Summary

Methylierte DNA Immunpräzipitation

Published: January 02, 2009
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Summary

Dieses Video zeigt das Protokoll für die methylierte DNA Immunpräzipitation (MeDIP). MeDIP ist eine zweitägige Verfahren, die selektiv extrahiert methylierte DNA-Fragmente aus einer genomischen DNA-Probe unter Verwendung von Antikörpern mit Spezifität für 5-Methylcytosin (anti-5 mC).

Abstract

Die Identifizierung von DNA-Methylierungs-Muster ist ein übliches Verfahren in der Studie der Epigenetik, wie Methylierung ist bekannt, dass mit erheblichen Auswirkungen auf die Genexpression haben, und ist mit der normalen Entwicklung sowie Krankheit beteiligt<sup> 1-4</sup>. So ist die Fähigkeit, zwischen methylierter DNA und nicht methylierter DNA zu unterscheiden wesentlichen für die Erzeugung Methylierung Profile für solche Studien. Methylierte DNA Immunpräzipitation (MeDIP) ist eine hocheffiziente Technik zur Gewinnung von methylierter DNA aus einer Probe von Interesse<sup> 5-7</sup>. Eine Probe von weniger als 200 ng der DNA ist ausreichend für den Antikörper oder Immunpräzipitation (IP), Reaktion. DNA in Fragmente mit einer Größe von 300-1000 bp beschallt, und ist in immunpräzipitiert (IP) und Eingang (IN) Abschnitte unterteilt. IP DNA wird anschließend Hitze denaturiert und dann mit anti-5'mC inkubiert, so dass der monoklonale Antikörper an methylierte DNA binden. Danach werden magnetische Kügelchen mit einem sekundären Antikörper mit einer Affinität für den primären Antikörper zugegeben und inkubiert. Diese Wulst-linked Antikörper binden die monoklonalen Antikörper in der ersten Stufe eingesetzt. DNA gebunden an die Antikörper-Komplex (methylierte DNA) wird aus dem Rest der DNA mit Hilfe eines Magneten, um die Komplexe zu ziehen aus der Lösung getrennt. Mehrmaligem Waschen mit IP-Puffer werden dann durchgeführt, um die ungebundenen, nicht-methylierte DNA zu entfernen. Das methylierte DNA / Antikörper-Komplexe werden dann mit Proteinase K verdaut, um die Antikörper so dass nur die methylierte DNA intakt zu verdauen. Die angereicherte DNA wird durch Phenol gereinigt: Chloroform-Extraktion an das Protein Stoffe zu entfernen und dann gefällt und in Wasser resuspendiert für die spätere Verwendung. PCR-Techniken können verwendet werden, um die Effizienz der MeDIP Verfahren durch eine Analyse der Amplifikationsprodukte von IP und IN DNA für Regionen bekannt, Mangel und bekannte methylierte Sequenzen enthalten validieren. Das gereinigte methylierte DNA kann dann für Locus-spezifischen (PCR) oder genomweite (Microarray-und Sequenzierung) Methylierung Studien verwendet werden, und ist besonders nützlich, wenn sie in Verbindung mit anderen Forschungs-Tools wie Genexpressions-Profiling-und Array-vergleichende Genom-Hybridisierung angewendet ( CGH)<sup> 8</sup>. Weitere Untersuchungen in der DNA-Methylierung wird die Entdeckung von neuen epigenetischen Zielen, was wiederum nützlich sein bei der Entwicklung von neuen therapeutischen oder prognostischen Forschungsinstrumente für Krankheiten wie Krebs, die von methylierter DNA charakterisiert werden kann dazu führen,<sup> 2, 4, 9-11</sup>.

Protocol

DNA-Extraktion und Probenvorbereitung DNA aus einer Vielzahl von unterschiedlichen Proben (kultivierten Zellen, Frischplasma sowie Formalin-fixierten Paraffin eingebetteten Gewebe) kann für MeDIP verwendet werden. Es ist wichtig, hochreine DNA ohne assoziierte Proteine ​​wie Histone verwenden. Es ist auch wichtig, so viel wie möglich zu entfernen RNA aus der Probe, wie es mit den beiden DNA-Quantifizierung und Antikörperbindung stören können. Die DNA-Menge für MeDIP verwendet werden …

Discussion

Es gibt ein wachsendes Bewusstsein für die wichtige Rolle der DNA-Methylierung spielt in Krankheit, sind daher die Entwicklung von Assays, um diese Änderung zu messen zunehmend an Bedeutung 3, 12, 13. Die MeDIP Technik ist ein Werkzeug für das Screening zugänglich sowohl den gesamten Genoms und Locus-spezifische Level 6, 7. Diese Technik bietet eine schnelle Ansicht von DNA-Methylierungs-Ebenen mit begrenzten Mengen an Ausgangs-DNA und ermöglicht eine einfache Vergleiche zwischen verschiedenen…

Acknowledgements

Wir wünschen den Mitgliedern des Brown und Lam-Labors für ihre Teilnahme an der kritischen Beurteilung dieses Video und Artikel danken. Diese Arbeit wurde durch Mittel aus der Canadian Institutes for Health Research und Michael Smith Foundation for Health Research unterstützt.

Materials

Material Name Tipo Company Catalogue Number Comment
Biorupter sonicator Tool Diagenode UCD-200 TM  
1.7ml SafeSeal Microcentrifuge Tubes Altro Sorenson BioScience 11510  
ND 3300 Spectrophotometer Tool NanoDrop    
Primary Antibody: Anti-5′-methylcytosine mouse mAb Reagent CalBiochem 162 33 D3  
Secondary Antibody: Dynabeads M-280 Sheep anti-mouse IgG Reagent Invitrogen 112-01D  
Magnetic Tube Rack Tool Invitrogen CS15000  
Mini LabRoller Tool Labnet International H5500  
IP Buffer       10 mM NaPO4 pH 7.0, 140 mM NaCl, 0.05% Triton X-100. Stored at room temperature
Digestion Buffer       10 mM Tris pH8.0, 100 mM EDTA, 0.5% SDS, 50 mM NaCl

Riferimenti

  1. Beck, S., Rakyan, V. K. The methylome: approaches for global DNA methylation profiling. Trends Genet. 24, 231-237 (2008).
  2. Lu, Q., et al. Epigenetics, disease, and therapeutic interventions. Ageing research reviews. 5, 449-467 (2006).
  3. Zilberman, D., Henikoff, S. Genome-wide analysis of DNA methylation patterns. Development. 134, 3959-3965 (2007).
  4. Feinberg, A. P., Tycko, B. The history of cancer epigenetics. Nature reviews. 4, 143-153 (2004).
  5. Weber, M., et al. Distribution, silencing potential and evolutionary impact of promoter DNA methylation in the human genome. Nat Genet. 39, 457-466 (2007).
  6. Weber, M., et al. Chromosome-wide and promoter-specific analyses identify sites of differential DNA methylation in normal and transformed human cells. Nat Genet. 37, 853-862 (2005).
  7. Wilson, I. M., et al. Epigenomics: mapping the methylome. Cell Cycle. 5, 155-158 (2006).
  8. Gazin, C., Wajapeyee, N., Gobeil, S., Virbasius, C. M., Green, M. R. An elaborate pathway required for Ras-mediated epigenetic silencing. Nature. 449, 1073-1077 (2007).
  9. Karpinski, P., Sasiadek, M. M., Blin, N. Aberrant epigenetic patterns in the etiology of gastrointestinal cancers. Journal of applied. 49, 1-10 (2008).
  10. Maekawa, M., Watanabe, Y. Epigenetics: relations to disease and laboratory findings. Current medicinal chemistry. 14, 2642-2653 (2007).
  11. Vucic, E. A., Brown, C. J., Lam, W. L. Epigenetics of cancer progression. Pharmacogenomics. 9, 215-234 (2008).
  12. Egger, G., Liang, G., Aparicio, A., Jones, P. A. Epigenetics in human disease and prospects for epigenetic therapy. Nature. 429, 457-463 (2004).
  13. Jones, P. A., Baylin, S. B. The fundamental role of epigenetic events in cancer. Nat Rev Genet. 3, 415-428 (2002).
  14. Fraga, M. F., Esteller, M. DNA methylation: a profile of methods and applications. Biotechniques. 33, 632-649 (2002).
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Citazione di questo articolo
Thu, K. L., Vucic, E. A., Kennett, J. Y., Heryet, C., Brown, C. J., Lam, W. L., Wilson, I. M. Methylated DNA Immunoprecipitation. J. Vis. Exp. (23), e935, doi:10.3791/935 (2009).

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