Gli organoidi derivati da pazienti gastrici trovano un uso crescente nella ricerca, ma mancano protocolli formali per la generazione di organoidi gastrici umani da digest a singola cellula con densità di semina standardizzata. Questo protocollo presenta un metodo dettagliato per creare in modo affidabile organoidi gastrici da tessuto bioptico ottenuto durante l’endoscopia superiore.
Gli organoidi gastrici derivati da pazienti (PDO) offrono uno strumento unico per lo studio della biologia e della patologia gastrica. Di conseguenza, questi DOP trovano un uso crescente in un’ampia gamma di applicazioni di ricerca. Tuttavia, esiste una carenza di approcci pubblicati per la produzione di PDO gastrici da digest di singole cellule, mantenendo una densità di semina cellulare iniziale standardizzata. In questo protocollo, l’enfasi è posta sull’inizio di organoidi gastrici da singole cellule isolate e sulla fornitura di un metodo per il passaggio di organoidi attraverso la frammentazione. È importante sottolineare che il protocollo dimostra che un approccio standardizzato alla densità iniziale di semina cellulare produce costantemente organoidi gastrici da tessuto bioptico benigno e consente una quantificazione standardizzata della crescita degli organoidi. Infine, l’evidenza supporta la nuova osservazione che i PDO gastrici mostrano tassi variabili di formazione e crescita in base al fatto che gli organoidi provengano da biopsie del corpo o dalle regioni antrali dello stomaco. In particolare, è stato rivelato che l’uso del tessuto della biopsia antrale per l’inizio dell’organoide si traduce in un maggior numero di organoidi formati e in una crescita più rapida degli organoidi in un periodo di 20 giorni rispetto agli organoidi generati dalle biopsie del corpo gastrico. Il protocollo qui descritto offre ai ricercatori un metodo tempestivo e riproducibile per generare e lavorare con successo con i PDO gastrici.
Gli organoidi sono strutture cellulari tridimensionali (3D) in miniatura che assomigliano all’architettura e alla funzionalità degli organi da cui sono stati derivati 1,2. Questi modelli coltivati in laboratorio sono creati coltivando cellule staminali o cellule tessuto-specifiche in un ambiente controllato che consente a queste cellule di auto-organizzarsi e differenziarsi in vari tipi di cellule 1,2,3. Uno dei principali vantaggi degli organoidi è la loro capacità di ricapitolare la biologia umana in modo più accurato rispetto alle tradizionali colture cellulari bidimensionali (2D) 1,2,3. In particolare, è stato dimostrato che gli organoidi umani mantengono la diversità genetica del loro tessuto di origine 3,4,5. Gli organoidi offrono un’opportunità unica per studiare lo sviluppo degli organi umani, modellare le malattie e testare potenziali terapie in un ambiente di laboratorio controllato. Inoltre, gli organoidi possono essere derivati da campioni di singoli pazienti, consentendo approcci di medicina personalizzata e il potenziale sviluppo di trattamenti individualizzati 3,6,7.
I ricercatori hanno utilizzato organoidi gastrici umani per studiare vari aspetti della biologia e della patologia gastrica. Esempi importanti includono l’uso di organoidi derivati da pazienti (PDO) per prevedere le risposte alla chemioterapia del cancro gastrico 8,9,10 e modellare la risposta epiteliale all’infezione da Helicobacter pylori 11,12,13. Gli organoidi gastrici umani sono costituiti da vari tipi di cellule presenti nello stomaco, tra cui cellule del collo, cellule della fossa e altre cellule di supporto11,14. Gli organoidi gastrici possono essere generati da cellule staminali pluripotenti indotte (iPSC) o da cellule staminali direttamente isolate dal tessuto gastrico ottenuto tramite biopsie o da campioni di resezione gastrica11,14. L’isolamento delle cellule staminali gastriche dal tessuto gastrico viene comunemente effettuato isolando e colturando le ghiandole gastriche o digerendo enzimaticamente campioni di tessuto per liberare singole cellule 9,13,15. È importante sottolineare che la differenziazione delle cellule all’interno degli organoidi gastrici generati utilizzando una di queste tecniche ha dimostrato di essere simile13. Il protocollo qui descritto si concentra su un digest a singola cellula.
Gli organoidi rappresentano un’innovazione scientifica che colma il divario tra la coltura cellulare tradizionale e gli organi interi. Man mano che la ricerca in questo campo continua a progredire, gli organoidi sono pronti a contribuire allo sviluppo di trattamenti e terapie più efficaci per un’ampia gamma di applicazioni. Dato il crescente utilizzo di PDO gastriche, c’è una tempestiva necessità di un approccio standardizzato alla loro generazione. Qui viene descritto il protocollo per la generazione di PDO gastrici umane da singole cellule isolate da tessuto bioptico gastrico benigno acquisito durante l’endoscopia superiore. È importante sottolineare che viene determinato un numero standardizzato di singole cellule per la semina per generare in modo affidabile PDO gastrici e consentire la successiva caratterizzazione. Utilizzando questa tecnica, vengono dimostrate differenze affidabili nella formazione e nella crescita degli organoidi generati dalle biopsie del corpo gastrico o dell’antro gastrico.
In questo documento, viene delineato un protocollo dettagliato per generare in modo affidabile organoidi gastrici umani da singole cellule isolate da biopsie di epitelio benigno dal corpo gastrico e dall’antro. Le fasi critiche del protocollo ruotano attorno alla temporizzazione e alla gestione della matrice di membrana basale. Per preservare la vitalità, è essenziale avviare il protocollo il prima possibile dopo l’acquisizione del tessuto bioptico. L’obiettivo è quello di iniziare a digerire il tessuto bioptico entro…
The authors have nothing to disclose.
Università della Pennsylvania Genomic Medicine T32 HG009495 (KHB), NCI R21 CA267949 (BWK), Men & BRCA Program presso il Basser Center for BRCA (KHB, BWK), DeGregorio Family Foundation Grant Award (BWK).
0.25% Trypsin-EDTA | Gibco | 25200-056 | |
A83-01 | R&D Systems | 2939 | |
Advanced DMEM/F12 | Gibco | 12634-010 | |
Amphotericin B | Invitrogen | 15290018 | |
B27 | Invitrogen | 17504044 | |
BZ-X710 | Keyence | n/a | |
cellSens | Olympus | n/a | |
Collagenase III | Worthington | LS004182 | |
Dispase II | Sigma | D4693-1G | |
Dithiothreitol (DTT) | EMSCO/Fisher | BP1725 | |
DPBS | Gibco | 14200-075 | |
Fungin | InvivoGen | NC9326704 | |
Gastrin I | Sigma Aldrich | G9145 | |
Gentamicin | Invitrogen | 1570060 | |
Glutamax | Gibco | 35050-061 | |
hEGF | Peprotech | AF-100-15 | |
HEPES | Invitrogen | 15630080 | |
hFGF-10 | Peprotech | 100-26 | |
L-WRN Cell Line | ATCC | CRL-3276 | |
Matrigel | Corning | 47743-715 | |
Metronidazole | MP Biomedicals | 155710 | |
N2 Supplement | Invitrogen | 17502048 | |
Noggin ELISA Kit | Novus Biologicals | NBP2-80296 | |
Pen Strep | Gibco | 15140-122 | |
RPMI 1640 | Gibco | 11875-085 | |
R-Spondin ELISA Kit | R&D Systems | DY4120-05 | |
Wnt-3a ELISA Kit | R&D Systems | DY1324B-05 | |
Y-27632 | Sigma Aldrich | Y0503 |