Summary

De MEFs para Matrigel 2: hESCs Divisão de MEFs para Matrigel

Published: June 09, 2008
doi:

Summary

Este vídeo demonstra como manter o crescimento de células estaminais embrionárias humanas (hESCs) no alimentador livre de células condições e como hESCs contínua passagem de alimentação livre de células condições. Confirmação de CTEh pluripotência cultivadas em alimentador livre de células ao microscópio de imunofluorescência condições também é demonstrada. Parte 2 de 3.

Abstract

Este vídeo demonstra como crescer células estaminais embrionárias humanas (hESCs) em fibroblastos de rato embrionárias (MEF), as células de alimentação, como hESCs passagem de placas MEF para alimentação livre de células placas Matrigel.

Protocol

manutenção CTEh cultura diária meios de cultura CTEh deve ser trocada a cada 24 hrs. Do frasco estoque ES mídia armazenada a 4 ° C, retire a quantidade de solução necessária (~ 20ml por 6 bem-prato), coloque em um tubo falcon 50ml, e aquecido a 37 ° C em banho-maria. Uma vez que a mídia está aquecido, adicione bFGF armazenadas a 4 ° C para uma concentração final de 10ng/ml. Coloque o estoque bFGF volta a 4 ° C imediatamente após o uso! Remover das placas de 6-bem todos, mas ~ 500μl …

Discussion

Este vídeo demonstra como hESCs passagem de placas MEF para as placas de alimentação livre de células Matrigel. Note-se que a densidade de colônia em Matrigel é maior do que a densidade de colônias, dividindo usual em MEFs. Imunofluorescência e citometria de fluxo para microscopia ou marcadores CTEh pluripotência, como Oct-4 e SSEA-4, são necessários para confirmar a manutenção de hESCs em um estado indiferenciado em condições de alimentação livre de cultura.

Acknowledgements

Humana estudos de células-tronco embrionárias no laboratório Teitell são suportados por um Instituto da Califórnia de Medicina Regenerativa (CIRM), as sementes conceder RS1-00313. Agradecemos a membros do Centro de Medicina Regenerativa Broad e Investigação em Células Estaminais na Universidade da Califórnia, especialmente Dr. Amander Clark, Dr. Jerome Zack, e membros do Instituto Broad Stem UCLA Facility núcleo celular para o seu apoio de nossos estudos.

Materials

Material Name Tipo Company Catalogue Number Comment
Knockout Serum Replacer (KSR) Reagent Gibco 10828-028  
DMEM/F12 Reagent Gibco 11330-057  
Non-essential Amino Acids Reagent Gibco 11140-050  
GlutaMax Reagent Gibco 35050-061  
DMEM Reagent Gibco 11995-065  
FBS Reagent Clontech 631107  
L-glutamine Reagent Gibco 25030-081  
BME Reagent Fisher BP176-100  
bFGF Reagent R&D Systems 233-FB-025  
Collagenase IV Reagent Gibco 17104-019  
Dispase Reagent Stem Cell Technologies 17105-041  
Penicillin / Streptomycin Reagent Gibco 15140-122  
Gelatin Reagent Chemicon ES-006-B  
Matrigel Reagent BD Biosciences 354277  
Oct-4 antibody Reagent Santa Cruz Biotechnology SC-9081  
anti-h/mSSEA-4 Phycoerythrin Conjugated Mouse IgG3 Reagent R&D Systems FAB1435P  
FITCI-conjugated antirabbit IgG Reagent Jackson ImmunoResearch Laboratories. Inc. 715-095-152  

Riferimenti

  1. Thomson, J. a. m. e. s. A., Itskovitz-Eldor, J. o. s. e. p. h., Shapiro, S. a. n. d. e. r. S., Waknitz, M. i. c. h. e. l. l. e. A., Swiergiel, J. e. n. n. i. f. e. r. J., Marshall, V. i. v. i. e. n. n. e. S., Jones, J. e. f. f. r. e. y. M. Embryonic Stem Cell Lines Derived from Human Blastocysts . Science. 282, 1145-1147 (1998).
  2. Xu, C. h. u. n. h. u. i., Inokuma, M. a. r. g. a. r. e. t. S., Denham, J. e. r. r. o. d., Golds, K. a. t. h. a. l. e. e. n., Kundu, P. r. a. t. i. m. a., Gold, J. o. s. e. p. h. D., Carpenter, M. e. l. i. s. s. a. K. Feeder-free growth of undifferentiated human embryonic stem cells. Nature Biotechnology. 19, 971-974 (2001).
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Citazione di questo articolo
Khvorostov, I., Zhang, J., Teitell, M. From MEFs to Matrigel 2: Splitting hESCs from MEFs onto Matrigel. J. Vis. Exp. (16), e831, doi:10.3791/831 (2008).

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