Summary

Kostenefficiënte transcriptomische screening van geneesmiddelen

Published: February 23, 2024
doi:

Summary

Dit protocol beschrijft een workflow van ex vivo of in vitro celculturen tot transcriptomische gegevensvoorverwerking voor kosteneffectieve transcriptoomgebaseerde geneesmiddelenscreening.

Abstract

Transcriptomics maakt het mogelijk om uitgebreide inzichten te verkrijgen in cellulaire programma’s en hun reacties op verstoringen. Ondanks een aanzienlijke daling van de kosten van bibliotheekproductie en -sequencing in het afgelopen decennium, blijft het toepassen van deze technologieën op de schaal die nodig is voor het screenen van geneesmiddelen onbetaalbaar, waardoor het enorme potentieel van deze methoden wordt belemmerd. Onze studie presenteert een kosteneffectief systeem voor transcriptoomgebaseerde screening van geneesmiddelen, waarbij geminiaturiseerde verstoringsculturen worden gecombineerd met mini-bulk transcriptomics. Het geoptimaliseerde mini-bulkprotocol biedt informatieve biologische signalen op kosteneffectieve sequencingdiepte, waardoor uitgebreide screening van bekende geneesmiddelen en nieuwe moleculen mogelijk is. Afhankelijk van de gekozen behandeling en incubatietijd zal dit protocol binnen ongeveer 2 dagen resulteren in sequencing libraries. Door verschillende stoppunten binnen dit protocol kan de bibliotheekvoorbereiding, evenals de sequencing, tijdonafhankelijk worden uitgevoerd. Het gelijktijdig verwerken van een groot aantal monsters is mogelijk; De meting van maximaal 384 monsters werd getest zonder verlies van gegevenskwaliteit. Er zijn ook geen bekende beperkingen aan het aantal aandoeningen en/of geneesmiddelen, ondanks het feit dat rekening wordt gehouden met de variabiliteit in optimale incubatietijden van geneesmiddelen.

Introduction

De ontwikkeling van nieuwe geneesmiddelen is een complex en tijdrovend proces waarbij potentiële geneesmiddelen en hun doelwitten worden geïdentificeerd, kandidaat-geneesmiddelen worden geoptimaliseerd en gesynthetiseerd, en hun werkzaamheid en veiligheid worden getest in preklinische en klinische onderzoeken. Traditionele methoden voor het screenen van geneesmiddelen, d.w.z. de systematische beoordeling van bibliotheken van kandidaat-verbindingen voor therapeutische doeleinden, omvatten het gebruik van diermodellen of celgebaseerde assays om de effecten op specifieke doelen of routes te testen. Hoewel deze methoden succesvol zijn geweest in het identificeren van kandidaat-geneesmiddelen, gaven ze vaak onvoldoende inzicht in de complexe moleculaire mechanismen die ten grondslag liggen aan de werkzaamheid van geneesmiddelen en ook in de toxiciteit en mechanismen van mogelijke bijwerkingen.

Het beoordelen van genoombrede transcriptietoestanden biedt een krachtige benadering om de huidige beperkingen bij het screenen van geneesmiddelen te overwinnen, omdat het uitgebreide beoordelingen van genexpressie mogelijk maakt als reactie op medicamenteuze behandelingen. Door RNA-transcripten op een genoombrede manier te meten die op een bepaald moment tot expressie worden gebracht, wil transcriptomics een holistisch beeld geven van de transcriptionele veranderingen die optreden als reactie op geneesmiddelen, waaronder veranderingen in genexpressiepatronen, alternatieve splicing en niet-coderende RNA-expressie3. Deze informatie kan worden gebruikt om medicijndoelen te bepalen, de werkzaamheid en toxiciteit van geneesmiddelen te voorspellen en de dosering en behandelingsregimes van geneesmiddelen te optimaliseren.

Een van de belangrijkste voordelen van het combineren van transcriptomics met onbevooroordeelde screening van geneesmiddelen is het potentieel om nieuwe medicijndoelen te identificeren die nog niet eerder zijn overwogen. Conventionele benaderingen voor het screenen van geneesmiddelen zijn vaak gericht op gevestigde doelmoleculen of -routes, waardoor de identificatie van nieuwe doelwitten wordt belemmerd en mogelijk wordt geleid tot geneesmiddelen met onvoorziene bijwerkingen en beperkte effectiviteit. Transcriptomics kan deze beperkingen overwinnen door inzicht te geven in de moleculaire veranderingen die optreden als reactie op medicamenteuze behandeling, waardoor potentiële doelen of routes aan het licht komen die mogelijk niet eerder zijn overwogen2.

Naast de identificatie van nieuwe doelwitten voor geneesmiddelen, kan transcriptomics ook worden gebruikt om de werkzaamheid en toxiciteit van geneesmiddelen te voorspellen. Door de genexpressiepatronen te analyseren die verband houden met geneesmiddelresponsen, kunnen biomarkers worden ontwikkeld die kunnen worden gebruikt om de reactie van een patiënt op een bepaald medicijn of behandelingsregime te voorspellen. Dit kan ook helpen om de dosering van geneesmiddelen te optimaliseren en het risico op nadelige bijwerkingen te verminderen4.

Ondanks de potentiële voordelen blijven de kosten van transcriptomics een belangrijke belemmering voor de wijdverbreide toepassing ervan bij het screenen van geneesmiddelen. Transcriptomische analyse vereist gespecialiseerde apparatuur, technische expertise en data-analyse, wat het voor kleinere onderzoeksteams of organisaties met beperkte financiering een uitdaging kan maken om transcriptomics te gebruiken bij het screenen van geneesmiddelen. De kosten van transcriptomics zijn echter gestaag gedaald, waardoor het toegankelijker is geworden voor de onderzoeksgemeenschappen. Bovendien hebben technologische vooruitgang en methoden voor gegevensanalyse transcriptomics efficiënter en kosteneffectiever gemaakt, waardoor de toegankelijkheid verder is toegenomen2.

In dit protocol beschrijven we een hoogdimensionaal en exploratief systeem voor transcriptoom-gebaseerde drug screening, waarbij geminiaturiseerde perturbatieculturen worden gecombineerd met mini-bulk transcriptomics analyse 5,6. Met dit protocol is het mogelijk om de kosten per monster te verlagen tot 1/6evan de huidige kosten van commerciële oplossingen voor mRNA-sequencing van volledige lengte. Het protocol vereist alleen standaard laboratoriumapparatuur, met als enige uitzondering het gebruik van short-read sequencing-technologieën, die kunnen worden uitbesteed als sequencing-instrumenten niet in huis beschikbaar zijn. Het geoptimaliseerde mini-bulkprotocol levert informatierijke biologische signalen op kosteneffectieve sequencingdiepte, waardoor een uitgebreide screening van bekende geneesmiddelen en nieuwe moleculen mogelijk is.

Het doel van het experiment is om te screenen op geneesmiddelactiviteit op PBMC’s in verschillende biologische contexten. Dit protocol kan worden toegepast op elke biologische vraag waarbij verschillende geneesmiddelen moeten worden getest met een transcriptomische uitlezing, waardoor een transcriptoombreed beeld wordt gegeven van het cellulaire effect van de behandeling.

Protocol

Dit protocol volgt de richtlijnen van de lokale ethische commissies van de Universiteit van Bonn. 1. Voorbereiding van buffers, oplossingen en apparatuur Bereid de oplossingen voor en verzamel de materialen die worden beschreven in de tabel met materialen. Verwarm het waterbad tot 37 °C en warm het complete groeimedium op (RPMI-1640 + 10% foetaal kalfsserum (FCS) + 1% penicilline/streptomycine). Gebruik voor het oogsten van celle…

Representative Results

Volgens het gerapporteerde protocol werden menselijke PBMC’s gezaaid, behandeld met verschillende immunomodulerende geneesmiddelen en, na verschillende incubatietijden, geoogst voor bulktranscriptomische analyse met behulp van het sequencingprotocol (Figuur 1). Ideale geneesmiddelconcentraties en incubatietijden voor testverbindingen moeten stroomopwaarts van dit protocol worden vastgesteld met behulp van aanvullende experimentele strategieën en op basis van de s…

Discussion

Het ontdekken en ontwikkelen van geneesmiddelen kan veel baat hebben bij de holistische kijk op cellulaire processen die bulktranscriptomics kan bieden. Desalniettemin wordt deze aanpak vaak beperkt door de hoge kosten van het experiment met het standaard bulk RNA-seq-protocol, waardoor de toepassing ervan in academische omgevingen en het potentieel voor industriële schaalbaarheid worden verhinderd.

De meest kritische stappen van het protocol zijn het ontdooien van de cellen en de eerste stap…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

J.L.S. wordt ondersteund door de Duitse Onderzoeksstichting (DFG) in het kader van de Duitse excellentiestrategie (EXC2151-390873048) en in het kader van SCHU 950/8-1; GRK 2168, TP11; CRC SFB 1454 Metaflammatie, IRTG GRK 2168, WGGC INST 216/981-1, CCU INST 217/988-1, het door BMBF gefinancierde excellentieproject Diet-Body-Brain (DietBB); en het EU-project SYSCID onder subsidienummer 733100. M.B. wordt ondersteund door DFG (IRTG2168-272482170, SFB1454-432325352). L.B. wordt ondersteund door DFG (ImmuDiet BO 6228/2-1 – Projectnummer 513977171) en de Duitse Excellence Strategy (EXC2151-390873048). Afbeeldingen gemaakt met BioRender.com.

Materials

50 mL conical tube fisher scientific 10203001
Adhesive PCR Plate Seals Thermo Fisher Scientific AB0558
Amplicon Tagment Mix (ATM) Illumina FC-131-1096 Nextera XT DNA Library Prep Kit (96 samples)
AMPure XP beads Beckman Coulter A 63881
Betaine  Sigma-Aldrich 61962
Cell culture grade 96-well plates Thermo Fisher Scientific 260860
Cell culture vacuum pump (VACUSAFE) Integra Bioscience 158300
Deoxynucleotide triphosphates (dNTPs) mix 10 mM each Fermentas R0192
DMSO Sigma-Aldrich 276855
DTT (100 mM) Invitrogen 18064-014
EDTA Sigma-Aldrich 798681 for adherent cells
Ethanol Sigma-Aldrich 51976
Fetal Bovine Serum Thermo Fisher Scientific 26140079
Filter tips (10 µL) Gilson  F171203
Filter tips (100 µL) Gilson  F171403
Filter tips (20 µL) Gilson  F171303
Filter tips (200 µL) Gilson  F171503
Guanidine Hydrochloride Sigma-Aldrich G3272
ISPCR primer (10 µM) Biomers.net GmbH SP10006 5′-AAGCAGTGGTATCAACGCAGAG
T-3′
KAPA HiFi HotStart ReadyMix (2X) KAPA Biosystems KK2601
Magnesium chloride (MgCl2)  Sigma-Aldrich M8266
Magnetic stand 96 Ambion AM10027
Neutralize Tagment (NT) Buffer  Illumina FC-131-1096 Nextera XT DNA Library Prep Kit (96 samples), alternatively 0.2 % SDS
Nextera-compatible indexing primer Illumina
Nuclease-free water Invitrogen 10977049
PBS Thermo Fisher Scientific AM9624
PCR 96-well plates Thermo Fisher Scientific AB0600
PCR plate sealer Thermo Fisher Scientific HSF0031
Penicillin / Streptomycin  Thermo Fisher Scientific 15070063
Qubit 4 fluorometer Invitrogen 15723679
Recombinant RNase inhibitor (40 U/ul) TAKARA 2313A
RPMI-1640 cell culture medium  Gibco 61870036 If not working with PBMCs, adjust to cell type 
SMART dT30VN primer Sigma-Aldrich 5' Bio-AAGCAGTGGTATCAACGCAGAG
TACT30VN-3
Standard lab equipment various various e.g. centrifuge, ice machine, ice bucket, distilled water, water bath
SuperScript II Reverse Transcriptase (SSRT II) Thermo Fisher Scientific 18064-014
SuperScript II Reverse Transcriptase (SSRT II) buffer (5x) Thermo Fisher Scientific 18064-014
Tagment DNA Buffer (TD) Illumina FC-131-1096 Nextera XT DNA Library Prep Kit (96 samples)
TapeStation system 4200 Agilent G2991BA
Thermocycler (S1000) Bio-Rad 1852148
TSO-LNA (100 uM) Eurogentec 5' Biotin AAGCAGTGGTATCAACGCAGAG
TACAT(G)(G){G
Vortex-Genie 2 Mixer Sigma-Aldrich Z258415

Riferimenti

  1. Hughes, J. P., Rees, S., Kalindjian, S. B., Philpott, K. L. Principles of early drug discovery. Br J Pharmacol. 162 (6), 1239-1249 (2011).
  2. Yang, X., et al. High-throughput transcriptome profiling in drug and biomarker discovery. Front Genet. 11, 19 (2020).
  3. Bonaguro, L., et al. A guide to systems-level immunomics. Nat Immunol. 23 (10), 1412-1423 (2022).
  4. Carraro, C., et al. Decoding mechanism of action and sensitivity to drug candidates from integrated transcriptome and chromatin state. ELife. 11, 78012 (2022).
  5. Picelli, S., et al. Smart-seq2 for sensitive full-length transcriptome profiling in single cells. Nat Methods. 10 (11), 1096-1098 (2013).
  6. Picelli, S., et al. Full-length RNA-seq from single cells using Smart-seq2. Nat Protoc. 9 (1), 171-181 (2014).
  7. De Domenico, E., et al. Optimized workflow for single-cell transcriptomics on infectious diseases including COVID-19. STAR Protoc. 1 (3), 100233 (2020).
  8. Dobin, A., et al. ultrafast universal RNA-seq aligner. Bioinformatics. 29 (1), 15-21 (2013).
  9. Patro, R., et al. Salmon provides fast and bias-aware quantification of transcript expression. Nat Methods. 14 (4), 417-419 (2017).
  10. Love, M. I., Huber, W., Anders, S. Moderated estimation of fold change and dispersion for RNA-seq data with DESeq2. Genome Biol. 15 (12), 550 (2014).
  11. Frankish, A., et al. GENCODE reference annotation for the human and mouse genomes. Nucleic Acids Res. 47, D766-D773 (2019).
check_url/it/65930?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Leidner, J., Theis, H., Kraut, M., Ragogna, A., Beyer, M., Schultze, J., Schulte-Schrepping, J., Carraro, C., Bonaguro, L. Cost-Efficient Transcriptomic-Based Drug Screening. J. Vis. Exp. (204), e65930, doi:10.3791/65930 (2024).

View Video