Name: Neurogenèse à laide de cellules de carcinome embryonnaire P19 (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-04-27T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 46 s
Description: Découvrez une méthode simplifiée de neurogenèse induite par l'acide rétinoïque dans les cellules P19 de carcinome embryonnaire murin. Ce protocole facilite la différenciation neuronale pour les études en neurosciences.

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L'étude a été soutenue financièrement par le Centre national des sciences, Pologne (accord no. UMO-2017/25/N/NZ3/01886) et KNOW (Leading National Research Centre) Consortium scientifique "Healthy Animal - Safe Food", décision du ministère des Sciences et de l'Enseignement supérieur No 05-1/KNOW2/2015

1. Entretien de la culture
<ol><li>Culture de la lignée cellulaire P19 dans le milieu d'entretien (le milieu modifié d'aigle de Dulbecco avec 4 500 mg/L de glucose complété par 10 % de FBS, 100 unités/mL de pénicilline et 100 unités/mL de streptomycine). Incuber à 37 oCet 5 % de CO 2.</li>
</ol>2. Cellules de sous-culture
<ol><li>Lorsque les cellules atteignent environ 80 % de confluence, retirez le milieu usé des flacons de culture cellulaire (surface de 25 cm2).</li>
	<li>Laver les cellules avec 2 ml de phosphate tamponné salin (PBS) exempt de calcium et de magnésium.</li>
	<li>Ajouter 1 ml de trypsine-EDTA (acide éthylènediaminetetraacetic) sur la monocouche cellulaire.</li>
	<li>Mettre le flacon dans l'incubateur co2 (37 oC et 5 % de CO2) pendant 2 à 3 min.</li>
	<li>Évaluer l'attachement de la cellule à la surface du flacon. Assurez-vous que toutes les cellules sont détachées et flottantes dans le milieu.</li>
	<li>Ajouter 9 ml de support d'entretien pour arrêter l'activité enzymatique de la trypsine.</li>
	<li>Resuspendre les cellules dans le milieu d'entretien.</li>
	<li>Transférer les cellules dans un tube et une centrifugeuse de 15 ml pendant 5 min à 200 x g et à température ambiante (RT).</li>
	<li>Jeter le supernatant et ajouter 10 ml de milieu d'entretien frais dans le tube de 15 ml.</li>
	<li>Utilisez la suspension cellulaire pour déterminer le numéro de cellule à l'aide d'un compteur cellulaire selon les instructions du fabricant.</li>
	<li>Cellules de semence à 2 x 104 cellules/cm2 dans un nouveau flacon de 25 cm2. </li>
	<li>Ajouter le milieu d'entretien jusqu'à 10 ml.</li>
	<li>Mettre le flacon avec des cellules dans l'incubateur de CO2 (37 oC et 5 % de CO2)pendant 2 à 3 jours.</li>
</ol>3. Digestion de trypsine
<ol><li>Aspirer Le milieu d'entretien du flacon cellulaire. Laver les cellules une fois avec 2 ml de calcium et de PBS sans magnésium.</li>
	<li>Ajouter 1 ml de 0,25 % trypsine-EDTA.</li>
	<li>Mettre le flacon avec les cellules dans l'incubateur de CO2 à 37 oC pendant 2-3 min.</li>
	<li>Utilisez une pipette de 1 ml pour dissocier les cellules en tapotaleurs dix fois.</li>
	<li>Neutraliser la trypsine en ajoutant 9 mL de moyen de différenciation (le milieu modifié de l'aigle de Dulbecco avec 4500 mg/L de glucose complété avec 5% de FBS, 100 unités/mL de pénicilline et 100 unités/mL de streptomycine) sans POLY aux cellules.</li>
	<li>Transférer les cellules dans un tube de 15 ml et une centrifugeuse pendant 5 min à 200 x g et RT.</li>
	<li>Jeter le supernatant et ajouter 1 ml de différenciation moyenne sans acide rétinoïque (RA). Resuspendre la pastille cellulaire.</li>
	<li>Utilisez la suspension cellulaire pour déterminer le numéro de cellule à l'aide d'un compteur cellulaire selon les instructions du fabricant.</li>
</ol>4. Génération agrégée
<ol><li>Ajouter 5 ll de RA (1 mM de bouillon dissous dans 99,8 % d'éthanol, stocké à -20 oC) aux 10 ml de différenciation moyenne et bien mélanger (concentration finale de 0,5 M RA). REMARQUE: La PR est sensible à la lumière. La faible concentration d'EtOH n'affecte pas la différenciation cellulaire19,20,21.</li>
	<li>Ajouter 10 ml de différenciation moyenne (avec RA) au plat de culture non traité de 100 mm (dédié à la culture de suspension).</li>
	<li>Ensemencez les 1 x 106 cellules dans le plat de 100 mm (surface de plat 56,5 cm2).</li>
	<li>Mettre le flacon avec des cellules dans l'incubateur à 37 oC et 5 % de CO2 pendant 2 jours afin de favoriser la formation d'agrégats.</li>
	<li>Après 2 jours, échangez le Moyen de Différenciation. Aspirer le milieu contenant des agrégats à l'aide d'une pipette de 10 ml et le transférer dans un tube de 15 ml à RT.</li>
	<li>Laisser les agrégats se déposer par gravité pendant 1,5 min à RT.</li>
	<li>Jetez le supernatant.</li>
	<li>Ajouter un nouveau 10 ml de moyen de différenciation avec 0,5 M RA à l'aide d'une pipette sérologique de 10 ml. MISE EN GARDE: Ne pas pipette la cellule agrégats de haut en bas.</li>
	<li>Ensemencer les agrégats dans un nouveau plat de culture non traité de 100 mm (dédié à la culture de suspension).</li>
	<li>Placer la plaque dans l'incubateur (à 37 oC et 5 % de CO2)pendant 2 jours.</li>
</ol>5. Agrégate la dissociation
<ol><li>Aspirer les agrégats cellulaires à l'aide d'une pipette de 10 ml.</li>
	<li>Transférer les agrégats dans un tube de 15 ml. Laisser les agrégats cellulaires se déposer par gravité pendant 1,5 min.</li>
	<li>Retirez le supernatant.</li>
	<li>Laver les agrégats avec le DMEM seul (sans sérum et antibiotique).</li>
	<li>Laisser les agrégats cellulaires se déposer par sédimentation gravitationnelle pendant 1,5 min à RT.</li>
	<li>Aspirez le supernatant et ajoutez 2 mL de trypsin-EDTA (0,25%).</li>
	<li>Placer les agrégats cellulaires dans un bain d'eau (37 oC) pendant 10 min. Agiter délicatement les agrégats toutes les 2 min en tapant avec une main.</li>
	<li>Arrêtez le processus de trypsinisation en ajoutant 4 ml de support d'entretien.</li>
	<li>Pipette agrége 20 fois à l'aide d'une pipette de 1 ml.</li>
	<li>Cellules centrifugeuses pendant 5 min à 200 x g et RT.</li>
	<li>Retirez le supernatant et suspendez à nouveau la pastille cellulaire en 5 ml de milieu d'entretien.</li>
	<li>Déterminez le numéro de cellule avec un compteur cellulaire.</li>
</ol>6. Cellules de placage
<ol><li>Ajouter 3 ml par puits de milieu d'entretien à une assiette de 6 puits.</li>
	<li>Cellules de graines dans la plaque de culture de 6 puits à une densité de 0,5 x 106/bien.</li>
	<li>Incuber à 37 oC avec une concentration de CO2 de 5 %.</li>
	<li>Ensemencer les cellules sur le verre de couverture dans 6 plaques de culture de puits et effectuer immunostaining avec anti-MAP2 anticorps (20% confluence). Utilisez la plaque 6-bien pour isoler l'ARN et effectuer RT-PCR pour Map2, NeuN, Oct4, Nanog, et Gapdh (20% confluence).</li>
</ol>

<ol><li>Ramkumar, N., Anderson, K. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((SnapShot%3A+mouse+primitive+streak%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">SnapShot: mouse primitive streak.</a> Cell. 146 (3), 488(2011).</li>
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<li>Tsukane, M., Yamauchi, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ca2%2B%2Fcalmodulin-dependent+protein+kinase+II+mediates+apoptosis+of+P19+cells+expressing+human+tau+during+neural+differentiation+with+retinoic+acid+treatment%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Enzyme+Inhibition+and+Medicinal+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Ca2+/calmodulin-dependent protein kinase II mediates apoptosis of P19 cells expressing human tau during neural differentiation with retinoic acid treatment.</a> Journal of Enzyme Inhibition and Medicinal Chemistry. 24 (2), 365-371 (2009).</li>
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</ol>

Les auteurs n'ont rien à révéler.

Ici, nous décrivons un protocole simple pour la neurogenèse utilisant la ligne cellulaire de P19. Bien que de nombreux rapports aient été publiés à cet égard, une méthodologie détaillée pour l'induction de neurogenèse utilisant la lignée cellulaire De P19 demeure peu claire. En outre, nous avons utilisé un simple high glucose (4,500 mg/L) milieu DMEM avec 10% FBS pour l'ensemble de l'expérience. Cela nous a permis d'effectuer l'expérience neurogène d'une manière conviviale et d'élargir l'utilisation de cette méthode pour...

Pendant le développement embryonnaire, une seule couche cellulaire est transformée en trois couches germinales distinctes1,2,3. Pour augmenter les possibilités de recherche des phénomènes se produisant in vivo, la génération d'agrégats tridimensionnels (corps embryonnaires) a été développée comme modèle pratique. Les agrégats cellulaires formés de cette façon peuvent être exposés à diverses conditions causant la différenciation cellulaire, qui reflètent le développement de l'embryon4,5. La lignée cellulaire embryonnaire de carcinome murine P19 (lignée cellulaire P19) est couramment utilisée comme modèle cellulaire pour les études de neurogenèse in vitro6,7,8. La lignée cellulaire P19 présente des caractéristiques typiques des cellules souches pluripotentes et peut se différencier en neurones en présence d'acide rétinoïque (RA) lors de l'agrégation cellulaire suivie d'une excroissance neurite dans des conditions adhérentes. En outre, la lignée cellulaire Indifférenciée P19 est également capable de former des cellules musculaires et cardiomyocytes sous l'influence du sulfoxyde de diméthyle (DMSO)9,10,11,12.
Beaucoup de méthodes13,14,15,16 ont été signalées pour la différenciation neuronale, mais la méthodologie est parfois compliquée et pas facile à saisir en lisant seulement les descriptions. Par exemple, les protocoles exigent parfois une combinaison du milieu moyen d'aigle modifié (DMEM) de Dulbecco complété par un mélange de sérum de veau (CS) et de sérum bovin foetal (FBS)13. En outre, les médias utilisés pour le développement neuronal sont souvent composés de neurobasal et B27 suppléments13,14,15,16. En tant que tel, les méthodes existantes contiennent de la complexité dans leur préparation et notre objectif ici est de simplifier les protocoles. Dans cette étude, nous avons démontré que dMEM avec FBS peut être utilisé pour maintenir la lignée cellulaire P19 (DMEM - 10% FBS) ainsi que pour le développement neuronal (DMEM - 5% FBS - RA). Cette méthode simplifiée pour la neurogenèse utilisant la lignée cellulaire P19 nous permet d'étudier le mécanisme moléculaire de la façon dont les neurones sont développés. En outre, la recherche sur les maladies neurodégénératives telles que la maladie d'Alzheimer est également menée en utilisant la lignée cellulaire P1917,18, et nous croyons que la méthode développée dans cette étude jouera un rôle dans l'élucidation de la mécanismes moléculaires dans les anomalies neurodéveloppementales et les maladies neurodégénératives.

<table><tbody><tr><td>6x Colorant de chargement d’ADN</td><td>EURx</td><td>E0260-01</td><td></td></tr><tr><td>Agarose</td><td>Sigma- Aldrich</td><td>A9539</td><td></td></tr><tr><td>Kit de synthèse d’ADNc</td><td>EURx</td><td>E0801-02</td><td></td></tr><tr><td>DAPI (4&prime ;,6-Diamidine-2&prime ;-dichlorhydrate de phénylindole)</td><td>Sigma- Aldrich</td><td>10236276001</td><td>Concentration de travail : 1 &mu ; g/mL</td></tr><tr><td>de DMEM à haute teneur en glucose (4,5 g/L) avec L-glutamine</td><td>Lonza</td><td>BE12-604Q</td><td></td></tr><tr><td>Éthanol 99,8 %</td><td>Chempur</td><td>CHEM*613964202</td><td></td></tr><tr><td>Sérum fœtal de veau (FBS)</td><td>EURx</td><td>E5050-03</td><td></td></tr><tr><td>Anticorps MAP2</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>PA517646</td><td>Dilution 1:100</td></tr><tr><td>Kit de réaction</td><td>PCR EURx</td><td>E0411-03</td><td></td></tr><tr><td>Pénicilline/Streptomycine 10K/10K</td><td>Lonza</td><td>DE17-602E</td><td></td></tr><tr><td>Saline tamponnée au phosphate (PBS), 1x concentré sans Ca2+, Mg2+</td><td>Lonza</td><td>BE17- 517Q</td><td></td></tr><tr><td>Acide rétinoïque</td><td>Sigma- Aldrich</td><td>R2625-50MG</td><td>²nbsp ; dissous dans de l’éthanol à 99,8 %; Stocker à -20 &deg ; C jusqu’à 6 mois</td></tr><tr><td>Anticorps secondaire (Alexa Fluor 488)</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>A11034</td><td>Dilution 1:500</td></tr><tr><td>Lait écrémé</td><td>Sigma- Aldrich</td><td>1153630500</td><td></td></tr><tr><td>TBE</td><td>Buffer Thermo Fisher Scientific</td><td>B52</td><td></td></tr><tr><td>Triton-X 100</td><td>Sigma- Aldrich</td><td>T8787-100ML</td><td></td></tr><tr><td>Trypsine 0,25 % - EDTA dans HBSS, sans&nbsp ; Ca2+, Mg2+, avec biosérum rouge de phénol</td><td></td><td>LM-T1720/500</td><td></td></tr><tr>Plastiques <td></td><td></td><td></td><td>de culture cellulaire</td></tr><tr><td>1 mL Pipettes sérologiques</td><td>Profilab</td><td>515.01</td><td></td></tr><tr><td>10 mL Pipettes sérologiques</td><td>Profilab</td><td>515.10</td><td></td></tr><tr><td>Boîte de 100 mm dédiée à la culture en suspension</td><td>Corning</td><td>C351029</td><td></td></tr><tr><td>Tubes à centrifuger de 15 mL</td><td>Sigma- Aldrich</td><td>CLS430791-500EA</td><td></td></tr><tr><td>Pipettes sérologiques de 5 mL</td><td>Profilab</td><td>515.05</td><td></td></tr><tr><td>Plaque 6 puits</td><td>Corning</td><td>CLS3516</td><td></td></tr><tr><td>Fioles de culture cellulaire, surface 25 cm2</td><td>Sigma- Aldrich</td><td>CLS430639-200EA</td><td></td></tr></tbody></table>

neurogenèse à l'aide de cellules de carcinome embryonnaire p19

Neurogenesis Using P19 Embryonal Carcinoma Cells

La lignée cellulaire P19 dérivée d'un tératocarcinome dérivé de l'embryon de souris a la capacité de se différencier en trois couches germinales. En présence d'acide rétinoïque (RA), la lignée cellulaire P19 cultivée en suspension est induite pour se différencier en neurones. Ce phénomène est largement étudié comme un modèle de neurogenèse in vitro. Par conséquent, la lignée cellulaire P19 est très utile pour les études moléculaires et cellulaires associées à la neurogenèse. Cependant, les protocoles pour la différenciation neuronale de la lignée cellulaire P19 décrite dans la littérature sont très complexes. La méthode développée dans cette étude est simple et jouera un rôle dans l'élucidation des mécanismes moléculaires dans les anomalies neurodéveloppementales et les maladies neurodégénératives.

Le schéma simplifié de protocole pour l'induction de neurogenèse dans la lignée cellulaire P19 est présenté dans la figure 1. Afin de définir le caractère de la lignée cellulaire P19 dans un état indifférencié et pendant la neurogenèse, la méthode RT-PCR (réaction en chaîne de transcription-polymériase inversée) a été utilisée. La lignée cellulaire Indifférenciée P19 exprimait les gènes de la pluripotence tels que le transporteur de cation/carnitine organique...

La lignée cellulaire embryonnaire de carcinome de souris P19 (ligne cellulaire P19) est largement utilisée pour étudier le mécanisme moléculaire de la neurogenèse avec une grande simplification par rapport à l'analyse in vivo. Ici, nous présentons un protocole pour la neurogenèse acide-induite rétinoïque dans la ligne de cellules de P19.

Neurogenèse à l'aide de cellules de carcinome embryonnaire P19

The P19 cell line derived from a mouse embryo-derived teratocarcinoma has the ability to differentiate into the three germ layers. In the presence of ...

La lignée cellulaire P19 est connue pour se différencier en neurones. Cependant, le protocole pour la différenciation neuronale de la lignée cellulaire P19 est parfois compliqué. Cette méthode nous permet d’effectuer l’expérience névrogène d’une manière conviviale et d’élargir la possibilité de l’utilisation de la lignée cellulaire P19 pour l’avenir.Pour commencer, maintenir les cellules P19 dans le milieu d’entretien, composé de DMEM, avec 4,5 grammes par litre de glucose, complétée par 10% sérum bovin fœtal, 100 unités par pénicilline millilitre, et 100 unités par streptomiycine millilitre. Incuber la culture cellulaire dans un environnement de 37 degrés Celsius et 5% de dioxyde de carbone jusqu’à ce que les cellules soient environ 80% confluent. Retirez le milieu usé du flacon de culture cellulaire et lavez les cellules avec deux millilitres de calcium et de PBS sans magnésium.Ajouter un millilitre de 0,25% trypsine-EDTA pour couvrir complètement la monomeuse des cellules et incuber à 37 degrés Celsius et 5% de dioxyde de carbone pendant deux à trois minutes. Au microscope, vérifiez si toutes les cellules sont détachées. Resuspendez les cellules en neuf millilitres de support d’

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Biologie du développement

Une méthode simple et fiable sur l'isolement et la culture des cellules souches neurales à partir des tissus humains jetés corticale du foetus est décrite. Cultures dérivées de humain connu des troubles neurologiques peuvent être utilisés pour la caractérisation des processus cellulaires et pathologiques moléculaires, ainsi que de fournir une plateforme pour évaluer l'efficacité pharmacologique.

Génération de cellules souches neurales à partir de tissus humains mis au rebut corticale fœtale

Contrôle de l'expansion des cellules souches somatiques est un facteur majeur qui pèse sur leurs études et leur utilisation en thérapie. Ici, nous décrivons un système à contrôler temporellement les cellules souches neurales l'expansion au cours du développement et de l'âge adulte, ce qui peut être utilisé pour augmenter le nombre de neurones générés dans le cerveau de souris.

Expansion du embryonnaires et cellules souches neurales adultes par<em&gt; In Utero</em&gt; Électroporation ou virale par injection stéréotaxique

Cette vidéo présente une technique simple de neurogenèse induite par l’acide rétinoïque dans les cellules de carcinome embryonnaire de souris P19. L’acide rétinoïque active les facteurs de transcription et déclenche l’expression des gènes pour la différenciation neuronale.

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Modélisation astrocytome pathogenèse In Vitro Et In Vivo Utilisation corticale astrocytes ou cellules souches neurales à partir de, souris génétiquement modifiées conditionnelle

Ce protocole décrit comment les cellules progénitrices neurales peuvent être différenciées des cellules souches pluripotentes induites par l’homme, afin de produire une population de cellules neurales robustes et répliquatives, qui peut être utilisée pour identifier les voies de développement contribuant à la pathogenèse de la maladie dans de nombreux troubles neurologiques.

Un guide pour générer et utiliser hiPSC PNJ dérivés pour l&#39;étude des maladies neurologiques

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Un modèle Enzyme et sans sérum Neural Culture de cellules souches pour EMT enquête Adaptés pour la découverte de médicaments

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Génération de cellules souches neurales induites à partir de cellules mononucléaires périphériques et différenciation vers les précurseurs du neurone dopaminergique pour les études de transplantation

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In Vivo Ciblage des cellules progénitrices neuronales dans le néocortex de Ferret par In Utero Electroporation

Ici, nous décrivons un système de nucléofection conçu pour améliorer l’efficacité de l’administration de gènes dans les cellules souches neurales (NSC) élargies isolées de la zone sous-ventriculaire murine adulte. Les résultats démontrent que cette méthode améliore considérablement la perturbation des gènes dans les CSN, surpassant l’efficacité des protocoles de transfection traditionnels et augmentant le taux de survie cellulaire.

Isolement, expansion et nucléofection de cellules souches neurales de la zone sous-ventriculaire murine adulte

Découvrez une méthode simplifiée de neurogenèse induite par l'acide rétinoïque dans les cellules P19 de carcinome embryonnaire murin. Ce protocole facilite la différenciation neuronale pour les études en neurosciences.

Neurogenèse à l'aide de cellules de carcinome embryonnaire P19

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