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Inizia con mosche adulte di Drosophila melanogaster iniettate con E. coli. Nei momenti desiderati dopo l'iniezione, trasferire i moscerini anestetizzati in provette da microcentrifuga separate su ghiaccio, riducendo la loro attività metabolica.
Aggiungere un tampone e omogeneizzare i moscerini, rompendo il tessuto, rilasciando E. coli e microbiota intestinale endogeno.
Trasferire ciascun omogeneizzato di mosca contenente E. coli in pozzetti a piastre a più pozzetti. Riempire i pozzetti rimanenti con il tampone. Eseguire la diluizione seriale dell'omogenato contenente E. coli.
Depositare la sospensione omogenata diluita da ciascun pozzetto in punti discreti su una piastra di agar nutriente, iniziando dalla diluizione più bassa. Lascia che le macchie si assorbano nell'agar. Incubare la piastra durante la notte per consentire la moltiplicazione di E. coli, formando colonie visibili. La durata dell'incubazione è fondamentale per prevenire la formazione di colonie di microbiota intestinale endogeno della mosca.
Contare le colonie di E. coli per ogni mosca dalle diluizioni con colonie numerabili non sovrapposte. Calcolare l'unità formante colonia - la carica batterica vitale - nell'omogeneizzato iniziale in diversi momenti dopo l'iniezione.
La diminuzione del carico di E. coli nel tempo suggerisce l'eliminazione batterica da parte del sistema immunitario della mosca.
Posizionare un sottoinsieme di mosche infette in singole provette da microcentrifuga su ghiaccio. Aggiungi 250 microlitri di PBS a ciascun tubo e usa un pestello per omogeneizzare le mosche. Quindi, impiattare l'omogeneizzato su una piastra di agar LB utilizzando un piatto a spirale.
In alternativa, per placcare l'omogenato mediante diluizione seriale, trasferire ciascun omogeneizzato di mosca nella prima fila di una piastra da 96 pozzetti e riempire ogni pozzetto delle file rimanenti con 90 microlitri di PBS. Utilizzando una pipetta multicanale, prelevare 10 microlitri dalla prima fila contenente omogeneizzato di mosca e dosare l'omogeneizzato nella seconda fila.
Pipettare su e giù almeno 10 volte per mescolare accuratamente l'omogeneizzato, quindi prelevare 10 microlitri di omogeneizzato e trasferirlo nella fila successiva. Ripetere questa procedura utilizzando le righe rimanenti. Partendo dalla fila inferiore, utilizzare la pipetta multicanale per prelevare 10 microlitri da ogni pozzetto e depositarli su una piastra LB.
Assicurarsi che i campioni vengano erogati come punti discreti che non si tocchino tra loro. Ripetere questo passaggio fino a quando tutti i pozzetti sono stati campionati da ogni fila, erogandoli in ordine decrescente di diluizione sulla piastra LB. Qualunque sia il metodo di placcatura utilizzato, fare attenzione a non far crescere eccessivamente le piastre in modo che le colonie rimangano piccole e discrete.
Rimuovere la piastra dall'incubatrice una volta che i batteri sperimentali hanno sviluppato colonie visibili, ma prima che le colonie del microbiota intestinale di Drosophila diventino visibili circa 24 ore dopo.
Per le piastre a spirale, contare le colonie che crescono utilizzando un contatore di colonie automatizzato in grado di stimare la carica batterica per millilitro di omogeneizzato, in base al numero e alla posizione delle colonie sulla piastra.
Per le piastre spot, contare manualmente le colonie per ogni mosca da qualsiasi diluizione contenga da 30 a 300 colonie e calcolare il numero di batteri per millilitro di omogeneizzato originale.