Summary

Выделение и культуры послеродовой мыши мозжечка гранул клеток-предшественников нейронов и нейронов

Published: January 16, 2009
doi:

Summary

Здесь мы представляем метод, чтобы изолировать и культуры мозжечка гранул нейронных клеток-предшественников нейронов мозжечка и гранулы из послеродового мыши.

Abstract

Коре мозжечка является хорошо описывается структура, которая предоставляет уникальные возможности для изучения свойств нейронов и развитие 1,2. Из мозжечка нейронов типов (зернистых клеток, клеток Пуркинье и тормозные интернейроны), гранулы нейроны являются на сегодняшний день самая многочисленная и наиболее распространенный тип нейронов в мозге млекопитающих. У грызунов, мозжечковые нейроны гранулы образуются в течение первых двух послеродовых недель из клеток-предшественников в наружный слой коры мозжечка, внешний слой гранул (EGL). Протокол, представленные здесь описываются методы обогащения и нейронов культуры гранул и их клеток-предшественников из послеродовой мыши мозжечка. Мы опишем процедуры получения культур повышения чистоты 3,4, которые могут быть использованы для изучения дифференциации пролиферирующих клеток-предшественников нейронов в гранулы 5,6. Как только клетки-предшественники дифференцировать, культур также обеспечить однородное население гранул нейронов для экспериментальных манипуляций и характеристику таких явлений, как синаптогенез, глутамат функции рецептора 7, взаимодействие с другими очищенные клетки мозжечка 8,9 или гибель клеток 7.

Protocol

Часть 1: Настройка (1-2 дней до вскрытия) (не показано на видео) ПОДГОТОВКА КУЛЬТУРА РЕШЕНИЯ И СМИ: 4X CMF-PBS-ЭДТА (кальция и магния свободной фосфатным буферным физиологическим раствором ЭДТА для разведения Перколла): на литр, добавьте 32 г хлористого натрия, 1,2 г хлорида калия, 8 г сах?…

Discussion

Этот протокол основан на модификации процедуры, которые были описаны в прошлом 3,7,11. Есть несколько важных моментов, как описано ниже.

Гранулы нейронов и клеток-предшественников, придерживаются в течение 2 часов обшивки. Здоровые клетки имеют морфологию круглые под фазово-контрастным ми…

Acknowledgements

Мы благодарим Барбара Carletti и Анна Мари Кенни за неоценимую предложения. HYL поддерживается Обучение Грант "Гормоны: биохимии и молекулярной биологии", DK07328. При частичной поддержке гранта NIH 5R01 NS16951 (CAM).

Materials

Material Name Tipo Company Catalogue Number Comment
Cell strainer with 70μm mesh pore   BD Biosciences 352350  
Spinal Needle   BD 405182 20G x 3-1/2 inches
Poly-D-Lysine mol wt>300,000   Sigma P1024 Each new batch of Poly-D-Lysine must be tested.
Percoll   Sigma P-1644  
Penicillin-Streptomycin (100X)   Sigma P4333  
HBSS   Invitrogen 14175-103 Must be calcium and magnesium free.
Neurobasal A-Medium   Invitrogen 10888-022  
Glutamax I supplement   Invitrogen 35050-061  
B-27 Serum Free Supplement (50x)   Invitrogen 17504-044  
12-mm circle coverslips   Carolina Biological Supply 63-3029 These are made in Germany by Deckgluder.
25-mm circle coverslips   Carolina Biological Supply 63-3037 These are made in Germany by Deckgluder.
Papain Dissociation System   Worthington Biochemical Corporation LK 003150 Kit is good for five isolations.
Permaset scissors   Roboz RS6782  
Dumont #5 (Dumostar)   Roboz RS4978  
4-well culture dish   Nunc 176740  
6-well culture dish   Nunc 140685  

Riferimenti

  1. Altman, J., Bayer, S. A. . Development of the cerebellar system: in relation to its evolution, structure, and functions. , (1997).
  2. Hatten, M. E., Heintz, N. . Annual Review of Neuroscience. 18, 385-285 (1995).
  3. Hatten, M. E., Gao, W. -. Q., Morrison, M. E., Banker, G., Goslin, K. . in Culturing Nerve Cells. , 419-419 (1998).
  4. Hatten, M. E. . The Journal of Cell Biology. 100 (2), 384-384 (1985).
  5. Carletti, B., Rossi, F. . Neuroscientist. 14 (1), 91-91 (2008).
  6. Knoepfler, P. S., Kenney, A. M. . Cell Cycle. 5 (1), 47-47 (2006).
  7. Manzini, M. C., Joseph, D. J., MacDermott, A. B. . Molecular and Cellular Neuroscience. 35 (2), 328-328 (2007).
  8. Manzini, M. C., Ward, M. S., Zhang, Q. . Journal of Neuroscience. 26 (22), 6040-6040 (2006).
  9. Baptista, C. A., Hatten, M. E., Blazeski, R. . Neuron. 12 (2), 243-243 (1994).
  10. Palay, S. L., Chan-Palay, V. . Cerebellar Cortex: Cytology and Organization. , (1974).
  11. Messer, A. . Brain Research. 130 (1), 1-1 (1977).
  12. Ruiz I Altaba, A. . Development. 126, 3205-3205 (1999).
  13. Wallace, V. A. . Current Biology. 9 (8), 445-445 (1999).
  14. Wechsler-Reya, R. J., Scott, M. P. . Neuron. 22 (1), 103-103 (1999).
  15. Solecki, D. J., Liu, X. L., Tomoda, T. . Neuron. 31 (4), 557-557 (2001).
  16. Powell, S. K., Williams, C. C., Nomizu, M. . Journal of Neuroscience Research. 54 (2), 233-233 (1998).
  17. Lander, A. D., Fujii, D. K., Reichardt, L. F. . Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 82 (7), 2183-2183 (1985).
  18. Kenney, A. M., Rowitch, D. H. . Molecular and Cellular Biology. 20 (23), 9055-9055 (2000).
  19. Kenney, A. M., Cole, M. D., Rowitch, D. H. . Development. 130 (1), 15-15 (2003).
  20. Pons, S., Trejo, J. L., Martinez-Morales, J. R. . Development. 128, 1481-1481 (2001).

Play Video

Citazione di questo articolo
Lee, H. Y., Greene, L. A., Mason, C. A., Manzini, M. C. Isolation and Culture of Post-Natal Mouse Cerebellar Granule Neuron Progenitor Cells and Neurons . J. Vis. Exp. (23), e990, doi:10.3791/990 (2009).

View Video