Summary

A cellula intera Recordings of Light Evocati eccitatorio Correnti Synaptic nel Slice Retinal

Published: July 02, 2008
doi:

Summary

Questo video mostra il processo di registrazione di tensione a cellula intera pinza nella fetta della retina della tigre salamandra acquatica. Dimostriamo la preparazione della fetta e come effettuare registrazioni di patch clamp durante la stimolazione visiva della retina.

Abstract

Usiamo la cellula intera tecnica di patch clamp per lo studio dei circuiti sinaptici che sottende l'elaborazione delle informazioni visive nella retina. In questo video, vi guiderà attraverso il processo di esecuzione a cellula intera registrazioni di luce correnti evocato delle singole cellule nella preparazione fetta della retina. Usiamo il acquatici tigre salamandra come un modello animale. Cominciamo con la descrizione della dissezione degli occhi e mostrare come le fette sono montati per le registrazioni elettrofisiologiche. Una volta che la fetta si trova nella camera di registrazione, dimostriamo come eseguire a cellula intera registrazioni clamp di tensione. Abbiamo poi progetto stimoli visivi sul fotorecettori nella fetta di suscitare luce evocata attuali risposte. Durante la registrazione abbiamo profumato la fetta con agenti farmacologici, per cui un sistema a 8 canali perfusione ci permette di passare velocemente tra diversi agenti. La preparazione fetta della retina è ampiamente usato per le registrazioni di patch clamp nella retina, in particolare per studiare amacrine e cellule bipolari, che non sono accessibili in un tutto-mount preparazione.

Protocol

Soluzioni Soluzione intracellulare di cellule gangliari (in mm): 100 K-gluconato, 8 KCl, 1 MgCl 2, 1 EGTA, 10 HEPES, 4 ATP, GTP 0,5, 90 mM solforodamina B (per la colorazione), portato a pH = 7,4 con KOH Soluzione intracellulare di cellule bipolari (in mm): 90 K-gluconato, 8 KCl, 1 MgCl 2, 10 Bapta, 10 HEPES, 4 ATP, GTP 0,5, 90 mM solforodamina B (per la colorazione), portato a pH = 7,4 con KOH Ringer extracellulare della soluzione (in mm): 112 NaCl, 5 Glucosio, 5 HEP…

Discussion

Vantaggi:

  1. Tutti i tipi di cellule sono accessibili
  2. Facile identificazione dei tipi di cellule, in particolare se un colorante fluorescente viene aggiunto alla soluzione elettrodo
  3. Agenti farmacologici possono facilmente raggiungere le cellule bersaglio
  4. La tecnica di patch clamp consente di indagare il ruolo dei canali ionici diversi nei calcoli della retina. Le stesse informazioni non possono essere ottenute attraverso le registrazioni extracellulare picco o registrazioni con elett…

Materials

Material Name Tipo Company Catalogue Number Comment
Multiclamp 700A Patch Clamp Amplifier Molecular Devices    
SZX9 Dissection Micropscope Olympus    
BX50WI Upright Microscope Olympus   Equipped with 40x, 10x water immersion objective, fluorescent filters and mercury lamp
P-97 Micropipette Puller Sutter Instruments    
Lucivid Microscope image injector Mbf bioscience    
8-channel perfusion system Microperfusion Parker Hannfin corporation    
Bits++ Digital Video Processor Cambridge Research Systems    
Infrared Oculars Altro ITT    
Adhesive silicone wells Altro Molecular Probes   20mm diameter, 1.0mm deep
Membrane Filters Filter Milipore HAWPO1300 .45µm HA
Borosilicate Glass Capillaries Electrode glass World Precision Instruments 1B150-4  
Syringe Filters Filter Whatman 6789-0402 4mm filters, .2um Nylon Membrane, Polypropylene housing
IR camera Micropscope mounted camera Sony SPT-M324 Extrawave HAD, B7W video camera
Picrotoxin Reagent Sigma P1675  
Strychnine Reagent Sigma S0532  
Imidazole-4-acetic acid sodium salt Reagent Sigma I7013  
Larval tiger salamanders Animal Charles E. Sullivan (Nashville, TN)    

Riferimenti

  1. Cook, P. B., Lukasiewicz, P. D., McReynnolds, J. S. GABA(C) receptors control adaptive changes in a glycinergic inhibitory pathway in salamander retina. Journal of Neuroscience. 20, 806-812 (2000).
  2. Heflin, S. J., Cook, P. B. Narrow and wide field amacrine cells fire action potentials in response to depolarization and light stimulation. Visual Neuroscience. 24, 197-206 (2007).
  3. Ichinose, T., Shields, C. R., Lukasiewicz, P. D. Sodium Channels in the Transient Retinal Bipolar Cells Enhance Visual Responses in Ganglion Cells. J Neurosci.. 25, 1856-1865 (2005).
check_url/it/771?article_type=t

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Citazione di questo articolo
Werner, B., Cook, P. B., Passaglia, C. L. Whole-cell Recordings of Light Evoked Excitatory Synaptic Currents in the Retinal Slice. J. Vis. Exp. (17), e771, doi:10.3791/771 (2008).

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