Summary

Etablierung und Charakterisierung von patienteneigenen Magenorganoiden aus Biopsien des gutartigen Magenkörpers und des Antralepithels

Published: January 26, 2024
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Summary

Aus Magenpatienten stammende Organoide finden zunehmend Verwendung in der Forschung, jedoch fehlen formale Protokolle zur Erzeugung menschlicher Magenorganoide aus Einzelzellverdauen mit standardisierter Aussaatdichte. Dieses Protokoll stellt eine detaillierte Methode zur zuverlässigen Herstellung von Magenorganoiden aus Biopsiegewebe dar, das während der oberen Endoskopie gewonnen wurde.

Abstract

Magenpatienten-abgeleitete Organoide (PDOs) bieten ein einzigartiges Werkzeug für die Untersuchung der Magenbiologie und -pathologie. Folglich finden diese g.U. zunehmend Verwendung in einer Vielzahl von Forschungsanwendungen. Es gibt jedoch einen Mangel an veröffentlichten Ansätzen zur Herstellung von Magen-PDOs aus Einzelzellverdauen unter Beibehaltung einer standardisierten anfänglichen Zellaussaatdichte. In diesem Protokoll liegt der Schwerpunkt auf der Initiierung von Magenorganoiden aus isolierten Einzelzellen und der Bereitstellung einer Methode zur Passage von Organoiden durch Fragmentierung. Wichtig ist, dass das Protokoll zeigt, dass ein standardisierter Ansatz für die anfängliche Zellaussaatdichte konsistent Magenorganoide aus gutartigem Biopsiegewebe liefert und eine standardisierte Quantifizierung des Organoidwachstums ermöglicht. Schließlich gibt es Hinweise auf die neue Beobachtung, dass Magen-PDOs unterschiedliche Bildungs- und Wachstumsraten aufweisen, je nachdem, ob die Organoide aus Biopsien des Körpers oder aus Antralregionen des Magens stammen. Insbesondere wird gezeigt, dass die Verwendung von Antralbiopsiegewebe für die Organoidinitiierung zu einer größeren Anzahl von Organoiden und einem schnelleren Wachstum von Organoiden über einen Zeitraum von 20 Tagen im Vergleich zu Organoiden führt, die aus Biopsien des Magenkörpers erzeugt werden. Das hierin beschriebene Protokoll bietet Forschern eine zeitnahe und reproduzierbare Methode zur erfolgreichen Erzeugung und Arbeit mit Magen-PDOs.

Introduction

Organoide sind dreidimensionale (3D) zelluläre Miniaturstrukturen, die der Architektur und Funktionalität der Organe ähneln, von denen sie abgeleitet wurden 1,2. Diese im Labor gezüchteten Modelle werden durch die Kultivierung von Stammzellen oder gewebespezifischen Zellen in einer kontrollierten Umgebung hergestellt, die es diesen Zellen ermöglicht, sich selbst zu organisieren und in verschiedene Zelltypen zu differenzieren 1,2,3. Einer der Hauptvorteile von Organoiden ist ihre Fähigkeit, die menschliche Biologie genauer zu rekapitulieren als herkömmliche zweidimensionale (2D) Zellkulturen 1,2,3. Insbesondere hat sich gezeigt, dass menschliche Organoide die genetische Vielfalt ihres Ursprungsgewebes erhalten 3,4,5. Organoide bieten eine einzigartige Möglichkeit, die Entwicklung menschlicher Organe zu untersuchen, Krankheiten zu modellieren und potenzielle Therapeutika in einer kontrollierten Laborumgebung zu testen. Darüber hinaus können Organoide aus individuellen Patientenproben abgeleitet werden, was Ansätze der personalisierten Medizin und die potenzielle Entwicklung individualisierter Behandlungen ermöglicht 3,6,7.

Forscher haben menschliche Magenorganoide verwendet, um verschiedene Aspekte der Magenbiologie und -pathologie zu untersuchen. Prominente Beispiele sind die Verwendung von patientenabgeleiteten Organoiden (PDOs) zur Vorhersage des Ansprechens auf eine Chemotherapie bei Magenkrebs 8,9,10 und zur Modellierung der epithelialen Reaktion auf eine Helicobacter-pylori-Infektion 11,12,13. Menschliche Magenorganoide bestehen aus verschiedenen Zelltypen, die im Magen vorkommen, darunter Halszellen, Grubenzellen und andere Stützzellen11,14. Magenorganoide können entweder aus induzierten pluripotenten Stammzellen (iPSCs) oder direkt aus Magengewebe isoliert werden, das durch Biopsien gewonnen wurde, oder aus Magenresektionsproben11,14. Die Isolierung von Magenstammzellen aus Magengewebe erfolgt üblicherweise durch Isolierung und Kultivierung von Magendrüsen oder enzymatisch verdauliche Gewebeproben zur Freisetzung einzelner Zellen 9,13,15. Wichtig ist, dass sich die Differenzierung von Zellen innerhalb von Magenorganoiden, die mit einer dieser Techniken erzeugt wurden, als ähnlich erwiesen hat13. Das hier beschriebene Protokoll konzentriert sich auf einen Einzelzellverdau.

Organoide stellen eine wissenschaftliche Innovation dar, die die Lücke zwischen traditioneller Zellkultur und ganzen Organen schließt. Da die Forschung auf diesem Gebiet weiter voranschreitet, sind Organoide bereit, zur Entwicklung wirksamerer Behandlungen und Therapien für eine Vielzahl von Anwendungen beizutragen. Angesichts der zunehmenden Nutzung von Magen-PDOs besteht ein zeitgemäßer Bedarf an einem standardisierten Ansatz für ihre Erzeugung. Hier wird das Protokoll zur Generierung menschlicher Magen-PDOs aus Einzelzellen beschrieben, die aus gutartigem Magenbiopsiegewebe isoliert wurden, das während der oberen Endoskopie gewonnen wurde. Wichtig und einzigartig ist, dass eine standardisierte Anzahl von Einzelzellen für die Aussaat bestimmt wird, um zuverlässig Magen-PDOs zu erzeugen und eine anschließende Charakterisierung zu ermöglichen. Mit dieser Technik werden zuverlässige Unterschiede in der Bildung und dem Wachstum von Organoiden nachgewiesen, die aus Biopsien des Magenkörpers oder des Magenantrums generiert wurden.

Protocol

Sämtliches menschliches Gewebe, das in diesem Protokoll verwendet wurde, wurde von Personen gesammelt, die im Rahmen einer vom University of Pennsylvania Institutional Review Board (IRB #842961) genehmigten Magengewebeentnahmestudie eine informierte Einwilligung zur Gewebeentnahme erteilt hatten. Die Teilnehmer dieser Studie mussten sich im Rahmen ihrer Routineversorgung einer oberen Endoskopie unterziehen, mindestens 18 Jahre alt sein und in der Lage sein, eine informierte Einwilligung zu geben. Alle durchgeführten Un…

Representative Results

Die anschließenden repräsentativen Ergebnisse stammen aus Biopsien, die aus dem gutartigen Epithel des Magenkörpers und der Magenantrumregionen von fünf verschiedenen Patienten entnommen wurden, die sich einer oberen Endoskopie unterzogen. Pro Patient wurden zwei bis vier “Kuppeln”/Wells plattiert und sowohl für Magenkörper- als auch für Antrumbiopsien analysiert. Organoide wurden erfolgreich aus dem Magenkörper und dem Magenantrumbiopsiegewebe von allen fünf Patienten generiert. Im Durchschnitt wurden 41 Organo…

Discussion

Hier wird ein detailliertes Protokoll zur zuverlässigen Erzeugung menschlicher Magenorganoide aus Einzelzellen beschrieben, die aus Biopsien von gutartigem Epithel aus dem Magenkörper und dem Antrum isoliert wurden. Kritische Schritte im Protokoll drehen sich um das Timing sowie den Umgang mit der Basalmembranmatrix. Um die Lebensfähigkeit zu erhalten, ist es wichtig, das Protokoll so schnell wie möglich nach der Entnahme des Biopsiegewebes einzuleiten. Ziel ist es, innerhalb von 30 Minuten nach der Biopsie mit der V…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

University of Pennsylvania Genomic Medicine T32 HG009495 (KHB), NCI R21 CA267949 (BWK), Men & BRCA Program am Basser Center for BRCA (KHB, BWK), DeGregorio Family Foundation Grant Award (BWK).

Materials

0.25% Trypsin-EDTA Gibco 25200-056
A83-01 R&D Systems 2939
Advanced DMEM/F12 Gibco 12634-010
Amphotericin B Invitrogen 15290018
B27 Invitrogen 17504044
BZ-X710 Keyence n/a
cellSens Olympus n/a
Collagenase III Worthington LS004182
Dispase II Sigma D4693-1G
Dithiothreitol (DTT) EMSCO/Fisher BP1725
DPBS Gibco 14200-075
Fungin InvivoGen NC9326704
Gastrin I Sigma Aldrich G9145
Gentamicin Invitrogen 1570060
Glutamax Gibco 35050-061
hEGF Peprotech AF-100-15
HEPES Invitrogen 15630080
hFGF-10 Peprotech 100-26
L-WRN Cell Line ATCC CRL-3276
Matrigel Corning 47743-715
Metronidazole MP Biomedicals 155710
N2 Supplement Invitrogen 17502048
Noggin ELISA Kit Novus Biologicals NBP2-80296
Pen Strep Gibco 15140-122
RPMI 1640 Gibco 11875-085
R-Spondin ELISA Kit R&D Systems DY4120-05
Wnt-3a ELISA Kit R&D Systems DY1324B-05
Y-27632 Sigma Aldrich Y0503

Riferimenti

  1. Drost, J., Clevers, H. Organoids in cancer research. Nature Reviews Cancer. 18 (7), 407-418 (2018).
  2. Corrò, C., Novellasdemunt, L., Li, V. S. A brief history of organoids. American Journal of Physiology-Cell Physiology. 319 (1), C151-C165 (2020).
  3. Zhao, Z., et al. Organoids. Nature Reviews Methods Primers. 2 (1), 94 (2022).
  4. Weeber, F., et al. Preserved genetic diversity in organoids cultured from biopsies of human colorectal cancer metastases. Proceedings of the National Academy of Sciences. 112 (43), 13308-13311 (2015).
  5. Boretto, M., et al. Patient-derived organoids from endometrial disease capture clinical heterogeneity and are amenable to drug screening. Nature Cell Biology. 21 (8), 1041-1051 (2019).
  6. Lo, Y. H., Karlsson, K., Kuo, C. J. Applications of organoids for cancer biology and precision medicine. Nature Cancer. 1 (8), 761-773 (2020).
  7. Grönholm, M., et al. Patient-derived organoids for precision cancer immunotherapy. Cancer research. 81 (12), 3149-3155 (2021).
  8. Yan, H. H., et al. A comprehensive human gastric cancer organoid biobank captures tumor subtype heterogeneity and enables therapeutic screening. Cell Stem Cell. 23 (6), 882-897 (2018).
  9. Yoon, C., et al. Patient-derived organoids from locally advanced gastric adenocarcinomas can predict resistance to neoadjuvant chemotherapy. Journal of Gastrointestinal Surgery. 27 (4), 666-676 (2023).
  10. Miao, X., et al. Establishment of gastric cancer organoid and its application in individualized therapy. Oncology Letters. 24 (6), 1-8 (2022).
  11. Pompaiah, M., Bartfeld, S. Gastric organoids: an emerging model system to study Helicobacter pylori pathogenesis. Molecular Pathogenesis and Signal Transduction by Helicobacter pylori. 400, 149-168 (2017).
  12. Schlaermann, P., et al. A novel human gastric primary cell culture system for modelling Helicobacter pylori infection in vitro. Gut. 65 (2), 202-213 (2016).
  13. Bartfeld, S., et al. In vitro expansion of human gastric epithelial stem cells and their responses to bacterial infection. Gastroenterology. 148 (1), 126-136 (2015).
  14. Seidlitz, T., Koo, B. K., Stange, D. E. Gastric organoids-an in vitro model system for the study of gastric development and road to personalized medicine. Cell Death & Differentiation. 28 (1), 68-83 (2021).
  15. Bartfeld, S., Clevers, H. Organoids as model for infectious diseases: culture of human and murine stomach organoids and microinjection of Helicobacter pylori. Journal of Visualized Experiments. 105, e53359 (2015).
  16. Miyoshi, H., Stappenbeck, T. S. In vitro expansion and genetic modification of gastrointestinal stem cells in spheroid culture. Nature Protocols. 8 (12), 2471-2482 (2013).
  17. Yang, H. J., et al. Sample collection methods in upper gastrointestinal research. Journal of Korean Medical Science. 38 (32), e255 (2023).
  18. Kim, S., et al. Comparison of cell and organoid-level analysis of patient-derived 3D organoids to evaluate tumor cell growth dynamics and drug response. SLAS DISCOVERY: Advancing the Science of Drug Discovery. 25 (7), 744-754 (2020).
  19. Maru, Y., Tanaka, N., Itami, M., Hippo, Y. Efficient use of patient-derived organoids as a preclinical model for gynecologic tumors. Gynecologic Oncology. 154 (1), 189-198 (2019).
  20. McGowan, K. P., Delgado, E., Hibdon, E. S., Samuelson, L. C. Differential sensitivity to Wnt signaling gradients in human gastric organoids derived from corpus and antrum. American Journal of Physiology-Gastrointestinal and Liver Physiology. 325 (2), G158-G173 (2023).
  21. Busslinger, G. A., et al. Human gastrointestinal epithelia of the esophagus, stomach, and duodenum resolved at single-cell resolution. Cell Reports. 34 (10), 108819 (2021).
  22. Yang, R., et al. A quick and reliable image-based AI algorithm for evaluating cellular senescence of gastric organoids. Cancer Biology & Medicine. 20 (7), 519 (2023).
  23. Skubleny, D., et al. Murine and Human gastric tissue establishes organoids after 48 hours of cold ischemia time during shipment. Biomedicines. 11 (1), 151 (2023).
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Citazione di questo articolo
Buckley, K. H., Beyries, K. A., Ryeom, S., Yoon, S. S., Katona, B. W. Establishment and Characterization of Patient-derived Gastric Organoids from Biopsies of Benign Gastric Body and Antral Epithelium. J. Vis. Exp. (203), e66094, doi:10.3791/66094 (2024).

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