Summary

Isolamento e la coltura di cellule post-Natal Neuron cerebellare granuli mouse progenitore e Neuroni

Published: January 16, 2009
doi:

Summary

Qui vi presentiamo un metodo per isolare e cultura dei granuli cerebellari cellule progenitrici dei neuroni e neuroni granuli cerebellari da mouse postnatale.

Abstract

La corteccia cerebellare è una struttura ben descritto che offre opportunità uniche per studiare le proprietà neuronali e 1,2 di sviluppo. Dei tipi neuronali del cervelletto (cellule dei granuli, cellule di Purkinje e interneuroni inibitori), i neuroni dei granuli sono di gran lunga i più numerosi e sono il tipo più abbondante di neuroni nel cervello dei mammiferi. Nei roditori, i neuroni granuli cerebellari sono generati durante i primi due post-natale settimane da cellule progenitrici nello strato più esterno della corteccia cerebellare, lo strato granulare esterno (EGL). Il protocollo presentato qui descrive le tecniche per arricchire e neuroni dei granuli cultura e le loro cellule progenitrici dal post-natale del cervelletto mouse. Si descrivono le procedure per ottenere colture di purezza crescente 3,4, che può essere utilizzato per studiare la differenziazione delle cellule progenitrici proliferano in neuroni dei granuli 5,6. Una volta che le cellule progenitrici differenziare, le culture forniscono anche una popolazione omogenea di neuroni granulari per la manipolazione sperimentale e caratterizzazione di fenomeni come la sinaptogenesi, la funzione dei recettori del glutammato 7, l'interazione con altre cellule purificate cerebellari 8,9 o morte cellulare 7.

Protocol

Parte 1: Impostazione (1-2 giorni prima della dissezione) (Non mostrato in video) PREPARAZIONE SOLUZIONI CULTURA E MEDIA: 4X CMF-PBS-EDTA (calcio e magnesio libero-tampone fosfato-EDTA per diluizioni Percoll): litro, aggiungere 32 g di NaCl, 1,2 g di KCl, 8 g di glucosio, 2 g di NaH 2 PO 4, 1 g di KH 2 PO 4, 8 ml al 2% NaHCO stock 3, 10 ml EDTA 1M (pH 8,0) a distillata / deionizzata. Regolare il volume di 1 litro e il pH a 7,4. Filtro sterilizzare…

Discussion

Questo protocollo si basa su modificazioni delle procedure che sono state descritte in passato 3,7,11. Ci sono diversi punti importanti da notare come descritto di seguito.

I neuroni e le cellule progenitrici dei granuli aderire entro 2 ore dalla placcatura. Le cellule sane hanno una morfologia rotonda sotto il contrasto di fase 4 microscopio. Entro 24 ore dopo la placcatura, le cellule sane si diffonderà in modo uniforme in tutto il coprioggetto o il pozzo di plastica e formeranno processi. Al momento del cam…

Acknowledgements

Ringraziamo Barbara Carletti e Anna Marie Kenney per i preziosi suggerimenti. HYL è sostenuta dalla borsa di formazione "Gli ormoni: Biochimica e Biologia Molecolare", DK07328. Sostenuto in parte dal NIH concedere 5R01 NS16951 (CAM).

Materials

Material Name Tipo Company Catalogue Number Comment
Cell strainer with 70μm mesh pore   BD Biosciences 352350  
Spinal Needle   BD 405182 20G x 3-1/2 inches
Poly-D-Lysine mol wt>300,000   Sigma P1024 Each new batch of Poly-D-Lysine must be tested.
Percoll   Sigma P-1644  
Penicillin-Streptomycin (100X)   Sigma P4333  
HBSS   Invitrogen 14175-103 Must be calcium and magnesium free.
Neurobasal A-Medium   Invitrogen 10888-022  
Glutamax I supplement   Invitrogen 35050-061  
B-27 Serum Free Supplement (50x)   Invitrogen 17504-044  
12-mm circle coverslips   Carolina Biological Supply 63-3029 These are made in Germany by Deckgluder.
25-mm circle coverslips   Carolina Biological Supply 63-3037 These are made in Germany by Deckgluder.
Papain Dissociation System   Worthington Biochemical Corporation LK 003150 Kit is good for five isolations.
Permaset scissors   Roboz RS6782  
Dumont #5 (Dumostar)   Roboz RS4978  
4-well culture dish   Nunc 176740  
6-well culture dish   Nunc 140685  

Riferimenti

  1. Altman, J., Bayer, S. A. . Development of the cerebellar system: in relation to its evolution, structure, and functions. , (1997).
  2. Hatten, M. E., Heintz, N. . Annual Review of Neuroscience. 18, 385-285 (1995).
  3. Hatten, M. E., Gao, W. -. Q., Morrison, M. E., Banker, G., Goslin, K. . in Culturing Nerve Cells. , 419-419 (1998).
  4. Hatten, M. E. . The Journal of Cell Biology. 100 (2), 384-384 (1985).
  5. Carletti, B., Rossi, F. . Neuroscientist. 14 (1), 91-91 (2008).
  6. Knoepfler, P. S., Kenney, A. M. . Cell Cycle. 5 (1), 47-47 (2006).
  7. Manzini, M. C., Joseph, D. J., MacDermott, A. B. . Molecular and Cellular Neuroscience. 35 (2), 328-328 (2007).
  8. Manzini, M. C., Ward, M. S., Zhang, Q. . Journal of Neuroscience. 26 (22), 6040-6040 (2006).
  9. Baptista, C. A., Hatten, M. E., Blazeski, R. . Neuron. 12 (2), 243-243 (1994).
  10. Palay, S. L., Chan-Palay, V. . Cerebellar Cortex: Cytology and Organization. , (1974).
  11. Messer, A. . Brain Research. 130 (1), 1-1 (1977).
  12. Ruiz I Altaba, A. . Development. 126, 3205-3205 (1999).
  13. Wallace, V. A. . Current Biology. 9 (8), 445-445 (1999).
  14. Wechsler-Reya, R. J., Scott, M. P. . Neuron. 22 (1), 103-103 (1999).
  15. Solecki, D. J., Liu, X. L., Tomoda, T. . Neuron. 31 (4), 557-557 (2001).
  16. Powell, S. K., Williams, C. C., Nomizu, M. . Journal of Neuroscience Research. 54 (2), 233-233 (1998).
  17. Lander, A. D., Fujii, D. K., Reichardt, L. F. . Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 82 (7), 2183-2183 (1985).
  18. Kenney, A. M., Rowitch, D. H. . Molecular and Cellular Biology. 20 (23), 9055-9055 (2000).
  19. Kenney, A. M., Cole, M. D., Rowitch, D. H. . Development. 130 (1), 15-15 (2003).
  20. Pons, S., Trejo, J. L., Martinez-Morales, J. R. . Development. 128, 1481-1481 (2001).
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Citazione di questo articolo
Lee, H. Y., Greene, L. A., Mason, C. A., Manzini, M. C. Isolation and Culture of Post-Natal Mouse Cerebellar Granule Neuron Progenitor Cells and Neurons . J. Vis. Exp. (23), e990, doi:10.3791/990 (2009).

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