D.

Abstract

Le sfide odierne nella riparazione dei tendini e dei legamenti richiedono l'identificazione di un candidato adatto ed efficace per la terapia cellulare per promuovere la rigenerazione del tendine. Le cellule stromali mesenchimali (MSC) sono state esplorate come potenziale strategia di ingegneria tissutale per la riparazione dei tendini. Sebbene siano multipotenti e abbiano un potenziale rigenerativo in vivo, sono limitati nella loro capacità di auto-rinnovamento e mostrano eterogeneità fenotipica. Le cellule staminali pluripotenti indotte (iPSC) possono aggirare queste limitazioni grazie alla loro elevata capacità di auto-rinnovamento e alla plasticità di sviluppo senza pari. Nello sviluppo dei tenociti, la sclerassi (Scx) è un regolatore molecolare diretto cruciale della differenziazione tendinea. Inoltre, è stato dimostrato che la meccanoregolazione è un elemento centrale che guida lo sviluppo e la guarigione del tendine embrionale. Per questo motivo, abbiamo sviluppato un protocollo per incapsulare l'effetto sinergico della stimolazione biologica e meccanica che può essere essenziale per la generazione di tenociti. Le iPSC sono state indotte a diventare cellule stromali mesenchimali (iMSC) e sono state caratterizzate con i classici marcatori delle cellule stromali mesenchimali tramite citometria a flusso. Successivamente, utilizzando un vettore lentivirale, le iMSC sono state trasdotte per sovraesprimere stabilmente SCX (iMSCSCX+). Queste cellule iMSCSCX+ possono essere ulteriormente maturate in iTenociti tramite carico di trazione uniassiale utilizzando un bioreattore 2D. Le cellule risultanti sono state caratterizzate dall'osservazione della sovraregolazione dei marcatori tendinei precoci e tardivi, nonché della deposizione di collagene. Questo metodo di generazione di iTenociti può essere utilizzato per aiutare i ricercatori a sviluppare una fonte di cellule allogeniche potenzialmente illimitata per applicazioni di terapia cellulare tendinea.

Introduzione

Per affrontare i problemi contemporanei nella riparazione di tendini e legamenti, è necessario disporre di una cellula candidata pertinente adatta alle terapie cellulari. Una via di indagine nell'ingegneria tissutale per la riparazione dei tendini coinvolge l'esplorazione delle cellule stromali mesenchimali derivate dal midollo osseo (BM-MSC) e delle cellule stromali derivate dal tessuto adiposo (ASC) come potenziali strategie. Queste cellule hanno capacità multipotenti, grande abbondanza e potenziale rigenerativo in vivo. Inoltre, hanno mostrato una maggiore capacità di guarigione e migliori risultati funzionali nei modelli animali1. ....

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Protocollo

Questo protocollo per la produzione di iTenociti può essere condotto in tre fasi principali: da iPSC a iMSC (10 giorni), da iMSC a iMSCSCX+ (2 settimane), da iMSCSCX+ a iTenociti (minimo 4 giorni). Ogni fase principale del protocollo può essere messa in pausa e riavviata in un secondo momento, a seconda della tempistica sperimentale. Per i metodi coinvolti nella coltura delle cellule, devono essere impiegate tecniche sterili. Tutte le cellule di questo protocollo devono essere coltivate a 37 °C, 5% di CO2 e 95% di umidità.

1. Induzione di iPSC umane in cellule stromali mesenchimali indotte (iMSC)

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Risultati

Differenziazione delle iPSC umane in iMSCs
Come descritto in precedenza, l'attuale protocollo per differenziare le iPSC in iMSC prevede la formazione di corpi embrioidi2. Questo processo richiede circa dieci giorni per indurre le iMSC dalle iPSC (Figura 1A). Tuttavia, si consiglia vivamente di passare gli iMSC appena generati almeno due volte. Questo non solo aiuta a eliminare la necessità di piastre rivestite di gelatina, ma stabilisce anche un'es.......

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Discussione

In questo protocollo, gli itenociti sono generati attraverso tre fasi principali: (1) induzione di iPSC a iMSC, (2) sovraespressione di SCX utilizzando un vettore lentivirale e (3) maturazione delle cellule attraverso la tensione uniassiale 2D.

Il protocollo presentato per differenziare le iPSC in iMSC è stato precedentemente descritto dal nostro gruppo2. Da quella pubblicazione, sono stati sviluppati numerosi protocolli, tra cui un protocollo consolidato per l'utilizzo.......

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Dichiarazioni

Tutti gli autori non hanno conflitti di interesse da rivelare.

Ringraziamenti

Questo studio è stato parzialmente supportato dal NIH/NIAMS K01AR071512 e dal CIRM DISC0-14350 a Dmitriy Sheyn. I due plasmidi di confezionamento dei lentivirus sono stati donati dal laboratorio Simon Knott (Dipartimento di Scienze Biomediche, Cedars-Sinai Medical Center).

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
2-mercaptoetanolo Sigma AldrichM3148
AccutaseStemCell Technologies7920reagente di dissociazione cellulare
Soluzione antibiotico-antimicoticaThermofisher15240096
Anti-CD105Ancell326-050
APC topo anti-umano CD44BD Biosciences559942
APC mouse IgG2 K controllo dell'isotipoBD Biosciences555745
BenchMark fetale siero bovinoGeminiBio100-106
BiglycanThermofisherHs00959143_m1
Siero bovino albuminaMillipore SigmaA3733
Collagene di tipo I alfa 1 catena umana Taqman primerThermofisherHs00164004_m1
Collagene di tipo III alfa 1 catena umana Taqman primerThermofisherHs00943809_m1
Dimetil solfossidoMillipore SigmaD8418
DMEM, basso glucosio, piruvato, senza glutammina, senza fenolo rossoThermofisher11054020
Eagle's minimum essential medium (EMEM)ATCC30-2003
Fibronectina plasma bovinoSigma AldrichF1141
FITC topo anti-umano CD90BD Biosciences555595
Gelatina da pelle suinaSigma AldrichG1890
Capra anti Topo IgG1-PEBio-RadSTAR117
HEK 293T/17ATCCCRL-11268
IMDM, senza fenolo rossoThermofisher21056023
iPSC: 83i-cntr-33n1Cedars-Sinai iPSC Core FacilityN/Ahttps://biomanufacturing.cedars-sinai.org/product/cs83ictr-33nxx/
Anticorpo per il controllo degli isotipi, topo IgG2a-FITCMiltenyi Biotec130-113-271
Sostituzione del siero KnockOutThermofisher10828010
acido L-ascorbicoSigma AldrichA4544
L-GlutamminaThermofisher2503081
MatrigelCorning354230matrice a membrana basale
MechanoCulture FXCellScaleN/Aapparato di stretching
MEM soluzione di aminoacidi non essenzialiThermofisher11140050
Mohawk umano Taqman primerThermofisherHs00543190_m1
mTeSR PlusStemCell Technologies100-0276
PBSThermofisher10010023
Recettore del fattore di crescita derivato dalle piastrine Un primer Taqman umanoThermofisherHs00998018_m1
Poli(2-idrossietilmetacrilato)Sigma Aldrich192066
Reagenti per infezione/trasfezione di PolybreneMillipore SigmaTR-1003
Ricombinante umano  TGF-beta 1 proteina umana Taqman primerRnD Systems240-B
Scleraxis umano Taqman primerThermofisherHs03054634_g1
SCXA (SCX) (NM_00108050514) umano taggato ORF cloneOriGeneRC224305L4
Piastre in siliconeCellScaleN/A
Sodio azideMillipore SigmaS2002
Tenascin C Primer Taqman umanoThermofisherHs00370384_m1
Tenomodulin primer Taqman umanoThermofisherHs00223332_m1
Trombospondina 4 primer Taqman umanoThermofisherHs00170261_m1
Reagente di trasfezione, BioTBioland Scientific LLCB01-01
Tripsina-EDTA (0,25%)Thermofisher25200072
Membro della famiglia delle proteine che promuovono la polimerizzazione della tubulina 3ThermofisherHs03043892_m1
Dicloridrato di Y-27632Biogems1293823

Riferimenti

  1. Lim, W. L., Liau, L. L., Ng, M. H., Chowdhury, S. R., Law, J. X. Current progress in tendon and ligament tissue engineering. Tissue Engineering and Regenerative. 16 (6), 549-571 (2019).
  2. Sheyn, D., et al.

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Ristampe e permessi

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